Видовой состав и чувствительность к антибактериальным препаратам стафилококков, выделенных от пациентов многопрофильного детского стационара Санкт-Петербурга
- Авторы: Гладин Д.П.1, Хайруллина А.Р.1, Королюк А.М.1, Козлова Н.С.2, Ананьева О.В.1, Горбунов О.Г.1
-
Учреждения:
- Санкт-Петербургский государственный педиатрический медицинский университет
- Северо-Западный государственный медицинский университет имени И.И. Мечникова
- Выпуск: Том 12, № 4 (2021)
- Страницы: 15-25
- Раздел: Оригинальные статьи
- URL: https://journals.eco-vector.com/pediatr/article/view/90045
- DOI: https://doi.org/10.17816/PED12415-25
- ID: 90045
Цитировать
Аннотация
Актуальность. Стафилококки являются ведущими возбудителями гнойно-септических заболеваний среди грамположительных бактерий в детских стационарах. Распространение среди них антибиотикорезистентных штаммов ограничивает возможности терапии таких инфекций у детей.
Цель — характеристика видового состава стафилококков, выделенных из различного клинического материала пациентов клиник Санкт-Петербургского государственного педиатрического медицинского университета в 2019 г., и анализ их чувствительности к антибактериальным препаратам.
Материалы и методы. Диско-диффузионным методом, согласно клиническим рекомендациям 2018 г., была определена чувствительность к антимикробным препаратам 860 штаммов стафилококков, идентификацию которых выполняли с помощью автоматического анализатора Vitek-2 compact.
Результаты. Стафилококки в стационаре были представлены шестью видами, при этом в отделениях патологии новорожденных и реанимационных отделениях доминировал Staphylococcus epidermidis (63,0 и 46,2 % соответственно), в хирургических отделениях и отделениях терапевтического профиля — Staphylococcus aureus (61,7 и 46,2 % соответственно). Более половины штаммов стафилококков (63,0 %) были устойчивы хотя бы к одному антимикробному препарату. Наибольшей активностью в отношении изученных штаммов обладали ванкомицин и линезолид. Был выявлен высокий удельный вес полирезистентных (MDR — multidrug-resistant) культур (37,8 %) и штаммов c экстремальным (XDR — extensively drug-resistant) фенотипом резистентности (33,0 %). Доля антибиотикорезистентных штаммов была самой большой среди Staphylococcus haemolyticus (98,1 %) и S. epidermidis (82,0 %), в то время как удельный вес резистентных, а также полирезистентных и экстремальных штаммов был крайне низким среди S. aureus (16,2, 1,5 и 0,4 % соответственно), так же как и метициллинрезистентных изолятов (0,8 %).
Выводы. Среди стафилококков обнаружено большое разнообразие спектров антибиотикорезистентности. Распространение таких штаммов в детских стационарах требует постоянного мониторинга на локальном уровне.
Полный текст

Об авторах
Д. П. Гладин
Санкт-Петербургский государственный педиатрический медицинский университет
Автор, ответственный за переписку.
Email: gladin1975@mail.ru
канд. мед. наук, доцент, заведующий кафедрой микробиологии, вирусологии и иммунологии
Россия, Санкт-ПетербургА. Р. Хайруллина
Санкт-Петербургский государственный педиатрический медицинский университет
Email: alinka_1614@mail.ru
cтудентка 6-го курса факультета «лечебное дело»
Россия, Санкт-ПетербургА. М. Королюк
Санкт-Петербургский государственный педиатрический медицинский университет
Email: microb3@mail.ru
д-р мед. наук, профессор кафедры микробиологии, вирусологии и иммунологии
Россия, Санкт-ПетербургН. С. Козлова
Северо-Западный государственный медицинский университет имени И.И. Мечникова
Email: spbkns@gmail.com
канд. мед. наук, доцент кафедры медицинской микробиологии
Россия, Санкт-ПетербургО. В. Ананьева
Санкт-Петербургский государственный педиатрический медицинский университет
Email: olgaaov@gmail.com
врач-бактериолог централизованная клинико-диагностической лаборатории
Россия, Санкт-ПетербургО. Г. Горбунов
Санкт-Петербургский государственный педиатрический медицинский университет
Email: bak-gpmu@mail.ru
заведующий бактериологической лабораторией централизованной клинико-диагностической лаборатории
Россия, Санкт-ПетербургСписок литературы
- Авдеев С.Н., Аведисова А.С., Аветисов С.Э., и др. Федеральное руководство по использованию лекарственных средств (формулярная система). Москва: Видокс, 2017.
- Авчинников А.В., Егоричева С.Д. Гигиенические аспекты профилактики инфекций, связанных с оказанием медицинской помощи в акушерских стационарах // Вестник Смоленской государственной медицинской академии. 2015. Т. 14, № 3. С. 92–96.
- Алексеев В.В., Алипов А.Н., Андреев В.А., и др. Медицинские лабораторные технологии: Руководство по клинической лабораторной диагностике. В 2 томах. Москва: ГЭОТАР-Медиа, 2013.
- Гостев В.В., Калиногорская О.С., Круглов А.Н., Сидоренко С.В. Антибиотикорезистентность коагулазоотрицательных стафилококков, выделенных в стационарах Санкт-Петербурга и Москвы // Антибиотики и химиотерапия. 2015. Т. 60, № 9–10. С. 23–28.
- Джиоев Ю.П., Злобин В.И., Саловарова В.П., и др. Анализ проблемы «супербактерий» и современные подходы к ее решению // Известия вузов. Прикладная химия и биотехнология. 2019. Т. 9, № 4. С. 665–668. doi: 10.21285/2227-2925-2019-9-4-665-678
- Дятлов И.А., Детушева Е.В., Мицевич И.П., и др. Чувствительность и формирование устойчивости к антисептикам и дезинфектантам у возбудителей внутрибольничных инфекций // Бактериология. 2017. Т. 2, № 2. С. 48–58. doi: 10.20953/2500-1027-2017-2-48-58
- Иванов Д.О., Атласов В.О., Бобров С.А., и др. Руководство по перинатологии. Санкт-Петербург: Информ-Навигатор, 2015. 1214 с.
- Козлова Н.С., Баранцевич Е.П., Баранцевич Н.Е., Гоик В.Г. Антибиотикорезистентность стафилококков, выделенных из крови // Научное обозрение. 2014. № 3. С. 184–190.
- Козлова Н.С., Баранцевич Н.Е. Иванова Л.В., и др. Чувствительность к антибактериальным препаратам стафилококков, циркулирующих в многопрофильном стационаре // Проблемы медицинской микологии. 2015. Т. 17, № 4. С. 58–62.
- Козлова Н.С., Баранцевич Н.Е., Баранцевич Е.П. Антибиотикорезистентность возбудителей гнойно-септических инфекций в многопрофильном стационаре // Проблемы медицинской микологии. 2018. Т. 20, № 1. С. 40–48.
- Николаева И.В., Анохин В.А. Стафилококковые инфекции в педиатрии // Практическая медицина. 2010. № 1. С. 24–27.
- Романов А.В., Дехнич А.В., Сухорукова М.В., и др.; исследовательская группа «МАРАФОН». Антибиотикорезистентность нозокомиальных штаммов Staphylococcus aureus в стационарах России: результаты многоцентрового эпидемиологического исследования «МАРАФОН» в 2013–2014 гг. // Клиническая микробиология и антимикробная химиотерапия. 2017. Т. 19, № 1. С. 57–62.
- О санитарно-эпидемиологической обстановке в Российской Федерации в 2014 году: Государственный доклад. М.: Федеральная служба по надзору в сфере защиты прав потребителя и благополучия человека. Центр гигиены и эпидемиологии Роспотребнадзора. 2015. 206 с.
- Руководство по медицинской микробиологии. Книга III. Т. 2. Оппортунистические инфекции: клинико-эпидемиологические аспекты / под ред. А.С. Лабинской, Е.Г. Волгиной, Е.П. Ковалевой. М.: БИНОМ, 2014. 880 с.
- Шихвердиев Н.Н., Хубулава Г.Г., Марченко С.П., и др. Выбор антибактериального препарата для местного применения при профилактике стернальной инфекции // Педиатр. 2017. Т. 8, № 2. С. 89–93. doi: 10.17816/PED8289-93
- Яковлев С.В., Проценко Д.Н., Шахова Т.В., и др. Антибиотикорезистентность в стационаре: контролируем ли мы ситуацию? // Антибиотики и химиотерапия. 2010. Т. 55, № 1–2. С. 50–58.
- Antonelli A., Giani T., Coppi M., et al. Staphylococcus aureus from hospital-acquired pneumonia from an Italian nationwide survey: activity of ceftobiprole and other anti-staphylococcal agents, and molecular epidemiology of methicillin-resistant isolates // J Antimicrob Chemother. 2019. Vol. 74, No. 12. P. 3453–3461. doi: 10.1093/jac/dkz371
- Becker K., Heilmann C., Peters G. Coagulase-negative staphylococci // Clin Microbiol Rev. 2014. Vol. 27, No. 4. P. 870–926. doi: 10.1128/CMR.00109-13
- Blanchard A.C., Fortin E., Laferrie’re C., et al. Comparative effectiveness of linezolid versus vancomycin as definitive antibiotic therapy for heterogeneously resistant vancomycin-intermediate coagulase-negative staphylococcal central-line-associated bloodstream infections in a neonatal intensive care unit // J Antimicrob Chemother. 2017. Vol. 72, No. 6. P. 1812–1817. doi: 10.1093/jac/dkx059
- Blane B., Raven K., Leek D., et al. Rapid sequencing of MRSA direct from clinical plates in a routine microbiology laboratory // J Antimicrob Chemother. 2019. Vol. 74, No. 8. P. 2153–2156. doi: 10.1093/jac/dkz170
- Butin M., Martins-Simoes P., Pichon B., et al. Emergence and dissemination of a linezolid-resistant Staphylococcus capitis clone in Europe // J Antimicrob Chemother. 2017. Vol. 72, No. 4. P. 1014–1020. doi: 10.1093/jac/dkw516
- Conen A., Walti L., Merlo A., et al. Characteristics and treatment outcome of cerebrospinal fluid shunt-associated infections in adults: a retrospective analysis over an 11-year period // Clin Infect Dis. 2008. Vol. 47, No. 1. P. 73–82. doi: 10.1086/588298
- De Oliveira D., Forde B., Kidd T., et al. Antimicrobial Resistance in ESKAPE Pathogens // Clin Microbiol Rev 2020. Vol. 33, No. 3. P. 1–49. doi: 10.1128/CMR.00181-19
- Hellmark B., Unemo M., Nilsdotter-Augustinsson A., Soderquist B. Antibiotic susceptibility among Staphylococcus epidermidis isolated from prosthetic joint infections with special focus on rifampicin and variability of the rpoB gene // Clin Microbiol Infect. 2009. Vol. 15, No. 3. P. 238–244. doi: 10.1111/j.1469-0691.2008.02663
- Humphries R., Magnanom P., Burnham C., et al. Evaluation of Surrogate Tests for the Presence of mecA-Mediated Methicillin Resistance in Staphylococcus capitis, Staphylococcus haemolyticus, Staphylococcus hominis, and Staphylococcus warneri // J Clin Microbiol. 2020. Vol. 59, No. 1. P. e02290–20. doi: 10.1128/JCM.02290-20
- Krediet T., Jones M., Janssen K., et al. Prevalence of molecular types and mecA gene carriage of coagulase-negative staphylococci in a neonatal intensive care unit: relation to nosocomial septicemia // J Clin Microbiol. 2001. Vol. 39, No. 9. P. 3376–3378. doi: 10.1128/JCM.39.9.3376-3378.2001
- Lakhundi S., Zhang K. Methicillin-Resistant Staphylococcus aureus: Molecular Characterization, Evolution, and Epidemiology // Clin Microbiol Rev. 2018. Vol. 31, No. 4. P. e00020–18. doi: 10.1128/CMR.00020-18
- Littorin C., Hellmark B., Nilsdotter-Augustinsson A., Soderquist B. In vitro activity of tedizolid and linezolid against Staphylococcus epidermidis isolated from prosthetic joint infections // Eur J Clin Microbiol & Infect Dis. 2017. Vol. 36, No. 9. P. 1549–1552. doi: 10.1007/s10096-017-2966-z
- Naccache S., Callan K., Burnham C., et al. Evaluation of oxacillin and cefoxitin disk diffusion and microbroth dilution methods for detecting mecA-mediated β-lactam resistance in contemporary Staphylococcus epidermidis isolates // J Clin Microbiol. 2019. Vol. 57, No. 12. P. e00961–19. doi: 10.1128/JCM.00961-19
- Raad I. Intravascular-catheter-related infections // Lancet. 1998. Vol. 351, No. 9106. P. 893–898. doi: 10.1016/S0140-6736(97)10006-X
- Sadovskaya I., Vinogradov E., Flahaut S., et al. Extracellular carbohydrate-containing polymers of a model biofilm-producing strain Staphylococcus epidermidis // Infect Immun. 2005. Vol. 73, No. 5. P. 3007–3017. doi: 10.1128/IAI.73.5.3007-3017.2005
- Tong S., Davis J., Eichenberger E., et al. Staphylococcus aureus infections: epidemiology, pathophysiology, clinical manifestations, and management // Clin Microbiol Rev. 2015. Vol. 28, No. 3. P. 603–661. doi: 10.1128/CMR.00134-14
- Watkins R., Holubar M., David M. Antimicrobial resistance in methicillin-resistant Staphylococcus aureus to newer antimicrobial agents // Antimicrob Agents Chemother. 2019. Vol. 63, No. 12. P. e01216–e1219. doi: 10.1128/AAC.01216-19
- Widerstrom M., Wistrom J., Sjostedt A., Monsen T. Coagulase-negative staphylococci: update on the molecular epidemiology and clinical presentation, with a focus on Staphylococcus epidermidis and Staphylococcus saprophyticus // Eur J Clin Microbiol & Infec Dis. 2012. Vol. 31, No. 1. P. 7–20. doi: 10.1007/s10096-011-1270-6
Дополнительные файлы
