Видовой состав и чувствительность к антибактериальным препаратам стафилококков, выделенных от пациентов многопрофильного детского стационара Санкт-Петербурга

Обложка

Цитировать

Полный текст

Открытый доступ Открытый доступ
Доступ закрыт Доступ предоставлен
Доступ закрыт Доступ платный или только для подписчиков

Аннотация

Актуальность. Стафилококки являются ведущими возбудителями гнойно-септических заболеваний среди грамположительных бактерий в детских стационарах. Распространение среди них антибиотикорезистентных штаммов ограничивает возможности терапии таких инфекций у детей.

Цель — характеристика видового состава стафилококков, выделенных из различного клинического материала пациентов клиник Санкт-Петербургского государственного педиатрического медицинского университета в 2019 г., и анализ их чувствительности к антибактериальным препаратам.

Материалы и методы. Диско-диффузионным методом, согласно клиническим рекомендациям 2018 г., была определена чувствительность к антимикробным препаратам 860 штаммов стафилококков, идентификацию которых выполняли с помощью автоматического анализатора Vitek-2 compact.

Результаты. Стафилококки в стационаре были представлены шестью видами, при этом в отделениях патологии новорожденных и реанимационных отделениях доминировал Staphylococcus epidermidis (63,0 и 46,2 % соответственно), в хирургических отделениях и отделениях терапевтического профиля — Staphylococcus aureus (61,7 и 46,2 % соответственно). Более половины штаммов стафилококков (63,0 %) были устойчивы хотя бы к одному антимикробному препарату. Наибольшей активностью в отношении изученных штаммов обладали ванкомицин и линезолид. Был выявлен высокий удельный вес полирезистентных (MDR — multidrug-resistant) культур (37,8 %) и штаммов c экстремальным (XDR — extensively drug-resistant) фенотипом резистентности (33,0 %). Доля антибиотикорезистентных штаммов была самой большой среди Staphylococcus haemolyticus (98,1 %) и S. epidermidis (82,0 %), в то время как удельный вес резистентных, а также полирезистентных и экстремальных штаммов был крайне низким среди S. aureus (16,2, 1,5 и 0,4 % соответственно), так же как и метициллинрезистентных изолятов (0,8 %).

Выводы. Среди стафилококков обнаружено большое разнообразие спектров антибиотикорезистентности. Распространение таких штаммов в детских стационарах требует постоянного мониторинга на локальном уровне.

Полный текст

Доступ закрыт

Об авторах

Д. П. Гладин

Санкт-Петербургский государственный педиатрический медицинский университет

Автор, ответственный за переписку.
Email: gladin1975@mail.ru

канд. мед. наук, доцент, заведующий кафедрой микробиологии, вирусологии и иммунологии

Россия, Санкт-Петербург

А. Р. Хайруллина

Санкт-Петербургский государственный педиатрический медицинский университет

Email: alinka_1614@mail.ru

cтудентка 6-го курса факультета «лечебное дело»

Россия, Санкт-Петербург

А. М. Королюк

Санкт-Петербургский государственный педиатрический медицинский университет

Email: microb3@mail.ru

д-р мед. наук, профессор кафедры микробиологии, вирусологии и иммунологии

Россия, Санкт-Петербург

Н. С. Козлова

Северо-Западный государственный медицинский университет имени И.И. Мечникова

Email: spbkns@gmail.com

канд. мед. наук, доцент кафедры медицинской микробиологии

Россия, Санкт-Петербург

О. В. Ананьева

Санкт-Петербургский государственный педиатрический медицинский университет

Email: olgaaov@gmail.com

врач-бактериолог централизованная клинико-диагностической лаборатории

Россия, Санкт-Петербург

О. Г. Горбунов

Санкт-Петербургский государственный педиатрический медицинский университет

Email: bak-gpmu@mail.ru

заведующий бактериологической лабораторией централизованной клинико-диагностической лаборатории

Россия, Санкт-Петербург

Список литературы

  1. Авдеев С.Н., Аведисова А.С., Аветисов С.Э., и др. Федеральное руководство по использованию лекарственных средств (формулярная система). Москва: Видокс, 2017.
  2. Авчинников А.В., Егоричева С.Д. Гигиенические аспекты профилактики инфекций, связанных с оказанием медицинской помощи в акушерских стационарах // Вестник Смоленской государственной медицинской академии. 2015. Т. 14, № 3. С. 92–96.
  3. Алексеев В.В., Алипов А.Н., Андреев В.А., и др. Медицинские лабораторные технологии: Руководство по клинической лабораторной диагностике. В 2 томах. Москва: ГЭОТАР-Медиа, 2013.
  4. Гостев В.В., Калиногорская О.С., Круглов А.Н., Сидоренко С.В. Антибиотикорезистентность коагулазоотрицательных стафилококков, выделенных в стационарах Санкт-Петербурга и Москвы // Антибиотики и химиотерапия. 2015. Т. 60, № 9–10. С. 23–28.
  5. Джиоев Ю.П., Злобин В.И., Саловарова В.П., и др. Анализ проблемы «супербактерий» и современные подходы к ее решению // Известия вузов. Прикладная химия и биотехнология. 2019. Т. 9, № 4. С. 665–668. doi: 10.21285/2227-2925-2019-9-4-665-678
  6. Дятлов И.А., Детушева Е.В., Мицевич И.П., и др. Чувствительность и формирование устойчивости к антисептикам и дезинфектантам у возбудителей внутрибольничных инфекций // Бактериология. 2017. Т. 2, № 2. С. 48–58. doi: 10.20953/2500-1027-2017-2-48-58
  7. Иванов Д.О., Атласов В.О., Бобров С.А., и др. Руководство по перинатологии. Санкт-Петербург: Информ-Навигатор, 2015. 1214 с.
  8. Козлова Н.С., Баранцевич Е.П., Баранцевич Н.Е., Гоик В.Г. Антибиотикорезистентность стафилококков, выделенных из крови // Научное обозрение. 2014. № 3. С. 184–190.
  9. Козлова Н.С., Баранцевич Н.Е. Иванова Л.В., и др. Чувствительность к антибактериальным препаратам стафилококков, циркулирующих в многопрофильном стационаре // Проблемы медицинской микологии. 2015. Т. 17, № 4. С. 58–62.
  10. Козлова Н.С., Баранцевич Н.Е., Баранцевич Е.П. Антибиотикорезистентность возбудителей гнойно-септических инфекций в многопрофильном стационаре // Проблемы медицинской микологии. 2018. Т. 20, № 1. С. 40–48.
  11. Николаева И.В., Анохин В.А. Стафилококковые инфекции в педиатрии // Практическая медицина. 2010. № 1. С. 24–27.
  12. Романов А.В., Дехнич А.В., Сухорукова М.В., и др.; исследовательская группа «МАРАФОН». Антибиотикорезистентность нозокомиальных штаммов Staphylococcus aureus в стационарах России: результаты многоцентрового эпидемиологического исследования «МАРАФОН» в 2013–2014 гг. // Клиническая микробиология и антимикробная химиотерапия. 2017. Т. 19, № 1. С. 57–62.
  13. О санитарно-эпидемиологической обстановке в Российской Федерации в 2014 году: Государственный доклад. М.: Федеральная служба по надзору в сфере защиты прав потребителя и благополучия человека. Центр гигиены и эпидемиологии Роспотребнадзора. 2015. 206 с.
  14. Руководство по медицинской микробиологии. Книга III. Т. 2. Оппортунистические инфекции: клинико-эпидемиологические аспекты / под ред. А.С. Лабинской, Е.Г. Волгиной, Е.П. Ковалевой. М.: БИНОМ, 2014. 880 с.
  15. Шихвердиев Н.Н., Хубулава Г.Г., Марченко С.П., и др. Выбор антибактериального препарата для местного применения при профилактике стернальной инфекции // Педиатр. 2017. Т. 8, № 2. С. 89–93. doi: 10.17816/PED8289-93
  16. Яковлев С.В., Проценко Д.Н., Шахова Т.В., и др. Антибиотикорезистентность в стационаре: контролируем ли мы ситуацию? // Антибиотики и химиотерапия. 2010. Т. 55, № 1–2. С. 50–58.
  17. Antonelli A., Giani T., Coppi M., et al. Staphylococcus aureus from hospital-acquired pneumonia from an Italian nationwide survey: activity of ceftobiprole and other anti-staphylococcal agents, and molecular epidemiology of methicillin-resistant isolates // J Antimicrob Chemother. 2019. Vol. 74, No. 12. P. 3453–3461. doi: 10.1093/jac/dkz371
  18. Becker K., Heilmann C., Peters G. Coagulase-negative staphylococci // Clin Microbiol Rev. 2014. Vol. 27, No. 4. P. 870–926. doi: 10.1128/CMR.00109-13
  19. Blanchard A.C., Fortin E., Laferrie’re C., et al. Comparative effectiveness of linezolid versus vancomycin as definitive antibiotic therapy for heterogeneously resistant vancomycin-intermediate coagulase-negative staphylococcal central-line-associated bloodstream infections in a neonatal intensive care unit // J Antimicrob Chemother. 2017. Vol. 72, No. 6. P. 1812–1817. doi: 10.1093/jac/dkx059
  20. Blane B., Raven K., Leek D., et al. Rapid sequencing of MRSA direct from clinical plates in a routine microbiology laboratory // J Antimicrob Chemother. 2019. Vol. 74, No. 8. P. 2153–2156. doi: 10.1093/jac/dkz170
  21. Butin M., Martins-Simoes P., Pichon B., et al. Emergence and dissemination of a linezolid-resistant Staphylococcus capitis clone in Europe // J Antimicrob Chemother. 2017. Vol. 72, No. 4. P. 1014–1020. doi: 10.1093/jac/dkw516
  22. Conen A., Walti L., Merlo A., et al. Characteristics and treatment outcome of cerebrospinal fluid shunt-associated infections in adults: a retrospective analysis over an 11-year period // Clin Infect Dis. 2008. Vol. 47, No. 1. P. 73–82. doi: 10.1086/588298
  23. De Oliveira D., Forde B., Kidd T., et al. Antimicrobial Resistance in ESKAPE Pathogens // Clin Microbiol Rev 2020. Vol. 33, No. 3. P. 1–49. doi: 10.1128/CMR.00181-19
  24. Hellmark B., Unemo M., Nilsdotter-Augustinsson A., Soderquist B. Antibiotic susceptibility among Staphylococcus epidermidis isolated from prosthetic joint infections with special focus on rifampicin and variability of the rpoB gene // Clin Microbiol Infect. 2009. Vol. 15, No. 3. P. 238–244. doi: 10.1111/j.1469-0691.2008.02663
  25. Humphries R., Magnanom P., Burnham C., et al. Evaluation of Surrogate Tests for the Presence of mecA-Mediated Methicillin Resistance in Staphylococcus capitis, Staphylococcus haemolyticus, Staphylococcus hominis, and Staphylococcus warneri // J Clin Microbiol. 2020. Vol. 59, No. 1. P. e02290–20. doi: 10.1128/JCM.02290-20
  26. Krediet T., Jones M., Janssen K., et al. Prevalence of molecular types and mecA gene carriage of coagulase-negative staphylococci in a neonatal intensive care unit: relation to nosocomial septicemia // J Clin Microbiol. 2001. Vol. 39, No. 9. P. 3376–3378. doi: 10.1128/JCM.39.9.3376-3378.2001
  27. Lakhundi S., Zhang K. Methicillin-Resistant Staphylococcus aureus: Molecular Characterization, Evolution, and Epidemiology // Clin Microbiol Rev. 2018. Vol. 31, No. 4. P. e00020–18. doi: 10.1128/CMR.00020-18
  28. Littorin C., Hellmark B., Nilsdotter-Augustinsson A., Soderquist B. In vitro activity of tedizolid and linezolid against Staphylococcus epidermidis isolated from prosthetic joint infections // Eur J Clin Microbiol & Infect Dis. 2017. Vol. 36, No. 9. P. 1549–1552. doi: 10.1007/s10096-017-2966-z
  29. Naccache S., Callan K., Burnham C., et al. Evaluation of oxacillin and cefoxitin disk diffusion and microbroth dilution methods for detecting mecA-mediated β-lactam resistance in contemporary Staphylococcus epidermidis isolates // J Clin Microbiol. 2019. Vol. 57, No. 12. P. e00961–19. doi: 10.1128/JCM.00961-19
  30. Raad I. Intravascular-catheter-related infections // Lancet. 1998. Vol. 351, No. 9106. P. 893–898. doi: 10.1016/S0140-6736(97)10006-X
  31. Sadovskaya I., Vinogradov E., Flahaut S., et al. Extracellular carbohydrate-containing polymers of a model biofilm-producing strain Staphylococcus epidermidis // Infect Immun. 2005. Vol. 73, No. 5. P. 3007–3017. doi: 10.1128/IAI.73.5.3007-3017.2005
  32. Tong S., Davis J., Eichenberger E., et al. Staphylococcus aureus infections: epidemiology, pathophysiology, clinical manifestations, and management // Clin Microbiol Rev. 2015. Vol. 28, No. 3. P. 603–661. doi: 10.1128/CMR.00134-14
  33. Watkins R., Holubar M., David M. Antimicrobial resistance in methicillin-resistant Staphylococcus aureus to newer antimicrobial agents // Antimicrob Agents Chemother. 2019. Vol. 63, No. 12. P. e01216–e1219. doi: 10.1128/AAC.01216-19
  34. Widerstrom M., Wistrom J., Sjostedt A., Monsen T. Coagulase-negative staphylococci: update on the molecular epidemiology and clinical presentation, with a focus on Staphylococcus epidermidis and Staphylococcus saprophyticus // Eur J Clin Microbiol & Infec Dis. 2012. Vol. 31, No. 1. P. 7–20. doi: 10.1007/s10096-011-1270-6

Дополнительные файлы

Доп. файлы
Действие
1. JATS XML
Скачать
2. Рис. 1. Частота встречаемости чувствительных и резистентных к антибактериальным препаратам штаммов стафилококков в многопрофильном детском стационаре

Скачать (114KB)
Метаданные
3. Рис. 2. Частота встречаемости полирезистентных и экстремально-резистентных штаммов стафилококков в отделениях многопрофильного детского стационара

Скачать (138KB)
Метаданные
4. Рис. 3. Наиболее частые спектры антибиотикорезистентности S. epidermidis. Azm — азитромицин, Amc — амоксиклав, Gn — гентамицин, Ox — оксациллин, Cip — ципрофлоксацин, Ckt — цефокситин

Скачать (145KB)
Метаданные
5. Рис. 4. Спектры антибиотикорезистентности S. aureus. Azm — азитромицин, Amc — амоксиклав, Gn — гентамицин, Ox — оксациллин, Cip — ципрофлоксацин, Ckt — цефокситин

Скачать (147KB)
Метаданные
6. Рис. 5. Спектры резистентности S. haemolyticus. Azm — азитромицин, Amc — амоксиклав, Gn — гентамицин, Ox — оксациллин, Cip — ципрофлоксацин, Ckt — цефокситин

Скачать (114KB)
Метаданные

© Гладин Д.П., Хайруллина А.Р., Королюк А.М., Козлова Н.С., Ананьева О.В., Горбунов О.Г., 2021

Creative Commons License
Эта статья доступна по лицензии Creative Commons Attribution 4.0 International License.
СМИ зарегистрировано Федеральной службой по надзору в сфере связи, информационных технологий и массовых коммуникаций (Роскомнадзор).
Регистрационный номер и дата принятия решения о регистрации СМИ: серия ПИ № ФС 77 - 69634 от 15.03.2021 г.


Данный сайт использует cookie-файлы

Продолжая использовать наш сайт, вы даете согласие на обработку файлов cookie, которые обеспечивают правильную работу сайта.

О куки-файлах