Разработка иммуносорбента для твёрдофазного ЯМР-анализа

Обложка

Цитировать

Полный текст

Аннотация

Оптимизировали условия конструирования реагента-иммуносорбента для твёрдофазного ЯМР-анализа. Для этого увеличили площадь сенсибилизированного участка мембраны до размеров катушки релаксометра и добавили буфер для сорбции агентов. Это обеспечило проникновение молекул антилиганда в толщу мембраны и их равномерное распределение.

Об авторах

П. В. Храмцов

Институт экологии и генетики микроорганизмов Уральского отделения Российской Академии наук; Пермский государственный национальный исследовательский университет

Автор, ответственный за переписку.
Email: khramtsovpavel@yandex.ru
Россия, Пермь

М. Д. Кропанева

Институт экологии и генетики микроорганизмов Уральского отделения Российской Академии наук

Email: khramtsovpavel@yandex.ru
Россия, Пермь

М. С. Бочкова

Институт экологии и генетики микроорганизмов Уральского отделения Российской Академии наук

Email: khramtsovpavel@yandex.ru
Россия, Пермь

В. П. Тимганова

Институт экологии и генетики микроорганизмов Уральского отделения Российской Академии наук

Email: khramtsovpavel@yandex.ru
Россия, Пермь

С. А. Заморина

Институт экологии и генетики микроорганизмов Уральского отделения Российской Академии наук; Пермский государственный национальный исследовательский университет

Email: khramtsovpavel@yandex.ru
Россия, Пермь

М. Б. Раев

Институт экологии и генетики микроорганизмов Уральского отделения Российской Академии наук; Пермский государственный национальный исследовательский университет

Email: khramtsovpavel@yandex.ru
Россия, Пермь

Список литературы

  1. Blümich B. Introduction to Compact NMR: A Review of Methods // TrAC — Trends Anal. Chem. 2016. V. 83. P. 2–11.
  2. Luo Z.-X., Fox L., Cummings M., Lowery T.J., Daviso E. New Frontiers in in vitro Medical Diagnostics by Low Field T2 Magnetic Resonance Relaxometry // TrAC — Trends Anal. Chem. 2016. V. 83. P. 94–102.
  3. Chen Y.-T., Kolhatkar A.G., Zenasni O., Xu S., Lee T.R. Biosensing Using Magnetic Particle Detection Techniques // Sensors (Switzerland). 2017. V. 17. № 10. 2300.
  4. Alcantara D., Lopez S., García-Martin M.L., Pozo D. Iron Oxide Nanoparticles as Magnetic Relaxation Switching (MRSw) Sensors: Current Applications in Nanomedicine // Nanomed.: Nanotechnol., Biol., and Med. 2016. V. 12. № 5. P. 1253–1262.
  5. Zhang Y., Yang H., Zhou Z., Huang K., Yang S., Han G. Recent Advances on Magnetic Relaxation Switching Assay-Based Nanosensors // Bioconjugate Chem. 2017. V. 28. № 4. P. 869–879.
  6. Schrittwieser S., Pelaz B., Parak W.J., Lentijo-Mozo S., Soulantica K., Dieckhoff J., Ludwig F., Guenther A., Tschöpe A., Schotter J. Homogeneous Biosensing Based on Magnetic Particle Labels // Sensors (Switzerland). 2016. V. 16. № 6. P. 828.
  7. Mikhalev K.N., Germov A.Yu., Uimin M.A., Yermakov A.E., Konev A.S., Novikov S.I., Gaviko V.S., Ponosov Yu. S. Magnetic State and Phase Composition of Carbon-Encapsulated Co@C Nanoparticles According to 59Co, 13C NMR Data and Raman Spectroscopy // Materials Res. Express. 2018. V. 5. № 5. 055033.
  8. Grass R.N., Athanassiou E.K., Stark W.J. Covalently Functionalized Cobalt Nanoparticles as a Platform for Magnetic Separations in Organic Synthesis // Angew. Chem. — Intern. Ed. 2007. V. 46. P. 4909–4912.
  9. Raev M.B., Khramtsov P.V., Bochkova M.S. Investigation into Size Distribution of Carbon Nanoparticles Covalently Functionalized with Proteins // Nanotechnol. in Russia. 2015. V. 10. № 1/2. P. 140–148.
  10. Low S.C., Shaimi R., Thandaithabany Y., Lim J.K., Ahmad A.L., Ismail A. Electrophoretic Interactions between Nitrocellulose Membranes and Proteins: Biointerface Analysis and Protein Adhesion Properties // Colloids and Surfaces B: Biointerfaces. 2013. V. 110. P. 248–253.
  11. Hoffman W.L., Jump A.A., Kelly P.J., Ruggles A.O. Binding of Antibodies and Other Proteins to Nitrocellulose in Acidic, Basic, and Chaotropic Buffers // Anal. Biochem. 1991. V. 198. № 1. P. 112–118.
  12. Mujawar L., Van Amerongen A., Norde W. Influence of Pluronic F127 on the Distribution and Functionality of Inkjet-Printed Biomolecules in Porous Nitrocellulose Substrates // Talanta. 2015. V. 131. P. 541–547.
  13. Van Lieshout R.M.L., Van Domburg T., Saalmink M., Verbeek R., Wimberger-Friedl R., Van Dieijen-Visser M.P., Punyadeera C. Three-dimensional Flow-through Protein Platform // Anal. Chem. 2009. V. 81. № 13. P. 5165–5171.
  14. Qiu S., Song C., Zhao S., Li J., Zeng H., Wu S., Guo H., Li H., Liu C., Liu Q. A New Spot Quality Control for Protein Macroarray Based on Immunological Detection // Talanta. 2015. V. 138. P. 176–182.
  15. Saha D., Acharya D., Dhar T.K. Method for Homogeneous Spotting of Antibodies on Membranes: Application to the Sensitive Detection of Ochratoxin A // Anal. and Bioanal. Chem. 2006. V. 385. № 5. P. 847–854

Дополнительные файлы

Доп. файлы
Действие
1. JATS XML

© Российская академия наук, 2019

Данный сайт использует cookie-файлы

Продолжая использовать наш сайт, вы даете согласие на обработку файлов cookie, которые обеспечивают правильную работу сайта.

О куки-файлах