Влияние нарушений преаналитического этапа на достоверность результата диагностики SARS-CoV-2 методом полимеразной цепной реакции в режиме реального времени
- Авторы: Гусякова О.А.1, Антипов В.А.1, Авакян Н.А.2, Медведева А.С.1, Карташов В.В.1
-
Учреждения:
- ФГБОУ ВО «Самарский государственный медицинский университет» Министерства здравоохранения Российской Федерации
- Государственное бюджетное учреждение здравоохранения Московской области «Центр профилактики и борьбы со СПИД»
- Выпуск: Том 28, № 10 (2025)
- Страницы: 21-26
- Раздел: Биологическая химия
- URL: https://journals.eco-vector.com/1560-9596/article/view/693123
- DOI: https://doi.org/10.29296/25877313-2025-10-03
- ID: 693123
Цитировать
Полный текст



Аннотация
Введение. Лабораторная диагностика COVID-19 методом полимеразной цепной реакции является ключевым этапом постановки диагноза. Любое лабораторное исследование включает в себя преаналитический этап, соблюдение которого необходимо для выполнения главной задачи проведения анализа – получения достоверного результата. Согласно временному руководству по лабораторной диагностике COVID-19 в условиях пандемии, мазки из носоглотки или ротоглотки в стерильной пластиковой пробирке с транспортной средой доставляют в лабораторию при температуре от 2 до 8 °C. Время доставки образцов до лаборатории исполнения не должно превышать 5 дней. Длительное хранение допускается при –20 °С или –70 °С.
Цель исследования – оценить влияние физических факторов, не соответствующих требованиям преаналитического этапа, на достоверность определения РНК SARS-CoV-2 методом полимеразной цепной реакции (ПЦР) в режиме реального времени.
Материал и методы. Для исследования использовали 50 положительных респираторных мазков SARS-CoV-2, каждый из которых разделили на 4 пробы (группы): образцы первой группы выдерживали 7 дней при температуре 5 °С, пробы второй группы – при температуре 25 °С, образцы третьей группы подвергали двукратной заморозке, а четвертой группы – воздействию ультрафиолетового излучения. Затем проводили повторное исследование образцов методом полимеразной цепной реакции в режиме реального времени и интерпретацию порогового цикла амплификации.
Результаты. Влияние ультрафиолетового излучения привело к снижению количества положительных проб на 20%, а также к повышению медианы порогового цикла амплификации на 1,1 единицу. При двукратной заморозке биологического материала наблюдали снижение доли положительных образцов на 18%, при продолжительном хранении проб при температуре 5 °С – на 20%, при хранении клинического материала при температуре 25 °С – на 14%. Достоверных различий порогового цикла опытной и контрольной проб для данных факторов выявлено не было.
Выводы. Среди рассмотренных физических факторов наиболее выраженный негативный эффект на сохранность РНК SARS-CoV-2 оказывает воздействие ультрафиолетового излучения. Продолжительное хранение биоматериала при 5 °С и 25 °С, как и двукратная заморозка образцов, также оказывает отрицательное влияние на достоверность результатов ПЦР-диагностики COVID-19.
Ключевые слова
Полный текст

Об авторах
О. А. Гусякова
ФГБОУ ВО «Самарский государственный медицинский университет» Министерства здравоохранения Российской Федерации
Автор, ответственный за переписку.
Email: o.a.gusyakova@samsmu.ru
ORCID iD: 0000-0002-5619-4583
SPIN-код: 5198-8830
д.м.н., профессор, зав. кафедрой фундаментальной и клинической биохимии с лабораторной диагностикой
Россия, 443099, г. Самара, ул. Чапаевская, д.89В. А. Антипов
ФГБОУ ВО «Самарский государственный медицинский университет» Министерства здравоохранения Российской Федерации
Email: v.a.antipov@samsmu.ru
ORCID iD: 0000-0002-5295-3554
SPIN-код: 9507-1324
ассистент кафедры фундаментальной и клинической биохимии с лабораторной диагностикой, биолог лаборатории разработки и экспертизы новых медицинских изделий для диагностики in vitro научно-образовательного профессионального центра генетических и лабораторных технологий (НОПЦ ГЛТ)
Россия, 443099, г. Самара, ул. Чапаевская, д.89Н. А. Авакян
Государственное бюджетное учреждение здравоохранения Московской области «Центр профилактики и борьбы со СПИД»
Email: lol_0310@mail.ru
ORCID iD: 0000-0003-1174-223X
врач клинической лабораторной диагностики
Россия, 140053, Московская область, г. Котельники, мкр. Силикат, д. 41аА. С. Медведева
ФГБОУ ВО «Самарский государственный медицинский университет» Министерства здравоохранения Российской Федерации
Email: an.s.medvedeva@samsmu.ru
ORCID iD: 0009-0005-1041-9678
SPIN-код: 8999-4275
ассистент кафедры фундаментальной и клинической биохимии с лабораторной диагностикой
Россия, 443099, г. Самара, ул. Чапаевская, д.89В. В. Карташов
ФГБОУ ВО «Самарский государственный медицинский университет» Министерства здравоохранения Российской Федерации
Email: stomkvv@gmail.com
ORCID iD: 0000-0002-8671-2898
SPIN-код: 7554-8410
ассистент кафедры ортопедической стоматологии
Россия, 443099, г. Самара, ул. Чапаевская, д.89Список литературы
- WHO COVID-19 Dashboard. Режим доступа: https://data.who.int/dashboards/covid19/cases?n=c (дата обращения / accessed: 25.02.2024).
- Msemburi W., Karlinsky A., Knutson V. et al. The WHO estimates of excess mortality associated with the COVID-19 pandemic. Nature. 2023 Jan 5; 613(7942): 130–137. DOI: https://doi.org/10.1038/s41586-022-05522-2.
- Профилактика, диагностика и лечение новой коронавирусной инфекции (COVID-19). Временные методические рекомендации. Версия 18. М.: Министерство Здравоохранения Российской Федерации; 2023. [Profilaktika, diagnostika i lechenie novoj koronavirusnoj infekcii (COVID-19). Temporary guidelines. Version 18. M.: Ministerstvo Zdravooxraneniya Rossijskoj Federacii; 2023. (In Russ.)].
- Rahbari R., Moradi N., Abdi M. rRT-PCR for SARS-CoV-2: Analytical considerations. Clinica Chimica Acta. 2021 May; 516: 1–7. DOI: https://doi.org/10.1016/j.cca.2021.01.011.
- Conrad S., Gant Kanegusuku A., Conklin S.E. Taking a step back from testing: Preanalytical considerations in molecular infectious disease diagnostics. Clinical Biochemistry. 2023 May; 115: 22–32. DOI: https://doi.org/10.1016/j.clin-biochem.2022.12.003.
- Alfaro‐Núñez A., Crone S., Mortensen S. et al. SARS‐CoV‐2 RNA stability in dry swabs for longer storage and transport at different temperatures. Transbounding Emerging Dis. 2022 Mar; 69 (2): 189–194. DOI: https://doi.org/10.1111/tbed.14339.
- Dzung A., Cheng P.F., Stoffel C. et al. Prolonged Unfrozen Storage and Repeated Freeze-Thawing of SARS-CoV-2 Patient Samples Have Minor Effects on SARS-CoV-2 Detectability by RT-PCR. The Journal of Molecular Diagnostics. 2021 Jun; 23(6): 691–697. DOI: https://doi.org/10.1016/j.jmoldx.2021.03.003.
Дополнительные файлы
