Регуляция Экспрессии Генов, или Что Заставляет Гены Работать
- Авторы: Маслакова А.А1, Долгих В.А1, Землянская Е.В1,2
-
Учреждения:
- Федеральный Исследовательский Центр Институт Цитологии и Генетики СО РАН
- Новосибирский Национальный Исследовательский Государственный Университет
- Выпуск: № 10 (2023)
- Страницы: 13-18
- Раздел: Статьи
- URL: https://journals.eco-vector.com/0032-874X/article/view/627850
- DOI: https://doi.org/10.7868/S0032874X23100022
- ID: 627850
Цитировать
Полный текст
![Открытый доступ](https://journals.eco-vector.com/lib/pkp/templates/images/icons/text_open.png)
![Доступ закрыт](https://journals.eco-vector.com/lib/pkp/templates/images/icons/text_unlock.png)
![Доступ закрыт](https://journals.eco-vector.com/lib/pkp/templates/images/icons/text_lock.png)
Аннотация
Гены несут наследственную информацию, которая одинакова во всех клетках многоклеточного организма. Различное проявление генов обеспечивает формирование разных признаков (например, формирование различных типов клеток). Механизмы, позволяющие настроить работу генов, находятся в центре внимания современных исследований. Технологические достижения двух последних десятилетий открывают широкие перспективы для более глубокого изучения этих механизмов. В обзоре мы рассматриваем, почему гены проявляются по-разному, как измерить проявление гена и установить его причины.
Об авторах
А. А Маслакова
Федеральный Исследовательский Центр Институт Цитологии и Генетики СО РАН
Email: maslakova@bionet.nsc.ru
Новосибирск, Россия
В. А Долгих
Федеральный Исследовательский Центр Институт Цитологии и Генетики СО РАН
Email: dolgikh@bionet.nsc.ru
Новосибирск, Россия
Е. В Землянская
Федеральный Исследовательский Центр Институт Цитологии и Генетики СО РАН; Новосибирский Национальный Исследовательский Государственный Университет
Email: ezemlyanskaya@bionet.nsc.ru
Новосибирск, Россия; Новосибирск, Россия
Список литературы
- Roy A. L., Singer D. S. Core promoters in transcription: old problem, new insights. Trends Biochem. Sci. 2015; 40(3): 165–171.doi: 10.1016/j.tibs.2015.01.007.
- Schmitz R. J., Grotewold E., Stam M. Cis-regulatory sequences in plants: Their importance, discovery, and future challenges. Plant Cell. 2022; 34(2): 718–741. doi: 10.1093/plcell/koab281.
- Weber B., Zicola J., Oka R. et al. Plant Enhancers: A Call for Discovery. Trends Plant Sci. 2016; 21(11): 974–987. doi: 10.1016/j.tplants.2016.07.013.
- Panigrahi A., O’Malley B. W. Mechanisms of enhancer action: the known and the unknown. Genome Biol. 2021; 22(1): 108.doi: 10.1186/s13059-021-02322-1.
- Szabo Q., Bantignies F., Cavalli G. Principles of genome folding into topologically associating domains. Sci. Adv. 2019; 5(4): eaaw1668. doi: 10.1126/sciadv.aaw1668.
- Liu C., Cheng Y. J., Wang J. W. et al. Prominent topologically associated domains differentiate global chromatin packing in rice from Arabidopsis. Nat. Plants. 2017; 3(9): 742–748. doi: 10.1038/s41477-017-0005-9.
- Liu C., Wang C., Wang G. et al. Genome-wide analysis of chromatin packing in Arabidopsis thaliana at single-gene resolution. Genome Res. 2016; 26(8): 1057–1068. doi: 10.1101/gr.204032.116.
- Li B., Carey M., Workman J. L. The role of chromatin during transcription. Cell. 2007; 128(4): 707–719. doi: 10.1016/j.cell.2007.01.015.
- Zentner G. E., Henikoff S. Regulation of nucleosome dynamics by histone modifications. Nat. Struct. Mol. Biol. 2013; 20(3): 259–266. doi: 10.1038/nsmb.2470.
- Zhang H., Lang Z., Zhu J. K. Dynamics and function of DNA methylation in plants. Nat. Rev. Mol. Cell Biol. 2018; 19: 489–506. doi: 10.1038/s41580-018-0016-z.
- Strahl B. D., Allis C. D. The language of covalent histone modifications. Nature. 2000; 403(6765): 41–45. doi: 10.1038/47412.
- Kim S., Wysocka J. Deciphering the multi-scale, quantitative cis-regulatory code. Mol. Cell. 2023; 83(3): 373–392. doi: 10.1016/j.molcel.2022.12.032.
- Trayhurn P. Northern blotting. Proc. Nutr. Soc. 1996; 55(1B): 583–539. doi: 10.1079/pns19960051.
- Gibson U. E., Heid C. A., Williams P. M. A novel method for real time quantitative RT-PCR. Genome Res. 1996; 6(10): 995–1001. doi: 10.1101/gr.6.10.995.
- Volgin D. V. Gene expression: analysis and quantitation. Animal Biotechnology. A. S. Verma (ed.). 2014; 307–325. doi: 10.1016/B978-0-12-416002-6.00017-1.
- Wang Z., Gerstein M., Snyder M. RNA-Seq: a revolutionary tool for transcriptomics. Nat. Rev. Genet. 2009; 10(1): 57–63. doi: 10.1038/nrg2484.
- Grada A., Weinbrecht K. Next-generation sequencing: methodology and application. J. Invest. Dermatol. 2013; 133(8): e11. doi: 10.1038/jid.2013.248.
- Boyle A. P., Davis S., Shulha H. P. et al. High-resolution mapping and characterization of open chromatin across the genome. Cell. 2008; 132(2): 311–322. doi: 10.1016/j.cell.2007.12.014.
- Buenrostro J. D., Giresi P. G., Zaba L. C. et al. Transposition of native chromatin for fast and sensitive epigenomic profiling of open chromatin, DNA-binding proteins and nucleosome position. Nat. Methods. 2013; 10(12): 1213–1218. doi: 10.1038/nmeth.2688.
- Mieczkowski J., Cook A., Bowman S.K. et al. MNase titration reveals differences between nucleosome occupancy and chromatin accessibility. Nat. Commun. 2016; 7: 11485. doi: 10.1038/ncomms11485.
- Kim T. H., Ren B. Genome-wide analysis of protein-DNA interactions. Annu. Rev. Genomics Hum. Genet. 2006; 7: 81–102. doi: 10.1146/annurev.genom.7.080505.115634.
- Li Q., Hermanson P. J., Springer N. M. Detection of DNA Methylation by Whole-Genome Bisulfite Sequencing. Methods Mol. Biol. 2018; 1676: 185–196. doi: 10.1007/978-1-4939-7315-6_11.
- Muerdter F., Boryń Ł. M., Arnold C. D. STARR-seq — principles and applications. Genomics. 2015; 106(3): 145–150. doi: 10.1016/j.ygeno.2015.06.001.
- Belton J. M., McCord R. P., Gibcus J. H. et al. Hi-C: a comprehensive technique to capture the conformation of genomes. Methods. 2012; 58(3): 268–276. doi: 10.1016/j.ymeth.2012.05.001.
- Libbrecht M. W., Noble W. S. Machine learning applications in genetics and genomics. Nat. Rev. Genet. 2015; 16: 321–332. doi: 10.1038/nrg3920.
- de Almeida B. P., Reiter F., Pagani M. et al. DeepSTARR predicts enhancer activity from DNA sequence and enables the de novo design of synthetic enhancers. Nat. Genet. 2022; 54(5): 613–624. doi: 10.1038/s41588-022-01048-5.
- Song X., Meng X., Guo H. et al. Targeting a gene regulatory element enhances rice grain yield by decoupling panicle number and size. Nat. Biotechnol. 2022; 40(9): 1403–1411. doi: 10.1038/s41587-022-01281-7.
Дополнительные файлы
![](/img/style/loading.gif)