Содержание Т-регуляторных клеток в периферической крови женщин и эффективность экстракорпорального оплодотворения


Цитировать

Полный текст

Открытый доступ Открытый доступ
Доступ закрыт Доступ предоставлен
Доступ закрыт Доступ платный или только для подписчиков

Аннотация

Цель исследования. Выявление зависимости между содержанием T-регуляторных клеток (Трег) в периферической крови пациенток и наступлением беременности при ЭКО. Материал и методы. Проводилось проспективное пилотное исследование, в котором приняли участие пациентки с трубным бесплодием, включенные в программу ЭКО (n=36). Оценивали процентное содержание Трег с фенотипом CD4+CD25 highCD127 low/- в субпопуляции CD4+ лимфоцитов периферической крови пациенток и анализировали зависимость между содержанием Трег и наступлением беременности. Результаты исследования. Содержание Трег в группе женщин с наступившей беременностью было существенно ниже (p=0,0045). С помощью ROC-анализа (площадь под кривой составила 0,781) было показано, что частота наступления беременности существенно выше при содержании Трег46,3% (p=0,0003). Заключение. Содержание Трег в периферической крови женщин является прогностическим фактором для оценки вероятности наступления беременности в программе ЭКО.

Полный текст

Доступ закрыт

Об авторах

Марина Аркадьевна Николаева

ФГБУ Научный центр акушерства, гинекологии и перинатологии им. академика В.И. Кулакова Минздрава России

Email: nikolaeva_ma@mail.ru
д.б.н., в.н.с. лаборатории клинической иммунологии

Елена Олеговна Степанова

ФГБУ Научный центр акушерства, гинекологии и перинатологии им. академика В.И. Кулакова Минздрава России

Email: elena2404.07@mail.ru
м.н.с. лаборатории клинической иммунологии

Алина Анатольевна Бабаян

ФГБУ Научный центр акушерства, гинекологии и перинатологии им. академика В.И. Кулакова Минздрава России

Email: alinababayan@yandex.ru
аспирант отделения вспомогательных технологий в лечении бесплодия

Людмила Викторовна Ванько

ФГБУ Научный центр акушерства, гинекологии и перинатологии им. академика В.И. Кулакова Минздрава России

Email: LVanko@oparina4.ru
д.м.н., профессор, в.н.с. лаборатории клинической иммунологии

Вероника Юрьевна Смольникова

ФГБУ Научный центр акушерства, гинекологии и перинатологии им. академика В.И. Кулакова Минздрава России

Email: v_smolnikova@oparina4.ru
д.м.н., в.н.с. отделения вспомогательных технологий в лечении бесплодия

Елена Анатольевна Калинина

ФГБУ Научный центр акушерства, гинекологии и перинатологии им. академика В.И. Кулакова Минздрава России

Email: e_kalinina@oparina4.ru
д.м.н., руководитель отделения вспомогательных технологий в лечении бесплодия

Любовь Валентиновна Кречетова

ФГБУ Научный центр акушерства, гинекологии и перинатологии им. академика В.И. Кулакова Минздрава России

Email: l_krechetova@oparina4.ru
к.м.н., зав. лабораторией клинической иммунологии

Список литературы

  1. Ferraretti A.P., Goossens V., Kupka M., Bhattacharya S., de Mouzon J., Castilla J.A. et al. Assisted reproductive technology in Europe, 2009: results generated from European registers by ESHRE. Hum. Reprod. 2013; 28(9): 2318-31.
  2. Корсак В.С., Смирнова А.А., Шурыгина О.В. Регистр центров ВРТ России. Отчет за 2011 год. Проблемы репродукции. 2013; 5: 7-21
  3. Robertson S.A. Seminal plasma and male factor signalling in the female reproductive tract. Cell Tissue Res. 2005; 322(1): 43-52.
  4. Von Wolff M., Rösner S., Thöne C., Pinheiro R.M., Jauckus J., Bruckner T. et al. Intravaginal and intracervical application of seminal plasma in in vitro fertilization or intracytoplasmic sperm injection treatment cycles - a double-blind, placebo-controlled, randomized pilot study. Fertil. Steril. 2009; 91(1): 167-72.
  5. Chicea R., Ispasoiu F., Focsa M. Seminal plasma insemination during ovumpickup-a method to increase pregnancy rate in IVF/ICSI procedure. A pilot randomized trial. J. Assist. Reprod. Genet. 2013; 30(4): 569-74.
  6. Friedler S., Ben-Ami I., Gidoni Y., Strassburger D., Kasterstein E., Maslansky B. et al. Effect of seminal plasma application to the vaginal vault in in vitro fertilization or intracytoplasmic sperm injection treatment cycles-a double-blind, placebo-controlled, randomized study. J. Assist. Reprod. Genet. 2013; 30(7): 907-11.
  7. Sakaguchi S., Sakaguchi N., Asano M., Itoh M., Toda M. Immunologic selftolerance maintained by activated T cells expressing IL-2 receptor alpha-chains (CD25): breakdown of a single mechanism of self-tolerance causes various immune diseases. J. Immunol. 1995; 155(3): 1151-64.
  8. Chen W., Jin W., Hardegen N., Lei K.J., Li L., Marinos N. et al. Conversion of peripheral CD4+CD25- naive T cells to CD4+CD25+ regulatory T cells by TGF-beta induction of transcription factor Foxp3. J. Exp. Med. 2003; 198(12): 1875-86.
  9. Darrasse-Jèze G., Klatzmann D., Charlotte F., Salomon B.L., Cohen J.L. CD4+CD25+ regulatory/suppressor T cells prevent allogeneic fetus rejection in mice. Immunol. Lett. 2006; 102(1): 106-9.
  10. Shima T., Sasaki Y., Itoh M., Nakashima A., Ishii N., Sugamura K. et al. Regulatory T cells are necessary for implantation and maintenance of early pregnancy but not late pregnancy in allogeneic mice. J. Reprod. Immunol. 2010; 85(2): 121-9.
  11. Zhou J., Wang Z., Zhao X., Wang J., Sun H., Hu Y. An increase of Treg cells in the peripheral blood is associated with a better in vitro fertilization treatment outcome. Am. J. Reprod. Immunol. 2012; 68(2): 100-6.
  12. Schlossberger V., Schober L., Rehnitz J., Schaier M., Zeier M., Meuer S. et al. The success of assisted reproduction technologies in relation to composition of the total regulatory T cell (Treg) pool and different Treg subsets. Hum. Reprod. 2013; 28(11): 3062-73.
  13. Назаренко Т.А. Стимуляция функции яичников. М.: МЕДпресс-информ; 2009. 272 с.
  14. Zweig M.H., Campbell G. Receiver-operating characteristic (ROC) plots: a fundamental evaluation tool in clinical medicine. Clin. Chem. 1993; 39(4): 561-77
  15. Степанова Е.О., Николаева М.А., Ходжаева З.С., Кречетова Л.В., Зиганшина М.А., Бабаян А.А. и др. Cравнение двух способов фенотипирования лимфоцитов периферической крови у пациенток с невынашиванием беременности. Российский аллергологический журнал. 2012; 1: 296-7
  16. Seddiki N., Santner-Nanan B., Martinson J., Zaunders J., Sasson S., Landay A. et al. Expression of interleukin (IL)-2 and IL-7 receptors discriminates between human regulatory and activated T cells. J. Exp. Med. 2006; 203(7): 1693-700
  17. Teles A., Zenclussen A.C., Schumacher A. Regulatory T cells are baby’s best friends. Am. J. Reprod. Immunol. 2013; 69(4): 331-9
  18. Tilburgs T., Roelen D.L., van der Mast B.J., de Groot-Swings G.M., Kleijburg C., Scherjon S.A. et al. Evidence for a selective migration of fetus-specific CD4+CD25bright regulatory T cells from the peripheral blood to the decidua in human pregnancy. J. Immunol. 2008; 180(8): 5737-45.
  19. Worbs T., Förster R. A key role for CCR7 in establishing central and peripheral tolerance. Trends Immunol. 2007; 28(6): 274-80.
  20. Teles A., Schumacher A., Kühnle M.C., Linzke N., Thuere C., Reichardt P. et al. Control of uterine microenvironment by foxp3 (+) cells facilitates embryo implantation. Front. Immunol. 2013; 4: 158.
  21. Guerin L.R., Moldenhauer L.M., Prins J.R., Bromfield J.J., Hayball J.D., Robertson S.A. Seminal fluid regulates accumulation of FOXP3+ regulatory T cells in the preimplantation mouse uterus through expanding the FOXP3+ cell pool and CCL19-mediated recruitment. Biol. Reprod. 2011; 85(2): 397-408.
  22. Jurisicova A., Antenos M., Kapasi K., Meriano J., Casper R.F. Variability in the expression of trophectodermal markers beta-human chorionic gonadotrophin, human leukocyte antigen-G and pregnancy specific beta-1 glycoprotein by the human blastocyst. Hum. Reprod. 1999; 14(7): 1852-8.
  23. Lopata A., Hay D.L. The potential of early human embryos to form blastocysts, hatch from their zona and secrete HCG in culture. Hum. Reprod. 1989; 4(8, Suppl.): 87-94.
  24. Schumacher A., Brachwitz N., Sohr S., Engeland K., Langwisch S., Dolaptchieva M. et al. Human chorionic gonadotropin attracts regulatory T cells into the fetal-maternal interface during early human pregnancy. J. Immunol. 2009; 182(9): 5488-97.
  25. Zimmermann G., Ackermann W., Alexander H. Expression and production of human chorionic gonadotropin (hCG) in the normal secretory endometrium: evidence of CGB7 and/or CGB6 beta hCG subunit gene expression. Biol. Reprod. 2012; 86(3): 87.
  26. Bourdiec A., Calvo E., Rao C.V., Akoum A. Transcriptome analysis reveals new insights into the modulation of endometrial stromal cell receptive phenotype by embryo-derived signals interleukin-1 and human chorionic gonadotropin: possible involvement in early embryo implantation. PLoS One. 2013; 8(5): e64829.
  27. Fest S., Aldo P.B., Abrahams V.M., Visintin I., Alvero A., Chen R. et al. Trophoblast-macrophage interactions: a regulatory network for the protection of pregnancy. Am. J. Reprod. Immunol. 2007; 57(1): 55-66.
  28. Saito S., Nakashima A., Shima T., Ito M. Th1/Th2/Th17 and regulatory T-cell paradigm in pregnancy. Am. J. Reprod. Immunol. 2010; 63(6): 601-10.
  29. Mor G., Cardenas I., Abrahams V., Guller S. Inflammation and pregnancy: the role of the immune system at the implantation site. Ann. N. Y. Acad. Sci. 2011; 1221: 80-7.
  30. Bystry R.S., Aluvihare V., Welch K.A., Kallikourdis M., Betz A.G. B cells and professional APCs recruit regulatory T cells via CCL4. Nat. Immunol. 2001; 2(12): 1126-32.

Дополнительные файлы

Доп. файлы
Действие
1. JATS XML
Скачать

© ООО «Бионика Медиа», 2014

Данный сайт использует cookie-файлы

Продолжая использовать наш сайт, вы даете согласие на обработку файлов cookie, которые обеспечивают правильную работу сайта.

О куки-файлах