Индукция синтетическими аналогами цАМФ нейраминидазной активности в нейральных клетках in vitro



Цитировать

Полный текст

Аннотация

Экспозиция нейральной клеточной линии NB-1 нейробластомы человека к дибутирил-цАМФ приводила как повышению частоты нейронов, которые образовывали отростки, так и повышению активности сиалидазы, ассоциированной с плазматической мембраной (САПМ), более чем в 2 раза. Повышение активности САПМ также сопровождалось увеличением количества мРНК этого фермента. В нейральных клетках с высокой активностью САПМ и развитыми отростками также регистрировалось достоверное повышение активности маркера биохимической дифференцировки нейральных клеток - ацетилхолинэстеразы. Полученные результаты позволяют сделать вывод о том, что повышение активности САПМ связано с дифференцировкой нейральных клеток и делается предположение о возможности использования этого фермента, как потенциальной мишени (маркера) для терапии заболеваний, связанных с повреждением клеток нейронального происхождения (нейронов).

Об авторах

Сергей Николаевич Прошин

ФГУЗ «Всероссийский центр экстренной и радиационной медицины им. А.М. Никифорова» МЧС России

ФГУЗ «Всероссийский центр экстренной и радиационной медицины им. А.М. Никифорова» МЧС России

Евгений Рудольфович Бычков

Медицинский Центр Университета Вандербилта

Медицинский Центр Университета Вандербилта

Андрей Андреевич Лебедев

НИИ экспериментальной медицины РАМН

лаборатория психофармакологии, д-р биoл. наук, професссор; НИИ экспериментальной медицины РАМН

Галина П Косякова

ВНИИ генетики и разведения сельскохозяйственных животных РАСХН

ВНИИ генетики и разведения сельскохозяйственных животных РАСХН

Петр Дмитриевич Шабанов

Военно-медицинская академия им. С.М. Кирова МО РФ

Email: pdshabanov@mail.ru
кафедра фармакологии, зав. кафедрой,д-р мед. наук, профессор; Военно-медицинская академия им. С.М. Кирова МО РФ

S N Proshin

E R Bychkov

A A Lebedev

G P Kosyakova

P D Shabanov

Email: pdshabanov@mail.ru

Список литературы

  1. Miyagi T., Wada T., Iwamatsu A. Molecular cloning and characterization of a plasma membrane-associated sialidase specific for gangliosides. // J. Biol. Chem. 1999. Vol. 274. P. 5004-5011.
  2. Yamaguchi K., Hata K., Koseki K. Evidence for mitochondrial localization of a novel human sialidase (NEU4). // Biochem. J. 2005. Vol. 390, N 1. P. 85-93.
  3. Proshin S. Sialidase activity and metastatic characteristics of tumor cell clones in vivo of rat rhabdomyosarcoma RA-23. // J. Glycobiol. 2007. Vol. 17, N 11. P. 1228.
  4. Hasegawa T., Yamaguchi K., Wada T., et al. Molecular cloning of mouse ganglioside sialidase and its increased expression in Neuro2a cell differentiation. // J. Biol. Chem. 2000. Vol. 275. P. 8007-8015.
  5. Da Silva J.S., Hasegawa T., Miyagi T. Asymmetric membrane ganglioside sialidase activity specifies axonal fate. // Nat. Neurosci. 2005. Vol. 8, N 5. P. 606-615.
  6. Kato K., Shiga K., Yamaguchi K. Plasma-membrane-associated sialidase (NEU3) differentially regulates integrin-mediated cell proliferation through laminin- and fibronectin-derived signaling. // Biochem. J. 2006. Vol. 394, N 3. P. 647-656.
  7. Wang Y., Yamaguchi K., Wada T., et al. A close association of the ganglioside-specific sialidase Neu3 with caveolin in membrane microdomains. // J. Biol. Chem. 2002. Vol. 277, N 29. P. 26252-26259.
  8. Odintsova E., Butters T.D., Monti E. Gangliosides play an important role in the organization of CD82-enriched microdomains. // Biochem. J. 2006. Vol. 400, N 2. P. 315-325.
  9. Mao L., Wang J.Q. Glutamate cascade to cAMP response-binding protein phosphorylation in cultured striatal neurons through calcium-coupled group I metabotropic glutamate receptors. // Mol. Pharmacol. 2002. Vol. 62, N 3. P. 473-484.
  10. Kumar A.P., Bhaskaran S., Ganapathy M., et al. Akt/cAMP-responsive element binding protein/cyclin D1 network: a novel target for prostate cancer inhibition in transgenic adenocarcinoma of mouse prostate model mediated by nexrutine, a phellodendron amurensen bark extract. // Clin. Cancer Res. 2007. Vol. 13, N 9. P. 2784-2794.
  11. Palestini P., Pitto M., Ferraretto A., et al. Change of ganglioside accessibility at the plasma membrane surface of cultured neurons, following protein kinase C activation. // Biochemistry. 1998. Vol. 37. P. 3143-3148.
  12. Hata K., Sasaki A., Sawada M., et al. Overexpression of ganglioside sialidase in transgenic mice leads to non-insulin dependent diabetes mellitus. // Glycoconj. J. 2001. Vol. 18. P. 90-94.
  13. Kopitz J., von Reitzenstein C., Mühl C., Cantz M. Role of plasma membrane ganglioside sialidase of human neuroblastoma cells in growth control and differentiation. // Biochem. Biophys. Res. Commun. 1994. Vol. 199. P. 1188-1193.
  14. Rodriguez J.A., Piddini E., Hasegawa T., et al. Plasma membrane ganglioside regulates axonal growth and regeneration in hippocampal neurons in culture. // J. Neurosci. 2001. Vol. 21, N 21. P. 8387-8395.
  15. Warren L. The thiobarbituric acid assay of sialic acids. // J. Biol. Chem. 1959. Vol. 234, N 8. P. 1971-1975.
  16. Miyagi T., Tsuiki S. Rat-liver lysosomal sialidase. Solubilization, substrate specificity and comparison with the cytosolic sialidase. // Eur.J. Biochem. 1984. Vol. 141. P. 75-81.
  17. Ellman G., Courtney K.D., Andres V., et al. A new and rapid colorimetric determination of acetylcholinesterase activity. // Biochem. Pharmacol. 1961. Vol. 7. P. 88-95.
  18. Bradford M.M. A rapid and sensitive method for the quantitation of microgram quantities of protein utilizing the principle of protein-dye binding. // Anal. Biochem. 1976. Vol. 72. P. 248-254.
  19. Chomczynski P., Sacchi N. Single-step method of RNA isolation by acid guanidinum thiocyanate-phenol-chlorophorm extraction. // Anal. Biochem. 1987. Vol. 162. P. 156-159.
  20. Kozireski-Chuback D., Wu G., Ledeen R.W. Up-regulation of nuclear GM1 accompanies axon-like, but not dendrite-like, outgrowth in NG108-15 cells. // J. Neurosci. Res. 1999. Vol. 55. P. 107-118.
  21. Shelly M., Cancedda L., Heilshorn S., Sumbre G., Poo M.M. LKB1/STRAD promotes axon initiation during neuronal polarization. // Cell. 2007. Vol. 129, N 3. P. 565-577.
  22. Kalka D., von Reitzenstein C., Kopitz J., Cantz M. The plasma membrane ganglioside silaidase cofractionates with markers of lipid rafts. Biochem. Biophys. Res. Commun. 2001. Vol. 283. P. 989-993.
  23. Razani B., Rubin C.S., Lisanti M.P. Regulation of cAMP-mediated signal transduction via interaction of caveolins with the catalytic subunit of protein kinase A. // J. Biol. Chem. 1999. Vol. 274. P. 26353-26360,
  24. Razani B., Lisanti M.P. Two distinct caveolin-1 domains mediate the functional interaction of caveolin-1 with protein kinase A. // Am.J. Physiol. Cell Physiol. 2001. Vol. 281. P. C1241-C1250.

Дополнительные файлы

Доп. файлы
Действие
1. JATS XML
Скачать

© ООО "Эко-Вектор", 2008

Creative Commons License
Эта статья доступна по лицензии Creative Commons Attribution-NonCommercial-NoDerivatives 4.0 International License.
СМИ зарегистрировано Федеральной службой по надзору в сфере связи, информационных технологий и массовых коммуникаций (Роскомнадзор).
Регистрационный номер и дата принятия решения о регистрации СМИ: ПИ № ФС 77 - 84654 от 01.02.2023 г. 

Данный сайт использует cookie-файлы

Продолжая использовать наш сайт, вы даете согласие на обработку файлов cookie, которые обеспечивают правильную работу сайта.

О куки-файлах