Prognostic value of immunological components of tumor microenvironment of oncourological tumors

Cover Page


Cite item

Full Text

Open Access Open Access
Restricted Access Access granted
Restricted Access Subscription or Fee Access

Abstract

BACKGROUND: In the last decade, the tumor microenvironment has been considered as one of the key factors determining the prognosis and nature of the necessary therapeutic interventions. Currently, there is only one validated and approved predictive model that includes microenvironment components. Several classifications of the tumor microenvironment based on the nature of the predominant cellular subpopulations have been proposed.

AIM: The aim of the study was to assess the prognostic significance of the immunological components of blood and the microenvironment, as well as to create prognostic models for oncourological tumors.

MATERIALS AND METHODS: The study used clinical data from 115 patients with kidney, bladder and prostate cancer. Immunological parameters in the tumor and blood microenvironment were evaluated in all patients. The end point of observation was the median time to progression. The influence of various parameters on long-term treatment outcomes was evaluated using the log rank and the Gehan–Wilcoxon criteria. A model of proportional hazard was used to identify the combined effect of several parameters on lifetime indicators.

RESULTS: The developed prognostic models for all studied groups include spontaneous production of three cytokines: IL-6, IL-8 and IL-10. The prognostic models for renal cell carcinoma and prostate cancer also included immunosuppressive components: MDSC and Treg. The median time to progression in patients with invasive urothelial cancer is influenced by components that contribute to tumor destruction: TNK cells and IFN-γ. In all the studied groups of patients (renal cell carcinoma, muscle-invasive urothelial cancer, prostate cancer), the median time to progression significantly differs in subgroups with different numbers of immunological risk factors for tumor microenvironment.

CONCLUSIONS: The developed prognostic models are based on modern achievements of oncoimmunology and after conducting multicenter validation studies, they can be recommended for clinical use.

Full Text

АКТУАЛЬНОСТЬ

Микроокружение опухоли в последнее десятилетие рассматривается как один из ключевых факторов, определяющих прогноз и характер необходимых терапевтических вмешательств [1]. Микроокружение состоит из экстрацеллюлярного матрикса и его продуцентов (фибробласты, мезенхимальные стромальные клетки, перициты, адипоциты, эндотелиоциты), эффекторных и супрессорных компонентов иммунной системы. Даже малое количество стволовых опухолевых или покоящихся клеток (senescent cell) формирует микроокружение, резистентное к лечению [2, 3].

Современные концепции разработки стратегии и тактики лечения в онкологии построены на нескольких фундаментальных исследованиях, в которых обозначены основные свойства злокачественных клеток, а также особенности взаимодействия компонентов иммунной системы и опухоли с учетом временного фактора. D. Hanahan с группой соавторов в течение нескольких десятилетий изучал свойства опухолевых клеток, принципиально отличающих их от нормальных. В 2012 г. он постулировал основные свойства опухолевых клеток, среди которых впервые были обозначены способность к противодействию иммунологической деструкции и дисрегуляция клеточной энергетики [4]. В 2004 г. G.P. Dunn c соавторами описал динамику взаимодействия опухоли и иммунной системы с течением времени, выделил три фазы этого процесса и предложил термин «иммуноредактирование» [5]. В дальнейшем эти исследования легли в основу разработки стратегий лечения, основанных на определении фазы иммуноредактирования [6].

Формирование микроокружения происходит под влиянием стволовых опухолевых клеток. Его тип определяется активностью, составом иммуносупрессорных и эффекторных компонентов, их соотношением, а также гуморальной микросредой, создаваемой цитокинами, хемокинами и факторами роста.

Стволовые опухолевые клетки (CSC, cancer stem cells) обусловливают высокий риск метастазирования и резистентность к лекарственной терапии. Инвазивность, резистентность к терапии и высокий метастатический потенциал обусловлены гиперактивацией ряда сигнальных путей: Notch, Wnt/β — катенин, HH, STAT3, TGF-β, JAK/STAT [7, 8].

Клеточные элементы в микроокружении могут способствовать иммунологической деструкции или пролиферации злокачественных клеток. Под действием факторов опухоли и микроокружения изменяются функциональные свойства ряда иммунокомпетентных клеток, наиболее изученными из которых на данный момент являются макрофаги (МФ), супрессорные клетки миелоидного происхождения (MDSCs), Т-регуляторные клетки (Treg), дендритные клетки (DC), дважды негативные лимфоциты (DN) и врожденные лимфоидные клетки (ILC).

В микроокружении опухоли и периферической крови существует две субпопуляции МФ — М1 и М2. М1 — классически активируемые МФ, поляризация которых из предшественников происходит под действием липополисахарида, интерферона гамма (IFN-γ) и фактора некроза опухоли альфа (TNF-α). М2 — сборное название группы клеток макрофагального ряда (M2a, M2b, M2c, M2d), индуцирующихся под влиянием интерлейкина 4 (IL-4), интерлейкина 13 (IL-13), интерлейкина 10 (IL-10), трансформирующий фактор роста бета (TGF-β), Fc-рецепторов, комплемента и глюкокортикоидов. М2 образуются из моноцитов периферической крови, рекрутированных в очаг хемокиновыми лигандами (CCL-2, MCP-1), колониестимулирующими факторами (M-CSF, CSF-1) и сосудистым эндотелиальным фактором роста (VEGF), концентрация которых повышена в зонах с низким давлением кислорода [9]. MDSC (супрессорные клетки миелоидного происхождения) представляют собой гетерогенную группу клеток. У человека описаны две субпопуляции MDSC: гранулоцитарные MDSC (gMDSC, CD11b+CD14CD15+CD33+) и моноцитарные MDSC (mMDSC, CD11b+CD14+CD15CD33+HLADR/low). Обе субпопуляции способствуют активации Treg, M2-макрофагов, CSC [10]. Treg в норме способствуют предотвращению аутоиммунных реакций. Среди Treg выделяются три группы. Одна из них имеет фенотип CD4+CD25hiCTLAhiFoxP3low и образуется в тимусе из недифференцированных лимфоцитов (rTreg), другая, с фенотипом CD4+CD25variableCTLAhiFoxP3hi, возникает из периферических Т-хелперов под действием избыточной концентрации глюкокортикоидов, эстрогенов, IL-2 и TGF-β (eTreg). Механизм действия последних связан с контактным ингибированием, секрецией супрессорных цитокинов (IL-10, IL-35, TGF-β), а также прямым лизисом иммунокомпетентных клеток. Третья группа клеток, экспрессирующая FoxP3, представлена несколькими субпопуляциями с различными функциями (NONE-Treg). Отличительной их особенностью является одновременная экспрессия IL-2, IFN-γ и IL-17. Большая часть Treg-клеток представлена субпопуляцией eTreg [11]. Дендритные клетки (DC) — это высокоспециализированная субпопуляция, основная функция которой состоит в поглощении, процессинге и презентации антигенов в составе главного комплекса гистосовместимости I и II типа (MHC I и II). У человека морфологически и функционально различают две субпопуляции DC: миелоидные (mDC, CD11c+CD4+CD45RO+), запускающие иммунный ответ при контакте с растворимыми антигенами, и плазмацитоидные (pDC, CD11cCD4+CD45RA+CD123+), поглощающие клеточно-ассоциированные антигены [12]. Дважды негативные Т-лимфоциты (DN, double-negative, CD3+CD4CD8) характеризуются отсутствием корецепторов CD4 и CD8, маркеров NK и экспрессией одного из вариантов TCR (Т-клеточного рецептора): альфа/бета (αβ) в 95 % и гамма/дельта (γδ) в 5 % случаев. Биологические свойства DN обусловливают их двойственную роль в канцерогенезе. С одной стороны, они экспрессируют TNF-α и IFN-γ, активируя макрофаги, а с другой стороны, за счет продукции IL-10, IL-17, IL-1, IL-8, CXCL2 и CXCL3 способствуют рекрутингу Treg в опухолевый очаг. Наличие в микроокружении дважды негативных опухоль-инфильтрирующих лимфоцитов (DN TIL) является неблагоприятным прогностическим фактором в отношении общей и безрецидивной выживаемости у больных с разными нозологическими формами [13]. Врожденные лимфоидные клетки (ILCs) возникают из общего лимфоидного предшественника с другими лимфоцитами. Описано три типа ILCs: ILC1s, ILC2s, ILC3s. ILC1s обладают противоопухолевой активностью. ILC2s и ILC3s вместе со стромальными клетками способствуют формированию лимфогенных метастазов [14].

Ключевая роль в деструкции опухоли принадлежит макрофагам (M1), натуральным киллерам (NK), цитотоксическим лимфоцитам (CTL, CD8+). Роль этих субпопуляций клеток в противоопухолевой защите хорошо изучена и описана во многих публикациях [15–17].

Прогностическое значение иммунологических компонентов микроокружения в настоящее время продолжает изучаться. Несмотря на это, приемлемых для реальной клинической практики прогностических моделей не предложено. В настоящее время единственным валидированным и одобренным профессиональными медицинскими организациями для колоректального рака способом прогноза, включающим компоненты микроокружения опухоли (CD4+, CD8+), является иммунологический индекс (immunoscore), оцениваемый иммуногистохимически [18]. Предложена классификация подтипов опухолей в соответствии с особенностями клеточного состава и профилей экспрессии микроокружения, которая в настоящее время не нашла применения в реальной клинической практике [19].

Для метастатического почечно-клеточного рака предложено несколько прогностических моделей. Широкое распространение получили MSKCC (Memorial Sloan-Kettering Cancer Center; Мемориальный онкологический центр Слоуна и Кеттеринга), шкала французской группы иммунотерапии, шкала клиники Кливленда, модель международной рабочей группы по изучению рака почки, модель Международного консорциума по изучению метастатического рака почки, а также модель, созданная при изучении эффективности и безопасности сунитиниба в рамках третьей фазы [20, 21]. Стандартной шкалой для оценки прогноза в настоящее время признана IMDC (International Metastatic Renal Cancer Database Consortium; Международный консорциум по изучению метастатического рака почки). Оценку новых прогностических параметров для этой категории больных целесообразно проводить с учетом IMDC [22].

Целью исследования была оценка прогностической значимости иммунологических компонентов крови и микроокружения, а также создание прогностических моделей для онкоурологических опухолей.

МАТЕРИАЛЫ И МЕТОДЫ

Для разработки прогностических моделей, связывающих отдаленные результаты лечения с иммунологическми компонентами микроокружения опухолей, в исследовании использованы данные 115 больных, получавших системную терапию в различных городских и областных медицинских учреждениях и находившихся под наблюдением ФГБУ «РНЦРХТ им. акад. А.М. Гранова» Минздрава России в период с 2018 по 2023 г. Возраст пациентов, включенных в исследование, — 76 ± 8,4 года (от 28 до 76). Большинство пациентов относилось к категории среднего и пожилого возраста по классификации Всемирной организации здравоохранения (ВОЗ).

Всем пациентам проводилось обследование с целью установки диагноза и степени распространенности процесса по стандартным методикам. Гистологическая верификация опухоли произведена у всех больных. Структура новообразования устанавливалась в соответствии с классификацией ВОЗ. У всех больных раком почки установлен гистологический диагноз «светлоклеточный почечно-клеточный рак». Прогноз заболевания оценивался в соответствии с прогностической шкалой IMDC [22]. У больных мышечно-инвазивным раком мочевого пузыря установлен гистологический диагноз «папиллярный переходно-клеточный рак». У 7 пациентов — низкодифференцированная опухоль (G3), у остальных — умеренно дифференцированная (G2). У 2 больных раком предстательной железы установлен диагноз «мелкоацинарная аденокарцинома», у остальных — «крупноацинарная аденокарцинома». Клиническая характеристика больных, включенных в исследование, отражена в табл. 1.

 

Таблица 1. Клиническая характеристика групп пациентов, включенных в исследование

Table 1. Clinical characteristics of the groups of patients included in the study

Нозологическая форма

Параметр

Значение

Число пациентов

Процент в подгруппе

Почечно-клеточный рак (n = 42)

Возраст, лет

≥50

37

83,3

<50

7

16,7

Индекс Карновского, %

100

32

76,2

90

10

23,8

Локализация метастазов

Легкие

38

90,5

Кости

6

14,3

Лимфатические узлы

25

59,5

Прогноз по IMDC

Хороший

12

28,6

Промежуточный

23

54,7

Плохой

7

16,7

Мышечно-инвазивный рак мочевого пузыря (n = 34)

Возраст, лет

≥50

31

91,2

<50

3

8,8

Индекс Карновского, %

100

20

58,8

90

9

26,5

80

5

14,7

Гистопатологическая дифференцировка

G2

23

67,6

G3

11

32,4

Предшествующее лечение

Трансуретральная резекция

32

94,1

Неоадъювантная химиотерапия

28

82,4

Рак предстательной железы (n = 39)

Возраст, лет

≥50

32

82,1

<50

7

17,9

Индекс Карновского, %

100

9

23,1

90

18

46,2

80

12

28,1

70

1

2,6

Индекс Глисона, баллы

2–6

7

17,9

7–8

11

28,4

9–10

21

53,7

Гормон-чувствительность

ГЧРПЖ

7

17,9

КРРПЖ

32

82,1

Локализация метастазов

Кости

28

71,8

Лимфатические узлы

31

79,5

Печень

8

20,5

Легкие

6

15,4

Примечание. IMDC — International Metastatic Renal Cancer Database Consortium (Международный консорциум по изучению метастатического рака почки); ГЧРПЖ — гормон-чувствительный рак предстательной железы; КРРПЖ — кастрат-резистентный рак предстательной железы.

 

Перед началом лечения больным проводилось компьютерно-томографическое исследование на аппарате Somstom-CR (Siemens) по стандартной методике с шагом от 2 до 5 мм с контрастным усилением или магнитно-резонансная томография на аппарате Magneton Vision с целью определения степени распространенности поражения в брюшной полости, малом тазу, костях, головном и спинном мозге. Компьютерную и магнитно-резонансную томографию проводили в амбулаторном режиме. Для оценки результатов лечения использовали критерии RECIST v. 1.1 [23].

В крови больных и микроокружении оценивалось содержание лимфоцитов, их субпопуляций и цитокинов. Анализы проводились в иммунологических лабораториях ФГУЗ ВЦЭРМ им. А.М. Никифорова МЧС России и Первого Санкт-Петербургского государственного медицинского университета им. акад. И.П. Павлова на лазерных проточных цитометрах Cytomics FC500 (Beckman CoulteR Inc., США) и FACSCalibur (BD Biosciences) с использованием моноклональных антител и расходных материалов компаний Beckman Coulter Inc., Immunotech S.A.S. и ЗАО «Вектор-Бест» с применением стандартизованной технологии исследования субпопуляционного состава лимфоцитов периферической крови [24].

Уровень лимфоцитов и их субпопуляций оценивали в крови. Цитокиновый профиль анализировали в два этапа. На первом этапе определяли сывороточную концентрацию, на втором — исследовали культуру клеток, где определялся их потенциал путем оценки спонтанной и индуцированной продукции цитокинов. Исследования проводились в одно и то же время суток, чтобы избежать влияния циркадных колебаний.

Референсных интервалов для определения концентрации иммунокомпетентных клеток, а также концентрации, спонтанной и индуцированной продукции цитокинов в микроокружении в настоящее время не существует. Опухолевый материал объемом около 10 мм3 помещали в два флакона, в одном из которых находилась питательная среда DMEM-F12 для определения спонтанной продукции, а в другом — та же питательная среда с комплексом поликлональных активаторов (фитогемагглютинин 4 мкг/мл, конканавалин А 4 мкг/мл, липополисахарид 2 мкг/мл). Далее происходило инкубирование при 37 °C в течение 72 ч. Клетки опухоли осаждали центрифугированием при 2000 об/мин в течение 15 мин. После осаждения клеток иммуноферментным методом определяли концентрацию цитокинов и факторов роста.

У пациентов, включенных в исследование, в крови и микроокружении оценивалось содержание лимфоцитов, их субпопуляций и цитокинов.

Субпопуляции лимфоцитов (референсный интервал): CD3+CD16 (зрелые Т-лимфоциты, 950–1800 · 109/л); CD3+CD8+ (цитотоксические лимфоциты, 450–850 · 109/л); CD3+CD4+ (Т-хелперы, 570–1100 · 109/л); CD4+CD8+ (дубль-позитивные Т-клетки, 5–15 · 109/л); CD16+CD56+HLA DR+ (активированные натуральные киллеры, 18–150 · 109/л); CD3+CD16+CD56+ (TNK-клетки, 5–200 · 109/л); CD4+CD25+CD127FoxP3 (Т-регуляторные клетки, 0–110 · 109/л); CD3+HLA DR+ (активированные Т-клетки, 0–120 · 109/л); αβ-Т (альфа/бета Т-клетки, 925–1625 × 109/л); γδ-Т (гамма/дельта Т-клетки, 20–115 · 109/л); LIN-HLADR-CD33+CD66bCD14+CD15 (супрессорные клетки миелоидного происхождения, 0–120 · 109/л); CD36+CD163+CD206+ (опухоль-ассоциированные макрофаги, 0–25 · 109/л).

Цитокины (референсный интервал; спонтанная продукция, СП; индуцированная продукция, ИП; концентрация, К): IL-2 (СП — 0–5 пг/мл; ИП — 10–100 пг/мл); IL-4 (СП — 0–50 пг/мл; ИП — 100–400 пг/мл; К — 0–50 пг/мл); IL-6 (СП — 0–50 пг/мл; ИП — 1000–3000 пг/мл; К — 0–50 пг/мл); IL-8 (СП — 0–100 пг/мл; ИП — 1000– 5000 пг/мл; К — 0–50 пг/мл); IL-10 (СП — 0–50 пг/мл; ИП — 100–400 пг/мл; К — 0–50 пг/мл); IL-12 (СП — 0–50 пг/мл; ИП — 100–600 пг/мл; К — 0–50 пг/мл); интерферон-α (IFN-α, СП — 0–50 пг/мл; ИП — 100– 500 пг/мл; К — 0–50 пг/мл); IFN-γ (СП — 0–50 пг/мл; ИП — 1000–5000 пг/мл; К — 0–50 пг/мл); TNF-α (СП — 0–50 пг/мл; ИП — 500–1500 пг/мл; К — 0–50 пг/мл).

Оценка иммунологического профиля и компонента микроокружения опухоли выполнялась с использованием операционного или биопсиийного материала до начала лечения. Лечение проводилось до прогрессирования или до появления некорригируемых побочных эффектов. Конечной точкой наблюдения являлась медиана времени до прогрессирования. В исследуемой группе отсутствовали пациенты, умершие до прогрессирования. Поэтому фактически медиана времени до прогрессирования совпадала с медианой выживаемости без него.

Пациенты с метастатическим почечно-клеточным раком в первой линии получали один из пяти вариантов лечения: 1) пембролизумаб в дозе 200 мг внутривенно капельно один раз в 3 нед. в сочетании с акситинибом в дозе 5 мг два раза в сутки перорально ежедневно (6 человек; 14,3 %); 2) ниволумаб в дозе 240 мг внутривенно капельно один раз в 2 нед. (4 человека; 9,5 %); 3) сунитиниб дозе 50 мг в сутки перорально в виде восьминедельных циклов с перерывом 2 нед. (14 человек; 33,4 %); 4) пазопаниб в дозе 400–800 мг в сутки в зависимости от переносимости (9 человек; 21,4 %); 5) рекомбинантный IFN-α 9 млн МЕ три раза в неделю внутримышечно в комбинации с бевацизумабом в дозе 10 мг/кг внутривенно один раз в 14 дней (9 человек; 21,4 %). Во второй линии при появлении некорригируемых побочных эффектов больные получали ниволумаб при непереносимости сунитиниба (5 человек; 11,9 %) или пазопаниб при непереносимости ниволумаба (3 человека; 7,1 %).

Пациенты с метастатическим раком мочевого пузыря получали различные варианты полихимиотерапии (GC, MVAC, DD-MVAC; 14 человек; 41,2 %), винфлунин по 320 мг/м2 каждые 3 нед. (5 человек; 14,7 %), а также иммуноонкологические препараты: атезолизумаб по 840 мг внутривенно каждые 2 нед. (8 человек; 23,5 %) и пембролизумаб по 200 мг внутривенно капельно каждые 3 нед. (7 человек; 20,6 %).

Пациенты с гормон-чувствительным раком предстательной железы получали андроген-депривационную терапию в сочетании с доцетакселом в дозе 75 мг/м2 каждые 3 нед. (7 человек; 17,9 %). Пациенты с кастрат-резистентным раком предстательной железы в первой линии получали абиратерона ацетат в дозе по 1 г в сутки (8 человек; 20,5 %) или доцетаксел в дозе 75 мг/м2 каждые 3 нед. (12 человек; 30,8 %). Во второй линии пациенты получали энзалутамид в дозе 160 мг в сутки (9 человек; 23 %) и кабазитаксел в дозе 75 мг/м2 каждые 3 нед. (3 человека; 7,8 %).

Статистическая обработка результатов исследования осуществлялась с использованием пакетов программ Statistica v. 10. Оценку соответствия параметров выборки критериям нормального распределения определяли путем расчета среднего арифметического, медианы, эксцесса, асимметрии и критерия Шапиро – Уилка. Распределение считалось нормальным, если среднее арифметическое выборки было близко по своему значению к медиане, абсолютные значения эксцесса и асимметрии по модулю не превышали 2, а значение критерия Шапиро – Уилка было достоверно и больше 0,6. Влияние различных параметров на отдаленные результаты лечения оценивалось при помощи логарифмического рангового критерия и критерия Гехана – Вилкоксона. Для выявления совместного влияния нескольких параметров на показатели времени жизни использовалась регрессионная модель пропорциональных интенсивностей Кокса.

РЕЗУЛЬТАТЫ

Для одномерного анализа были выбраны следующие абсолютные показатели концентраций субпопуляций лимфоцитов в микроокружении опухоли и крови, а также спонтанной и индуцированной продукции цитокинов в микроокружении и культуре лимфоцитов пациента. Дополнительно в анализ были включены клинико-морфологические параметры:

  1. Группа с почечно-клеточным раком: а) номинальные — индекс Карновского, локализация метастатических очагов, возраст; б) непрерывные — параметры IMDC (концентрации гемоглобина, нейтрофилов, тромбоцитов, скорректированного кальция), время от постановки диагноза до начала лечения.
  2. Группа с мышечно-инвазивным раком мочевого пузыря: возраст, индекс Карновского, гистопатологическая дифференцировка.
  3. Группа с раком предстательной железы: возраст, индекс Карновского, индекс Глисона, гормоночувствительность, локализация метастатических очагов.

При создании моделей в качестве предельных значений параметров, определяющих интервал риска, относящихся к микроокружению, были использованы медианы значения фактора в изучаемой подгруппе. Для остальных параметров использовались их стандартные референтные значения. В результате одномерного и многомерного анализа были выявлены параметры, влияющие на медиану времени до прогрессирования в группе с почечно-клеточным раком (табл. 2).

 

Таблица 2. Результаты одномерного и многомерного анализа параметров, связанных с медианой времени до прогрессирования в группе больных почечно-клеточным раком

Table 2. Results of univariate and multivariate analysis of parameters associated with median time to progression in a group of patients with renal cell carcinoma

Параметр

Одномерный анализ

Многомерный анализ

ОР

95 % ДИ

р

ОР

95 % ДИ

р

Факторы риска шкалы IMDC

Концентрация скорректированного кальция, ммоль/л

4,6

3,29–13,7

0,025

2,2

0,2–8,1

0,03

Концентрация нейтрофилов, 109

6,5

0,2–6,6

0,04

3,2

0,12–6,3

0,04

Концентрация тромбоцитов, 109

4,7

0,3–5,71

0,03

2,1

0,41–7,23

0,001

Концентрация гемоглобина, г/л

6,8

0,7–11,4

0,04

4,2

1,4–9,23

0,024

Время от постановки диагноза до начала лечения, лет

2,3

0,68–9,21

0,029

1,4

0,2–4,35

0,041

Индекс Карновского, %

5,7

1,4–8,49

0,036

2,4

0,92–6,33

0,047

Субпопуляции лимфоцитов

CD3+CD8+ (К), 109

3,2

0,35–7,47

0,006

CD16+CD56+HLA DR+ (МО), 109

4,7

1,22–11,4

0,043

CD4+CD25+CD127 FoxP3 (МО), 109

6,4

0,34–7,9

0,045

4,1

0,05–7,8

0,042

αβ-Т (К), 109

1,1

0,65–6,9

0,01

γδ-Т (К), 109

1,8

0,8–15,7

0,048

Цитокины

IL-4 (МО), пг/мл

СП

5,8

0,92–9,4

0,048

ИП

6,1

0,44–17,4

0,03

IL-6 (МО), пг/мл

СП

8,4

1,9–14,8

0,04

3,2

1,8–11,2

0,04

ИП

5,34

1,6–11,4

0,049

IL-6 (К), пг/мл

СП

2,1

0,73–4,8

0,03

ИП

1,7

0,94–3,8

0,026

IL-8 (МО), пг/мл

СП

6,52

2,4–11,7

0,01

2,3

1,7–7,9

0,001

ИП

3,47

1,9–10,5

0,02

IL-10 (МО), пг/мл

СП

8,4

6,2–12,8

0,03

2,7

0,9–9,37

0,03

ИП

6,3

0,8–12,4

0,04

Примечание. ОР — отношение рисков; ДИ — доверительный интервал; СП — спонтанная продукция; ИП — индуцированная продукция; IMDC — International Metastatic Renal Cancer Database Consortium (Международный консорциум по изучению метастатического рака почки); МО — микроокружение; К — кровь.

 

При многофакторном анализе выявлено, что на медиану выживаемости без прогрессирования оказывают влияние компоненты шкалы IMDC и иммунологические параметры опухолевого микроокружения: Т-регуляторные клетки и спонтанная продукция IL-6, IL-8, IL-10. Эти показатели были использованы для создания прогностической модели. Параметры прогностической модели и их значения отражены в табл. 3 и 4.

 

Таблица 3. Параметры прогностической модели, связывающей медиану времени до прогрессирования с факторами микроокружения опухоли и показателями IMDC

Table 3. Parameters of a prognostic model relating median time to progression to tumor microenvironment factors and IMDC scores

Параметр

β

k, %

M

Me

95 % ДИ

p

IMDC

Концентрация скорректированного кальция, ммоль/л

0,003

7,2

2,4

4,1

1,8–5,2

0,01

Концентрация нейтрофилов, 109

0,004

9,1

4,52

6,1

3,6–7,1

0,04

Концентрация тромбоцитов, 109

0,006

8,3

212

295

211–334

0,001

Концентрация гемоглобина, г/л

0,003

6,1

112

108

95–123

0,024

Время от постановки диагноза до начала лечения, лет

0,001

8,6

0,041

Индекс Карновского, %

0,003

8,2

0,047

Микроокружение опухоли

CD4+CD25+CD127FoxP3, 109

–0,004

8,9

138

128

112–182

0,042

IL-6, СП, пг/мл

–0,002

12,8

188

139

166–210

0,04

IL-8, CП, пг/мл

–0,003

19,5

156

210

142–235

0,001

IL-10, СП, пг/мл

–0,005

11,3

102

212

87–245

0,03

Примечание. β — коэффициент уравнения регрессии; k — коэффициент влияния параметра; M — среднее арифметическое; Ме — медиана; 95 % ДИ — 95 % доверительный интервал; СП — спонтанная продукция; ИП — индуцированная продукция; IMDC — International Metastatic Renal Cancer Database Consortium (Международный консорциум по изучению метастатического рака почки).

 

Таблица 4. Значение параметров прогностической модели, связывающей медиану времени до прогрессирования с факторами микроокружения опухоли и показателями IMDC

Table 4. The significance of the parameters of the prognostic model relating the median time to progression with tumor microenvironment factors and IMDC indicators

Параметр

Интервал, определяющий риск

ОР

p

IMDC

Концентрация скорректированного кальция, ммоль/л

<2,2 (+); >2,2 (–)

1,9

0,01

Концентрация нейтрофилов, 109

<5,5 (+); >5,5 (–)

2,4

0,037

Концентрация тромбоцитов, 109

<320 (+); >320 (–)

3,6

0,042

Концентрация гемоглобина, г/л

>120 (+); <120 (–)

3,2

0,001

Время от постановки диагноза до начала лечения, лет

<1 (+); >1 (–)

2,6

0,032

Индекс Карновского, %

> 80 % (+); < 80 % (–)

3,1

0,043

Микроокружение опухоли

CD4+CD25+CD127FoxP3, 109

<128 (+); >128 (–)

3,6

0,001

IL-6, СП, пг/мл

<139 (+); >139 (–)

4,1

<0,001

IL-8, CП, пг/мл

<210 (+); >210 (–)

2,8

<0,001

IL-10, СП, пг/мл

<212 (+); >212 (–)

2,9

0,034

Примечание. ОР — относительный риск; IMDC — International Metastatic Renal Cancer Database Consortium (Международный консорциум по изучению метастатического рака почки), СП — спонтанная продукция.

 

Т-регуляторные клетки и спонтанная продукция IL-6, IL-8, IL-10 негативно влияют на величину медианы выживаемости без прогрессирования. Наибольший вклад в прогностическую модель вносят спонтанная продукция IL-8 и IL-6.

Выявлены факторы, влияющие на медиану времени до прогрессирования в группе с мышечно-инвазивным раком мочевого пузыря (табл. 5).

 

Таблица 5. Результаты одномерного и многомерного анализа параметров, связанных с медианой времени до прогрессирования в группе пациентов с мышечно-инвазивным метастатическим раком мочевого пузыря

Table 5. Results of univariate and multivariate analysis of parameters associated with median time to progression in a group of patients with muscle-invasive metastatic bladder cancer

Параметр

Одномерный анализ

Многомерный анализ

ОР

95 % ДИ

р

ОР

95 % ДИ

р

Клинико-морфологические факторы

Гистопатологическая дифференцировка, G

2,9

0,32–3,74

0,001

1,3

0,4–2,25

0,045

Индекс Карновского, %

0,98

0,65–6,24

0,07

Субпопуляции лимфоцитов

CD16+CD56+HLA DR+, 109

5,2

3,26–12,1

0,001

CD3+CD16+CD56+ (МО), 109

4,1

2,6–8,2

0,005

3,2

1,3–4,8

0,001

CD4+CD25+CD127FoxP3 (МО), 109

4,8

0,84–9,8

0,045

γδ-Т (К), 109

3,6

0,8–15,7

0,032

LIN-HLADR-CD33+CD66bCD14+CD15, 109

6,4

0,01–12,54

0,034

Цитокины

IL-4 (МО), пг/мл

ИП

1,4

0,92–11,6

0,004

IL-6 (МО), пг/мл

СП

5,45

0,92–12,3

0,001

2,3

0,8–10,8

0,01

ИП

2,89

0,9–12

0,006

IL-8 (МО), пг/мл

СП

4,34

0,2–8,1

0,004

2,2

0,2–7,6

0,03

ИП

2,7

0,4–8,34

0,001

IL-8 (К), пг/мл

СП

1,6

0,92–3,72

0,028

IL-10 (МО), пг/мл

СП

6,5

0,9–11,3

0,045

3,1

0,2–9,67

0,047

ИП

4,56

0,3–12,2

0,001

IFN-γ (МО), пг/мл

СП

3,5

1,7–14,1

0,045

1,8

0,6–4,23

0,001

IFN-γ (К), пг/мл

СП

0,9

0,62–2,71

0,049

Примечание. ОР — относительный риск; 95 % ДИ — 95 % доверительный интервал; СП — спонтанная продукция; ИП — индуцированная продукция; МО — микроокружение опухоли; К — кровь.

 

При многомерном анализе выявлено, что на медиану выживаемости без прогрессирования оказывает влияние гистопатологическая дифференцировка опухоли и иммунологические параметры опухолевого микроокружения: натуральные киллеры с Т-клеточным рецептором и спонтанная продукция IL-6, IL-8, IL-10, IFN-γ. Эти факторы были использованы для создания прогностической модели, параметры которой и их значения отражены в табл. 6 и 7.

 

Таблица 6. Параметры прогностической модели, связывающей медиану времени до прогрессирования с факторами микроокружения и клинико-морфологическими факторами в группе пациентов с мышечно-инвазивным метастатическим раком мочевого пузыря

Table 6. Parameters of a prognostic model linking the median time to progression with microenvironmental and clinical-morphological factors in a group of patients with muscle-invasive metastatic bladder cancer

Параметр

β

k, %

M

Me

95 % ДИ

p

Клинико-морфологические факторы

Гистопатологическая дифференцировка, G

0,004

15,6

0,045

Микроокружение опухоли

CD3+CD16+CD56+ (ТНК-клетки), 109

0,003

16,3

196

180

165–214

0,001

IL-6, СП, пг/мл

–0,004

16,4

182

165

144–223

0,01

IL-8, СП, пг/мл

–0,001

10,5

430

312

280–416

0,03

IL-10, СП, пг/мл

–0,005

19,8

102

176

87–242

0,047

IFN-γ, СП, пг/мл

0,007

21,4

325

362

290–512

0,001

Примечание. β — коэффициент уравнения регрессии; k — коэффициент влияния параметра; M — среднее арифметическое; Ме — медиана; 95 % ДИ — 95 % доверительный интервал; СП — спонтанная продукция.

 

Таблица 7. Значения параметров прогностической модели, связывающей медиану времени до прогрессирования с клинико-морфологическими факторами и показателями микроокружения опухоли, в группе пациентов с мышечно-инвазивным метастатическим раком мочевого пузыря

Table 7. The significance of the parameters of a prognostic model linking the median time to progression with clinical and morphological factors and indicators of the tumor microenvironment in a group of patients with muscle-invasive metastatic bladder cancer

Параметр

Интервал, определяющий риск

ОР

p

Клинико-морфологические факторы

Гистопатологическая дифференцировка, G

G2 (+); G3 (–)

3,4

0,01

Микроокружение опухоли

CD3+CD16+CD56+ (ТНК-клетки), 109

>180 (+); <180 (–)

3,2

0,001

IL-6, СП, пг/мл

<165 (+); >165 (–)

4,4

0,02

IL-8, СП, пг/мл

<312 (+); >312 (–)

5,2

0,01

IL-10, СП, пг/мл

<176 (+); >176 (–)

3,9

0,044

IFN-γ, СП, пг/мл

>362 (+); <362 (–)

2,8

0,02

Примечание. ОР — относительный риск; СП — спонтанная продукция.

 

Факторы, влияющие на медиану времени до прогрессирования в группе с раком предстательной железы, отражены в табл. 8.

 

Таблица 8. Результаты одномерного и многомерного анализа параметров, связанных с медианой времени до прогрессирования в группе пациентов с раком предстательной железы

Table 8. Results of univariate and multivariate analyzes of parameters associated with median time to progression in a group of patients with prostate cancer

Параметр

Одномерный анализ

Многомерный анализ

ОР

95 % ДИ

p

ОР

95 % ДИ

р

Клинико-морфологические факторы

Возраст, лет

2,9

0,03–7,12

0,004

Гормоночувствительность, да/нет

6,4

1,22–12,8

0,003

4,7

0,8–9,6

0,043

Индекс Глисона, баллы

4,3

2,53–12,1

0,001

2,1

0,3–7,3

0,04

Индекс Карновского, %

0,92

0,5–7,29

0,092

Субпопуляции лимфоцитов

CD3+CD8+ (МО), 109

5,9

0,75–9,25

0,049

CD3CD16+CD56+ (К), 109

4,2

2,1–17,3

0,001

CD16+CD56+HLA DR+ (К), 109

6,7

3,26–12,1

0,001

CD3+CD16+CD56+ (МО), 109

4,1

2,6–8,2

0,005

CD4+CD25+CD127 (МО), 109

2,82

0,34–7,9

0,045

LIN-HLADR-CD33CD66bCD14CD15 (МО), 109

8,2

2,78–12,24

0,022

6,4

1,5–14,1

0,035

Цитокины

IL-4 (МО), пг/мл

СП

6,9

1,73–12,3

0,031

ИП

3,4

0,92–11,6

0,004

IL-6 (МО), пг/мл

СП

9,3

2,34–16,1

0,003

5,1

1,3–9,8

0,001

ИП

5,34

1,6–11,4

0,049

IL-6 (К), пг/мл

СП

2,2

0,9–4,6

0,032

IL-8 (МО), пг/мл

СП

5,29

1,2–9,45

0,032

4,7

2,2–11,9

0,043

ИП

4,85

1,9–12,6

0,004

IL-8 (К), пг/мл

СП

2,3

0,92–4,3

0,039

ИП

0,8

0,64–2,2

0,048

IL-10 (МО), пг/мл

СП

9,1

1,7–15,4

0,045

0,34

0,2–5,67

0,029

ИП

6,26

0,9–17,3

0,01

Примечание. ОР — отношение рисков; 95 % ДИ — 95 % доверительный интервал; СП — спонтанная продукция; ИП — индуцированная продукция; МО — микроокружение; К — кровь.

 

При многомерном анализе выявлено, что на медиану выживаемости без прогрессирования оказывают гормоночувствительность, индекс Глисона, иммунологические параметры опухолевого микроокружения: миелоидные клетки супрессорного происхождения, спонтанная продукция IL-6, IL-8, IL-10. Эти факторы были использованы для создания прогностической модели. Параметры прогностической модели и их значения отражены в табл. 9 и 10.

 

Таблица 9. Параметры прогностической модели, связывающей медиану времени до прогрессирования с факторами микроокружения в группе пациентов с раком предстательной железы

Table 9. Parameters of a prognostic model linking the median time to progression with microenvironmental factors in a group of patients with prostate cancer

Параметр

β

k, %

M

Me

95 % ДИ

p

Клинико-морфологические факторы

Гормоночувствительность, да/нет

0,004

24,5

0,026

Индекс Глисона, баллы

0,008

6,5

0,041

Микроокружение опухоли

LIN-HLADR-CD33+CD66bCD14+CD15 (MDSC), 109

–0,002

16,3

36

28

20–93

0,035

IL-6, СП, пг/мл

–0,004

21,4

218

227

172–223

0,001

IL-8, СП, пг/мл

–0,001

12,7

456

512

420–610

0,043

IL-10, СП, пг/мл

0,007

18,6

214

310

198–450

0,029

Примечание. β — коэффициент уравнения регрессии; k — коэффициент влияния параметра; M — среднее арифметическое; Ме — медиана; 95 % ДИ — 95 % доверительный интервал; СП — спонтанная продукция; MDSC — супрессорные клетки миелоидного происхождения.

 

Таблица 10. Значения параметров прогностической модели, связывающей медиану времени до прогрессирования с клинико-морфологическими факторами и показателями микроокружения опухоли в группе пациентов с раком предстательной железы

Table 10. The significance of the parameters of a prognostic model linking the median time to progression with clinical and morphological factors and indicators of the tumor microenvironment in a group of patients with prostate cancer

Параметр

Интервал, определяющий риск

ОР

p

Клинико-морфологические факторы

Гормоночувствительность, да/нет

ГЧРПЖ (+); КРРПЖ (–)

2,2

0,04

Индекс Глисона, баллы

≤7 (+); >7 (–)

2,8

0,032

Микроокружение опухоли

LIN-HLADR-CD33+CD66bCD14+ CD15 (MDSC), 109

<28 (+); >28 (–)

3,1

0,007

IL-6, СП, пг/мл

<227 (+); >227 (–)

2,5

<0,001

IL-8, СП, пг/мл

<512 (+); >512 (–)

2,7

0,049

IL-10, СП, пг/мл

<310 (+); >310 (–)

2,4

0,025

Примечание. ОР — относительный риск; ГЧРПЖ — гормон-чувствительный рак предстательной железы; КРРПЖ — кастрат-резистентный рак предстательной железы; MDSC — супрессорные клетки миелоидного происхождения; СП — спонтанная продукция.

 

Наибольший вклад в прогностическую модель вносят гормоночувствительность и спонтанная продукция IL-6.

В результате многомерного анализа созданы модели, включающие значимые клинико-морфологические показатели и различное число факторов риска микроокружения (табл. 11, 12). В группе больных почечно-клеточным раком анализ медианы выживаемости проводился в подгруппах, выделенных с использованием стандартной прогностической шкалы (IMDC) и с включением разного числа факторов риска микроокружения.

 

Таблица 11. Результаты лечения больных почечно-клеточным раком (медиана времени до прогрессирования, мес.)

Table 11. Results of treatment of patients with renal cell cancer (median time to progression, months)

Факторы микроокружения

IMDC

хороший

промежуточный

плохой

0–1

12

8,5

6,1

p = 0,036*; p = 0,042**; p < 0,0011; p = 0,0022

p = 0,031*; p = 0,029**; p = 0,0181; p = 0,0422

p < 0,001*; p = 0,049**

2–3

7,4

6,4

4,2

p < 0,001***;

p = 0,0361; p = 0,0222

p = 0,042***; p > 0,053

p = 0,0343

Более 3

4,1

3,4

2,1

p = 0,0481; p = 0,0212

p > 0,053

Примечание. IMDC — International Metastatic Renal Cancer Database Consortium (Международный консорциум по изучению метастатического рака почки); *достоверность различий показателя в подгруппах с 0–1 и 2–3 факторами риска микроокружения; **достоверность различий показателя в подгруппах с 0–1 и более 3 факторами риска микроокружения; ***достоверность различий показателя в подгруппах с 2–3 и более 3 факторами риска микроокружения; 1достоверность различий показателя в подгруппах с хорошим и промежуточным прогнозом по IMDC; 2достоверность различий показателя в подгруппах с хорошим и плохим прогнозом по IMDC; 3достоверность различий показателя в подгруппах с промежуточным и плохим прогнозом по IMDC.

 

Таблица 12. Результаты лечения пациентов с метастатическими формами рака мочевого пузыря и предстательной железы в зависимости от числа факторов риска, связанных с микроокружением

Table 12. Results of treatment of patients with metastatic forms of bladder and prostate cancer depending on the number of risk factors associated with the microenvironment

Тип опухоли

Факторы риска модели

Число факторов риска микроокружения опухоли

Время до прогрессирования, Ме, мес.

клинико-морфологические

микроокружение опухоли

Рак предстательной железы

Гормон-чувствительность, индекс Глисона

IL-6 (СП); IL-8 (СП); IL-10 (СП); MDSC

0–1

10,4

2–3

6,1

4

3,2

Рак мочевого пузыря

Гистопатологическая дифференцировка

IL-6 (СП); IL-8 (СП); IL-10 (СП); IFN-γ (СП); ТНК

0–1

9,4

2–3

6,9

4–5

3,8

Примечание. СП — спонтанная продукция; Me — медиана; MDSC — супрессорные клетки миелоидного происхождения.

 

Достоверность различий показателя медианы времени до прогрессирования не достигнута в подгруппах с промежуточным и плохим прогнозом по IMDC с наличием 2–3, а также более 3 факторов риска микроокружения. Это связано с небольшим числом больных в них. Во всех остальных подгруппах различия были достоверны.

ОБСУЖДЕНИЕ

Оценка количественных и качественных характеристик микроокружения опухоли является важным инструментом прогноза и индивидуализации лечебных программ.

Разработанные прогностические модели для всех изучаемых групп включают спонтанную продукцию трех цитокинов: IL-6, IL-8 и IL-10. В прогностические модели для почечно-клеточного рака и рака предстательной железы вошли также иммуносупрессивные компоненты: MDSC и Treg. Метастатический мышечно-инвазивный рак мочевого пузыря отличается от первых двух нозологических форм по структуре прогностической модели. На величину медианы времени до прогрессирования оказывают влияние компоненты, способствующие опухолевой деструкции: ТНК-клетки и IFN-γ. Эти различия связаны, с одной стороны, с молекулярно-биологическими особенностями рака мочевого пузыря, а с другой — с различием в фазах взаимодействия опухоли и иммунной системы на момент выявления. В настоящее время отсутствуют данные о четкой корреляции степени распространенности опухоли и фазы иммуноредактирования [6]. Субпопуляционный анализ компонентов микроокружения позволяет точнее судить об этом процессе.

В целом, полученные данные согласуются с результатами экспериментальных исследований других авторов. Большинство образцов почечно-клеточного рака в фазе равновесия по структуре относятся к группе «горячих» опухолей. Они характеризуются высокой частотой лимфоидной инфильтрации, низким содержанием в инфильтратах иммуносупрессивных компонентов, а также наличием нескольких типов эффекторных клеток. Анализ экспрессии генов часто выявляет паттерны, связанные с активацией иммунного ответа, воспаления и ангиогенеза. В фазе ускользания существенно увеличивается содержание Тreg и выявляются MDSC, а также повышается уровень экспрессии IL-4, IL-6, IL-8, VEGF [25]. Рак предстательной железы по составу микроокружения относится чаще всего к «холодным» или «измененным иммуноисключенным» опухолям. Лимфоидная инфильтрация встречается редко. При ее наличии в составе микроокружения в большом количестве выявляются Treg, MDSC, МФ2, Th17. Отмечается гиперэкспрессия ряда факторов роста, цитокинов и хемокинов: VEGF (сосудистый эндотелиальный фактор роста), TGF-β (трансформирующий фактор роста бета), EGF (эпидермальный фактор роста), IL-10, IL-6, IL-23, IL-17, IL-8, CХСL-1, CХСL-8, CХ3СL-1, CХСL-12 [26]. Мышечно-инвазивный уротелиальный рак относятся к «горячим» или «измененным иммуносупрессивным» опухолям. Часто выявляются лимфоидные инфильтраты, содержащие разнообразные эффекторные клетки: NKT, CTL, МФ1, НФ, γδ-T, B-лимфоциты. Иммуносупрессорные клетки и экспрессия иммуносупрессивных цитокинов (IL-6, IL-10, IL-17, IL-4) выявляются редко [27].

ЗАКЛЮЧЕНИЕ

Разработанные прогностические модели базируются на современных достижениях онкоиммунологии и после проведения многоцентровых валидационных исследований, могут быть рекомендованы для клинического применения.

ДОПОЛНИТЕЛЬНАЯ ИНФОРМАЦИЯ

Вклад авторов. Все авторы внесли существенный вклад в разработку концепции, проведение исследования и подготовку статьи, прочли и одобрили финальную версию перед публикацией. Личный вклад каждого автора: О.Е. Молчанов — подготовка и редактирование текста рукописи; Д.Н. Майстренко — утверждение окончательного варианта рукописи; Д.А. Гранов — концепция исследования; М.И. Школьник — анализ полученных данных; И.Ю. Лисицын, А.Д. Белов, А.Ю. Кнеев — сбор и обработка материала.

Финансирование. Работа выполнена при финансовой поддержке Министерства здравоохранения Российской Федерации (Государственное задание Э.03-2021; 121040200136-0).

Конфликт интересов. Авторы заявляют об отсутствии конфликта интересов, требующего раскрытия в данной статье.

Этический комитет. Не применимо.

ADDITIONAL INFORMATION

Authors’ contribution. Thereby, all authors made a substantial contribution to the conception of the study, acquisition, analysis, interpretation of data for the work, drafting and revising the article, final approval of the version to be published and agree to be accountable for all aspects of the study. Personal contribution of each author: O.E. Molchanov — preparation and editing of the manuscript text; D.N. Maistrenko — approval of the final version of the manuscript; D.A. Granov — research concept; M.I. Shkolnik — analysis of the obtained data; I.Yu. Lisitsyn, A.D. Belov, A.Yu. Kneev — collection and processing of material.

Funding source. The work was carried out with the financial support of the Ministry of Health of the Russian Federation (State assignment Э.03-2021; 121040200136-0).

Competing interests. Authors declare that they have no competing interests.

Ethics approval. Not applicable

×

About the authors

Oleg E. Molchanov

A.M. Granov Russian Research Center of Radiology and Surgical Technologies

Author for correspondence.
Email: molchanovo@mail.ru
ORCID iD: 0000-0003-3882-1720
SPIN-code: 5557-6484
Scopus Author ID: 25637650600

MD, Dr. Sci. (Medicine)

Russian Federation, Saint Petersburg

Dmitrii N. Maistrenko

A.M. Granov Russian Research Center of Radiology and Surgical Technologies

Email: may64@inbox.ru
ORCID iD: 0000-0001-8174-7461
SPIN-code: 7363-4840
Scopus Author ID: 57193120885

MD, Dr. Sci. (Medicine)

Russian Federation, Saint Petersburg

Dmitrii A. Granov

A.M. Granov Russian Research Center of Radiology and Surgical Technologies

Email: d.granov@gmail.ru
ORCID iD: 0000-0002-8746-8452
SPIN-code: 5256-2744

MD, Dr. Sci. (Medicine), Professor, Academician of the Russian Academy of Sciences

Russian Federation, Saint Petersburg

Mikhail I. Shkolnik

A.M. Granov Russian Research Center of Radiology and Surgical Technologies

Email: shkolnik_phd@mail.ru
ORCID iD: 0000-0003-0589-7999
SPIN-code: 4743-9236

MD, Dr. Sci. (Medicine), Professor

Russian Federation, Saint Petersburg

Igor Yu. Lisitsyn

A.M. Granov Russian Research Center of Radiology and Surgical Technologies

Email: urologlis@mail.ru

MD, Cand. Sci. (Medicine)

Russian Federation, Saint Petersburg

Andrei D. Belov

A.M. Granov Russian Research Center of Radiology and Surgical Technologies

Email: doktorbeloff@gmail.com
ORCID iD: 0000-0002-9652-4313
SPIN-code: 2637-0704

Cand. Sci. (Medicine)

Russian Federation, Saint Petersburg

Aleksei Yu. Kneev

A.M. Granov Russian Research Center of Radiology and Surgical Technologies

Email: alexmedspb@gmail.com
ORCID iD: 0000-0002-5899-8905
SPIN-code: 8015-1529

Cand. Sci. (Medicine)

Russian Federation, Saint Petersburg

References

  1. Yang L, Lin PS. Mechanisms that drive inflammatory tumor microenvironment, tumor heterogeneity, and metastatic progression. Semin Cancer Biol. 2017;47:185–195. doi: 10.1016/j.semcancer.2017.08.001
  2. Buoncervello M, Gabriele L, Toschi E. The Janus face of tumor microenvironment targeted by immunotherapy. Int J Mol Sci. 2019;20(17):4320. doi: 10.3390/ijms20174320
  3. Jarosz-Biej M, Smolarczyk R, Cihon T, Kulach N. Tumor microenvironment as a “Game Changer” in cancer radiotherapy. Int J Mol Sci. 2019;20(13):3212. doi: 10.3390/ijms20133212
  4. Hanahan D, Coussens LM. Accessories to the crime: functions of cells recruited to the tumor microenvironment. Cancer Cell. 2012;21(3):309–322. doi: 10.1016/j.ccr.2012.02.022
  5. Dunn GP, Old LJ, Schreiber RD. The three Es of cancer immunoediting. Annu Rev Immunol. 2004;22(1):329–360. doi: 10.1146/annurev.immunol.22.012703.104803
  6. Liu S, Sun Q, Ren X. Novel strategies for cancer immunotherapy: counter-immunoediting therapy. J Hematol Oncol. 2023;16(1):38. doi: 10.1186/s13045-023-01430-8
  7. Talukdar S, Bhoopathi P, Emdad L, et al. Dormancy and cancer stem cells: an enigma for cancer therapeutic targeting. Adv Cancer Res. 2019;141:43–84. doi: 10.1016/bs.acr.2018.12.002
  8. Zeng Z, Fu M, Hu Y, et al. Regulation and signaling pathways in cancer stem cells: implication for targeted therapy for cancer. Mol Cancer. 2023;22(1):172. doi: 10.1186/s12943-023-01877-w
  9. Locati M, Curtale G, Mantovani A. Diversity, Mechanisms and significance of macrophage plasticity. Annu Rev Pathol. 2020;15: 123–147. doi: 10.1146/annurev-pathmechdis-012418-012718
  10. Zhao L, Dong Y, Zhang Y, et al. Biophysical heterogeneity of myeloid-derived microenvironement to regulate resistance to cancer immunotherapy. Adv Drug Deliv Rev. 2022;191:114585. doi: 10.1016/j.addr.2022.114585
  11. Ohue Y, Nishikava H. Regulatory T (Treg) cells in cancer: can Treg cells be a new therapeutic target? Cancer Sci. 2019;110(7): 2080–2089. doi: 10.1111/cas.14069
  12. Wculek SK, Cueto FJ, Mujal AM, et al. Dendritic cells in cancer immunology and immunotherapy. Nat Rev Immunol. 2019;20(1): 7–24. doi: 10.1038/s41577-019-0210-z
  13. Wu Z, Zheng Y, Han Y, et al. CD3+CD4+CD8-(double-negative) T cells in inflammation, immune disorders and cancer. Front Immunol. 2022;13:816005. doi: 10.3389/fimmu.2022.816005
  14. Bruchard M, Ghiringhelli F. Deciphering the roles of innate lymphoid cells in cancer. Front Immunol. 2019;10:656. doi: 10.3389/fimmu.2019.00656
  15. Chiossone L, Dumas PY, Vienne M, Vivier E. Natural killer cells and other innate lymphoid cells in cancer. Nat Rev Immunol. 2018;18(11):671–688. doi: 10.1038/s41577-018-0061-z
  16. Ostroumov D, Fekete-Drimusz N, Saborowski M, et al. CD4 and CD8 T lymphocyte interplay in controlling tumor growth. Cell Mol Life Sci. 2018;75(4):689–713. doi: 10.1007/s00018-017-2686-7
  17. Molchanov O, Maistrenko D, Granov D, et al. Features of the microenvironment of oncourological tumors. Urology reports (St. Petersburg). 2022;12(4):313–331. doi: 10.17816/uroved112576
  18. Pages F, Mlecnik B, Marliot F, et al. International validation of the consensus immunoscore for the classification of colon cancer: a prognostic and accuracy study. Lancet. 2018;391(1035):2128–2139. doi: 10.1016/S0140-6736(18)30789-X
  19. Galon J, Bruni D. Approaches to treat immune hot, altered and cold tumors with combination immunotherapies. Nat Rev Drug Discov. 2019;18(3):197–218. doi: 10.1038/s41573-018-0007-y
  20. Klatte T, Rossi SH, Stewart GD. Prognostic factors and prognostic models for renal cell carcinoma. World J Urol. 2018;36(12): 1943–1952. doi: 10.1007/s00345-018-2309-4
  21. Molchanov O, Maistrenko D, Granov D, Lisitsyn I. Prognostic value of tumor growth rate and biomarker dynamics in patients with renal cell carcinoma. Urology Reports (St. Petersburg). 2020;10(4): 281–291. doi: 10.17816/uroved50899
  22. Heng D, Xie W, Regan M, et al. Prognostic factors for overall survival in patients with metastatic renal cell carcinoma treated with vascular endothelial growth factor-targeted agents: results from a large, multicenter study. J Clin Oncol. 2009;27(34):5794–5799. doi: 10.1200/jco.2008.21.4809
  23. Eisenhauer E, Therasse P, Bogaerts J, et al. New response evaluation criteria in solid tumors: revised RECIST guideline. Eur J Cancer. 2009;45(2):228–247. doi: 10.1016/j.ejca.2008.10.026
  24. Khaydukov S, Baidun L, Zurochka A, Totolyan A. Standardized technology “Study of subpopulation composition of peripheral blood lymphocytes using flow cytofluorimeters-analyzers”. Medical Immunology (Russia). 2012;14(3):255–268. (In Russ.) doi: 10.15789/1563-0625-2012-3-255-268
  25. Anker J, Miller J, Taylor N, et al. From bench to bedside: how the tumor microenvironement is impacting the future of immunotherapy for renal cell carcinoma. Cells. 2021;10(11):3231. doi: 10.3390/cells10113231
  26. Amsberg G, Alsdorf W, Karagiannis P, et al. Immunotherapy in advanced prostate cancer — light at the end of the tunnel? Int J Mol Sci. 2022;23(5):2569. doi: 10.3390/ijms23052569
  27. Crispen P, Kusmartsev S. Mechanisms of immune evasion in bladder cancer. Cancer Immunol Immunother. 2020;69(1):3–14. doi: 10.1007/s00262-019-02443-4

Supplementary files

Supplementary Files
Action
1. JATS XML

Copyright (c) 2023 Eco-Vector

Creative Commons License
This work is licensed under a Creative Commons Attribution-NonCommercial-NoDerivatives 4.0 International License.

СМИ зарегистрировано Федеральной службой по надзору в сфере связи, информационных технологий и массовых коммуникаций (Роскомнадзор).
Регистрационный номер и дата принятия решения о регистрации СМИ: серия ПИ №ФС77-65570 от 04 мая 2016 г.


This website uses cookies

You consent to our cookies if you continue to use our website.

About Cookies