Tolerance of potato plants to chloride salinity is regulated by selective light

Cover Page
  • Authors: Kovtun I.S.1, Efimova M.V.1, Malofii M.K.1, Kuznetsov V.V.1,2
  • Affiliations:
    1. Национальный исследовательский Томский государственный университет
    2. Институт физиологии растений им. К.А. Тимирязева Российской Академии наук
  • Issue: Vol 484, No 3 (2019)
  • Pages: 377-380
  • Section: General biology
  • URL: https://journals.eco-vector.com/0869-5652/article/view/11782
  • DOI: https://doi.org/10.31857/S0869-56524843377-380

Abstract


Compared the response of the plant Solanum tuberosum L. mid-varieties Nakra to chloride salinity which depending on lighting conditions. Regenerated plants were produced in vitro from apical meristem and grown on half-strength Murashige and Skoog medium using a hydroponic unit in controlled-climate conditions. At the age of six weeks, the plants were exposed to salt stress (125 mM NaCl, 7 days); at the same time, plants were grown on white light with red or blue light. Plant response to salt stress was estimated by growth and physiological parameters. Potato plant tolerance to chloride salinity rose after short-term exposure to blue light, which has been first shown in this study. The protective effect of blue light was based on its ability to stimulate the accumulation of low-molecular weight organic compounds with antioxidant activity.


I. S. Kovtun

Национальный исследовательский Томский государственный университет

Author for correspondence.
Email: stevmv555@gmail.com

Russian Federation, Томск

M. V. Efimova

Национальный исследовательский Томский государственный университет

Email: stevmv555@gmail.com

Russian Federation, Томск

M. K. Malofii

Национальный исследовательский Томский государственный университет

Email: stevmv555@gmail.com

Russian Federation, Томск

V. V. Kuznetsov

Национальный исследовательский Томский государственный университет; Институт физиологии растений им. К.А. Тимирязева Российской Академии наук

Email: stevmv555@gmail.com

Russian Federation, Томск; Москва

  1. Kuznetsov V.V., Shevyakova N.N. Desert Plants. B.: Springer, 2010. P. 261–298.
  2. Самтанова Д.Э., Сангаджиева Л.Х. // Изв. Сарат. ун-та. Сер. Химия. Биология. Экология. 2013. Т. 12. С. 96–101.
  3. Munns R., Tester M. // Ann. Rev. Plant Biol. 2008. V. 59. P. 651–681.
  4. Kreslavski V.D., Los D.A., Schmitt F.-J., Zharmukhamedov S.K., Kuznetsov V.V., Allakhverdiev S.I. // Biochim. Biophys. Acta. Bioenergetics. 2018. V. 1859. P. 400–408.
  5. Мошков B.C. // Тр. по прикл. ботанике, генетике и селекции. 1935. Сер. 3. В. 6. С. 235–261.
  6. Креславский В.Д., Ширшикова Г.Н., Шмарев А.Н., Любимов В.Ю. // Новые и нетрадиционные растения и перспективы их использования. 2017.
  7. № S12. С. 142–144.
  8. Kwon C.-T., Song G., Kim S.-H., Han J., Yoo S.-C., An G., Kang K., Paek N.C. // Environ. and Exp. Botany. 2018. V. 148. P. 100–108.
  9. Ефимова М.В., Савчук А.Л., Хасан Дж.А.К., Литвиновская Р.П., Хрипач В.А., Холодова В.П., Кузнецов Вл.В. // Физиология растений. 2014. Т. 61. С. 778–789.
  10. Gao H.-J., Yang H.-Y., Bai J.-P., Liang X.-Y., Lou Y., Zhang J.-L., Wang D., Zhang J.-L., Niu S.-Q., Chen Y.-L. // Front. Plant Sci. 2015. V. 5. P. 1–14.
  11. Schmitt Fr.J., Renger G., Friedrich T., Kreslavski V.D., Zharmukhamedov S.K., Los D.A., Kuznetsov Vl.V., Allakhverdiev S.I. // Biochim. Biophys. Acta. 2014. V. 1837. P. 835–848.
  12. Buege J.A., Aust S.D. // Methods Enzymol. 1978. V. 52. P. 302–310.
  13. Ефимова М.В., Хрипач В.А., Бойко Е.В., Малофий М.К., Коломейчук Л.В., Мурган О.К., Видершпан А.Н., Мухаматдинова Е.А., Кузнецов Вл.В. // ДАН. 2018. Т. 478. № 6. С. 723–726.
  14. Mansour M.M.F., Ali E.F. // Phytochemistry. 2017. V. 140. P. 52–68.
  15. Frank H.A., Robert B. Light Harvesting in Photosynthesis. N.Y.: CRC Press, 2018. P. 37–56.
  16. Sakihama Y., Cohen M.F., Grace S.C., Yamasaki H. // Toxicology. 2002. V. 177. P. 67–80.

Views

Abstract - 99

PDF (Russian) - 70

PlumX


Copyright (c) 2019 Российская академия наук