Стероидогенный эффект низкомолекулярного агониста рецептора лютеинизирующего гормона при его введении крысам-самцам

Обложка

Цитировать

Полный текст

Открытый доступ Открытый доступ
Доступ закрыт Доступ предоставлен
Доступ закрыт Только для подписчиков

Аннотация

Производное тиенопиримидина TP03 (низкомолекулярный агонист рецептора лютеинизирующего гормона, ЛГР) при введении крысам-самцам популяции Wistar стимулировало продукцию тестостерона (“Т”), повышенный уровень которого сохранялся в течение 7 дней, и повышало экспрессию гена ЛГР. В то же время стероидогенный эффект хорионического гонадотропина человека (ХГЧ), который значительно повышал уровень “Т” в первый день обработки, в дальнейшем ослаблялся, что сопровождалось снижением в семенниках экспрессии гена ЛГР, свидетельствующим о развитии резистентности клеток Лейдига к ХГЧ. При обработке ХГЧ в семенниках зарегистрировали компенсаторное повышение экспрессии генов стероидогенных ферментов – цитохрома P450scc и дегидрогеназы Зв-HSD. При обработке TP03 этот эффект отсутствовал.

Об авторах

А. А. Бахтюков

Институт эволюционной физиологии и биохимии им. И.М. Сеченова Российской Академии наук

Автор, ответственный за переписку.
Email: alex_shpakov@list.ru
Россия, 194223, г. С.-Петербург, пр. Тореза, 44

К. В. Деркач

Институт эволюционной физиологии и биохимии им. И.М. Сеченова Российской Академии наук

Email: alex_shpakov@list.ru
Россия, 194223, г. С.-Петербург, пр. Тореза, 44

Д. В. Дарьин

Санкт-Петербургский государственный университет

Email: alex_shpakov@list.ru
Россия, 199034, г. Санкт-Петербург, Университетская наб., д.7/9

А. О. Шпаков

Институт эволюционной физиологии и биохимии им. И.М. Сеченова Российской Академии наук

Email: alex_shpakov@list.ru
Россия, 194223, г. С.-Петербург, пр. Тореза, 44

Список литературы

  1. Ezcurra D., Humaidan P. // Reprod. Biol. Endocrinol. 2014. V. 12. P. 95.
  2. Banker M., Garcia-Velasco J.A. // J. Hum. Reprod. Sci. 2015. V. 8. P. 13-17.
  3. Riccetti L., De Pascali F., Gilioli L., et al. // Reprod. Biol. Endocrinol. 2017. V. 15. P. 2.
  4. Cole L. A. // Reprod. Biol. Endocrinol. 2012. V. 10. P. 24.
  5. van de Lagemaat R., Raafs B. C., van Koppen C., et al. // Endocrinology. 2011. V. 152. P. 4350-4357.
  6. Шпаков А. О. // Цитология. 2015. Т. 57. № 3. С. 167176.
  7. Derkach K. V., Dar'in D.V., Bakhtyukov A. A., et al. // Biochemistry (Moscow). Suppl. Ser. A: Memb. Cell Biol. 2016. V. 10. P. 294-300.
  8. Derkach K. V., Bakhtyukov A. A., Shpakov A. A., et al. // Cell Tissue Biol. 2017. V. 11. P. 475-482.
  9. Lejeune H., Sanchez P., Chuzel F., et al. // Mol. Cell. Endocrinol. 1998. V. 144. P. 59-69.
  10. Payne A. H., Hales D. B. // Endocr. Rev. 2004. V. 25. P. 947-970.
  11. Aghazadeh Y., Zirkin B. R., Papadopoulos V. // Vitam. Horm. 2015. V. 98. P. 189-227.
  12. Бахтюков А. А., Соколова Т. В., Дарьин Д. В. и др. // Рос. физиол. журн. им. И.М. Сеченова. 2017. Т. 103. № 10. С. 1181-1192.
  13. Riccetti L., Yvinec R., Klett D., et al. // Sci. Rept. 2017. V. 7. P. 940.
  14. Tang P. Z., Tsai-Morris C.H., Dufau M. L. // Endocrinology. 1998. V. 139. P. 4496-4505.
  15. Keenan D. M., Iranmanesh A., Veldhuis J. D. // Amer. J. Physiol. 2011. V. 300. P. 349-350

Дополнительные файлы

Доп. файлы
Действие
1. JATS XML
Скачать

© Российская академия наук, 2019