Характеристика морфологической и ультраструктурной трансформации роговицы после УФ кросслинкинга (обзор литературы)
- Авторы: Бикбов М.М.1, Халимов А.Р.1, Шевчук Н.Е.1, Казакбаева Г.М.1, Гилемзянова Л.И.1, Валишин И.Д.1
-
Учреждения:
- Башкирский государственный медицинский университет
- Выпуск: Том 22, № 2 (2025)
- Страницы: 13-20
- Раздел: Обзорные статьи
- URL: https://journals.eco-vector.com/1994-9480/article/view/642380
- DOI: https://doi.org/10.19163/1994-9480-2025-22-2-13-20
- ID: 642380
Цитировать
Полный текст
Аннотация
В статье представлены краткие сведения по экспериментальному и клиническому изучению морфологической и ультраструктурной трансформации роговицы, наблюдаемой после ультрафиолетового (УФ) кросслинкинга (сшивания) роговичного коллагена. В обзор включены результаты, полученные на основе современных методов исследования. Показано, что УФ кросслинкинг индуцирует в роговице в раннем послеоперационном периоде (1 мес.) характерный отклик, связанный с очаговым разволокнением коллагена стромы, изменением межфибриллярного расстояния, увеличением диаметра фибрилл, утратой поверхностных нервных волокон, активацией апоптоза кератоцитов со снижением их количества. Выявленные особенности носят транзиторный характер (до 6 мес.) и затрагивают преимущественно переднюю и среднюю строму, не влияя на эндотелий роговицы. В срок 6–12 мес. отмечается восстановление корнеальных нервных волокон, репопуляция кератоцитов, упорядочивание нарушенной межфибриллярной последовательности, уплотнение коллагеновой структуры с сохранением жесткости роговицы, в том числе за счет увеличения диаметра фибрилл коллагена. Положительный кросслинкинг-индуцированный эффект более выражен на фоне патологически измененной роговицы, в частности, при кератоконусе, по сравнению с экспериментальными моделями УФ кросслинкинга, воспроизведенными на интактных лабораторных животных.
Ключевые слова
Полный текст
Ультрафиолетовый кросслинкинг роговицы (CXL), применяемый в клинической практике два последних десятилетия, произвел революцию в лечении кератоконуса. Было продемонстрировано, что воздействие ультрафиолетового (УФ) излучения диапазона А в комбинации с рибофлавином способствует повышению биомеханики биологических тканей, в частности роговицы [1]. В настоящее время CXL является признанным и достаточно безопасным методом лечения прогрессирующего кератоконуса и ряда других дегенеративных и воспалительных заболеваний роговой оболочки [2].
Процесс CXL представляет собой фотохимические взаимодействия, опосредованные участием УФ излучения длиной волны (370 ± 5) нм и рибофлавина (витамин В2). Последний выполняет функцию фотосенсибилизатора, который под воздействием ультрафиолета продуцирует активные формы кислорода (АФК), инициирующие образование ковалентных связей между молекулами коллагена, белками межламеллярной адгезии. Форми-рование дополнительных химических связей может происходить между аминоконцами боковых цепей коллагена и протеогликанами внеклеточного матрикса с генерацией синглетного кислорода [3, 4. 5]. Таким образом, процесс УФ «сшивки» коллагена роговицы с участием фотоактивированного рибофлавина и АФК приводит к укреплению структуры роговицы и приостанавливает прогрессирование кератэктазии.
Проведенные многочисленные исследования доказали безопасность CXL. Серьезные осложнения, развивающиеся при использовании данной методики, достаточно редки и включают помутнение роговицы, значительно реже рубцевание или послеоперационные инфекции, а в единичных случаях повреждение эндотелия. Кроме этого, были отмечены реактивация герпетических инфекций и стерильные инфильтраты стромы роговицы [6].
Кросслинкинг роговицы активно применяется при лечении пациентов с кератэктазиями, которые являются хроническими, невоспалительными, дегенеративными заболеваниями роговицы и характеризуются структурной дезорганизацией роговичного коллагена, значительным ослаблением внутри- и межфибриллярных связей, что приводит к прогрессирующему снижению зрительных функций. Известно, что среди первичных кератэктазий в подавляющем большинстве случаев (более 98 %) встречается кератоконус (КК) [7].
Известны традиционные ранние клинические проявления CXL – это роговичный синдром, вызванный деэпителизацией роговой оболочки (до 4 сут.), отек стромы (до 7 сут.) и псевдохейз (помутнение) роговицы (до 1–3 мес.). Несмотря на достаточно большое число работ, посвященных результатам применения CXL в лечении пациентов с КК, исследователей по-прежнему интересует, какие именно морфологические и ультраструктурные изменения происходят в роговице после ее УФ облучения в присутствии рибофлавина [8, 9, 10].
Исследования микроструктуры роговицы после CXL указывают на изменения в размере и последовательности коллагеновых фибрилл, при этом наиболее значимая трансформация происходит в передней трети стромы, что, по мнению ряда авторов, обуславливает эффект придания жесткости роговой оболочке. Экспериментальная оценка взаимосвязи механических свойств и изменение ультраструктуры роговиц свиней после CXL, проведенная Chang S. с соавторами [11], выявила увеличение на 28 % тангенциального модуля упругости материала, определяемого с помощью испытаний на одноосное растяжение. Отмечали преобразование структуры коллагена в пределах первых 300 мкм глубины роговицы: уменьшилось количество фибрилл на единицу площади на 8–12 %, увеличилась их толщина примерно на 5 % при улучшении микроциркуляции в межфибриллярном пространстве.
Инфракрасная (ИК) спектроскопия с преобразованием Фурье (Fourier-transform infrared spectroscopy, FTIR) ‒ методика, используемая для получения инфракрасного спектра поглощения или излучения, в частности, твердого тела, подтвердила образование межфибриллярных связей в результате воздействия CXL. Полученные данные показали, что жесткость тканей после применения рибофлавин-ультрафиолетового воздействия обусловлена такими параметрами, как диаметр коллагеновых фибрилл и их структурная плотность [11].
Применение ИК-спектроскопии нарушенного полного внутреннего отражения с Фурье-преобразованием (FTIR-ATR) позволило провести углубленное изучение механизмов формирования коллагеновых связей в роговице, в частности после CXL. Анализ спектров ATR-FTIR выявил влияние УФ излучения на коллагеновый матрикс свиных роговиц. Значительные изменения наблюдались в полосах, связанных с коллагеновыми сшивками. Кроме того, в результате вызванных воздействием УФ излучения биохимических изменений на молекулярном уровне выявлена существенная разница в оптическом рассеянии, происходящем в строме роговицы. Было показано, что повышенная дегидратация ткани роговицы практически не влияет на нативную структуру тройной спирали коллагена [12].
Анализ, проведенный с помощью поверхностной спектроскопии комбинационного рассеяния света (Surface-enhanced Raman spectroscopy, SERS), показал, что общая вторичная структура коллагена не изменяется, в то время как модификации боковых цепей аминокислот являются наиболее характерным результатом сшивания. Было обнаружено образование вторичных и ароматических аминных групп, а также метиленовых и карбонильных групп [5]. В совокупности эти результаты свидетельствуют о значимых изменениях в ультраструктуре роговицы после CXL, включая создание новых сшивок в макромолекулах коллагена [12]. При этом CXL стабилизирует преимущественно меж- и внутрифибриллярное, но не межламеллярное сцепление [13].
По мере появления новых клинических протоколов CXL, основанных на снижении длительности процедуры с пропорциональным увеличением мощности ультрафиолета, потребовались сравнительные исследования эффективности различных режимов воздействия на роговицу. Было показано, что сокращение продолжительности УФ облучения, особенно менее 5 минут, не оказывает такого же биомеханического эффекта [14].
В экспериментальных исследованиях на роговицах крыс выявлено разрыхление пучков волокон коллагена, обусловленных развитием отека стромы в ранний (3–7 сут.) период наблюдений, сохраняющегося до 30 сут. эксперимента после стандартного УФ кросслинкинга («Дрезденский» протокол) с раствором рибофлавина. Аналогичные, но менее выраженные изменения наблюдали при проведении CXL с раствором рибофлавина, содержащим декстран с молекулярной массой 500 kDa («Декстралинк»), что связано с обезвоживающим и противоотечным эффектом полимера. При этом в обеих группах происходило снижение плотности кератоцитов в передних и средних слоях стромы роговицы [15].
Экспериментальные исследования in vivo на роговицах разных животных (куры и кролики) показали, что эффект CXL зависит от исходного состояния роговичного коллагена. УФ воздействие в присутствии рибофлавина практически не влияет на общую структуру роговицы, представляющей собой хорошо организованный коллагеновый комплекс, как, например, у кур или других птиц. Напротив, в роговицах кроликов первоначальное распределение коллагеновых волокон может быть частично организовано или не организовано. В этом случае CXL вызывает существенные позитивные изменения в строении коллагена. Типичным примером роговицы с неорганизованным расположением коллагена является роговица пациентов с кератоконусом, что свидетельствует о необходимости дальнейших разносторонних исследований влияния CXL на структуру слоев интактной и патологически измененной роговицы [16].
Изучение морфологических изменений в коллагеновых фибриллах парных роговиц свиней и кроликов, одна из которых была контрольной, а другая подверглась CXL, методами световой микроскопии и просвечивающей электронной микроскопии, показало следующее. Установлено существенное снижение толщины центральной зоны роговицы животных, при этом коллагеновые фибриллы были более компактно и упорядоченно расположены в передней строме и менее плотно ‒ в задней. Их диаметр увеличился в передней и средней строме, что превосходило показатели измерений фибрилл более глубоких слоев. Отмечали статистически достоверное уменьшение межфибриллярного расстояния в различных областях роговицы кролика, тогда как изменений в задней части стромы роговицы свиней не наблюдалось [17].
Аналогичные изменения были отмечены и в экспериментальных исследованиях на крысах. Проведенные электронномикроскопические исследования средних слоев стромы роговицы крыс показали, что CXL способствовал увеличению фибриллярного диаметра и снижению плотности интраламеллярной упаковки фибрилл, наиболее выраженно наблюдаемой в раннем послеоперационном периоде (3 суток). Уменьшение плотности фибриллярной упаковки может быть следствием отека стромы, который на ультраструктурном уровне может сохраняться в течение нескольких месяцев. Выявленное увеличение диаметра фибрилл после CXL, очевидно, является одним из факторов повышения прочностных свойств роговой оболочки [18].
S. Akhtar с коллегами изучали ультраструктурные изменения центральной зоны и периферии роговицы крыс через 7 дней после применения стандартного протокола CXL с деэпителизацией (3 мВт/см2 в течение 30 мин) [19]. Как показало исследование, после проведенного CXL в пределах одной и той же роговицы диаметр коллагеновых фибрилл и межфибриллярное расстояние в центре были значительно меньше по сравнению с таковыми на периферии [20]. В свою очередь, расстояние между фибриллами на периферии роговицы после CXL было существенно больше, чем в интактном контроле. Кроме того, площадь и плотность протеогликанов на периферии роговицы после CXL были значительно выше, чем в центральной части, что позволило авторам сделать предположение о большей эффективности CXL на периферии роговицы. Это может быть связано с более высоким содержанием люмикана, богатого лейцином, и более высокой диффузией кислорода и рибофлавина по периферии роговицы [21].
Изучение срезов роговицы кроликов с помощью SHG-визуализации (Second Harmonic Generation) показало, что коллагеновые волокна передней стромы после CXL (1–3 месяца) становятся значительно более выпрямленными по сравнению с ее задними слоями. В то время как волокна коллагена при меньшем влиянии CXL или без воздействия CXL выглядели гораздо более волнистыми [22, 23, 24]. Такой CXL-индуцированный эффект был назван авторами как «обжатие» коллагена. Возможно, это одна из причин уплотнения стромы в послеоперационном периоде (6 месяцев и более).
Другое исследование было посвящено гистологической оценке изменений в роговице кроликов после применения метода ускоренного сшивания коллагена – акселерированного CXL. Выявлено значительно большее (в 3 и более раз) количество апоптозных клеток в эндотелии и среди кератоцитов после CXL по сравнению с контрольной группой [25]. В ряде других экспериментальных исследований также отмечается апоптоз кератоцитов в передней и средней строме с незначительным повреждением эндотелиальных клеток [26]. Были представлены экспериментальные данные о том, что структура роговицы, измененная после CXL, ограничивает межламеллярную миграцию клеток и может приводить к нарушению нормального паттерна кератоцитов [27]. Таким образом, хотя CXL является надежным методом предотвращения прогрессирования КК, все еще существует риск повреждения эндотелиоцитов и связанных с ним осложнений, что свидетельствует о необходимости дальнейшего изучения данного вопроса.
Общепризнанная морфологическая картина стромы роговицы у пациентов с КК в ранний срок (1–30 суток) после CXL характеризуется, как правило, очаговым разволокнением коллагеновых пучков, вызванным развитием интра- и послеоперационного отека [8]. Кроме того, одним из неизменных последствий УФ воздействия на роговицу является гибель кератоцитов передней стромы. Имеются сведения, что в зоне лимба после CXL может наблюдаться снижение способности эпителиальных клеток к делению [28].
Проведенный in vitro иммуноанализ роговиц человека с КК показал, что CXL снижает жизнеспособность клеток, запускает апоптоз и ингибирует пролиферацию, не влияя на миофибробластическую трансформацию кератоцитов [29]. Как показывают результаты клинических исследований, после первоначального истощения кератоцитов в передней строме роговицы после CXL плотность клеток возвращается к среднему уровню через 6–12 месяцев после операции, что подтверждается исследованием с помощью конфокальной микроскопии [14]. Однако в ряде случаев может отмечаться стойкая потеря кератоцитов, что клинически может проявляться в виде визуально заметного роговичного рубца [30]. Одним из функциональных предназначений кератоцитов (особых фибробластов) является синтез основных типов коллагена и компонентов межклеточного матрикса. Соответственно, послеоперационное восстановление плотности кератоцитов является важным критерием долгосрочности CXL-индуцированного эффекта повышения биомеханической резистентности роговицы [31].
По данным Mazzotta C. с соавт., восстановление популяции кератоцитов у пациентов с КК начинается примерно через 1 мес. после CXL, усиливается на 3-м месяце и завершается примерно через полгода [32].
Клинические исследования показали, что CXL приводит к эпителиопатии в виде полиморфизма и полимегатизма эпителиальных клеток, снижению плотности и апоптозу кератоцитов, выраженному нарушению хода и структуры нервных волокон. Авторами было установлено, что процесс восстановления популяции кератоцитов происходит в сроки от трех до шести месяцев, нервных волокон – до года [33, 34]. Согласно данным других авторов, снижение чувствительности роговицы, связанное с утратой нервных волокон, отмечается на 15-е сутки после CXL, процесс начала их регенерации – через месяц и восстановление – через 6 месяцев [35]. Jordan C. с коллегами выявили тотальную потерю суббазального нервного сплетения и гибель кератоцитов передней стромы у пациентов с КК в раннем послеоперационном периоде с последующим (12 мес.) полным восстановлением поврежденных морфологических структур [36].
Следует отметить, что CXL помимо непосредственного лечебного эффекта несет и сопутствующее патогенетическое воздействие. Выраженность CXL-индуцированных осложнений в тканях глаза зависит от выбранного клинического протокола CXL, с соответствующим режимом УФ облучения и способом доставки фотосенсибилизатора в строму, исходного патологического состояния роговицы.
ЗАКЛЮЧЕНИЕ
Ультрафиолетовый кросслинкинг роговичного коллагена с рибофлавином индуцирует в роговице в раннем (до 1 месяца) послеоперационном периоде характерные морфологические и ультраструктурные изменения, связанные с очаговым разволокнением коллагена стромы, изменением межфибриллярного расстояния, увеличением диаметра фибрилл, утратой поверхностных нервных волокон, активацией апоптоза кератоцитов со снижением их количества, при сохранности клеток эндотелия.
Морфологические кросслинкинг-ассоциированные изменения носят транзиторный характер (до 6 месяцев) и преимущественно затрагивают переднюю и среднюю строму роговицы. В последующем (от 6 до 12 месяцев) отмечается восстановление корнеальных нервных волокон, репопуляция кератоцитов, упорядочивание нарушенной межфибриллярной последовательности, уплотнение коллагеновой структуры с сохранением жесткости роговицы, в том числе за счет увеличения диаметра фибрилл коллагена.
Эффективность ультрафиолетового кросслинкинга зависит от исходного состояния роговичного коллагена. Положительные кросслинкинг-индуцированные эффекты более выражены на фоне патологически измененной роговицы, в частности, при кератоконусе, по сравнению с экспериментальными моделями УФ кросслинкинга, воспроизведенными на интактных лабораторных животных.
Об авторах
Мухаррам Мухтарамович Бикбов
Башкирский государственный медицинский университет
Email: eye@anrb.ru
доктор медицинских наук, профессор, директор, Уфимский научно-исследовательский институт глазных болезней
Россия, УфаАхзат Рашидович Халимов
Башкирский государственный медицинский университет
Автор, ответственный за переписку.
Email: azrakhal@yandex.ru
доктор биологических наук, заведующий научно-инновационным отделом, Уфимский научно-исследовательский институт глазных болезней
Россия, УфаНаталья Евгеньевна Шевчук
Башкирский государственный медицинский университет
Email: ufaeyenauka@mail.ru
доктор биологических наук, заместитель директора по науке, Уфимский научно-исследовательский институт глазных болезней
Россия, УфаГюлли Мухаррамовна Казакбаева
Башкирский государственный медицинский университет
Email: gyullibikbova@gmail.com
кандидат медицинских наук, заведующая отделом офтальмологической и медицинской эпидемиологии, Уфимский научно-исследовательский институт глазных болезней
Россия, УфаЛейсан Ильшатовна Гилемзянова
Башкирский государственный медицинский университет
Email: gileisan@gmail.com
заведующая лабораторией экспериментальных исследований, Уфимский научно-исследовательский институт глазных болезней
Россия, УфаИскандер Дамирович Валишин
Башкирский государственный медицинский университет
Email: iskander0796@yandex.ru
врач-офтальмолог 1-го микрохирургического отделения, Уфимский научно-исследовательский институт глазных болезней
Россия, УфаСписок литературы
- Sporl E., Huhle M., Kasper M., Seiler T. Increased rigidity of the cornea caused by intrastromal cross-linking. Ophthalmologe. 1997;94(12):902–906. doi: 10.1007/s003470050219.
- Wollensak G., Spoerl E., Seiler T. Riboflavin/ultraviolet-A-induced collagen crosslinking for the treatment of keratoconus. American Journal of Ophthalmology. 2003;135(5):620–627. doi: 10.1016/s0002-9394(02)02220-1.
- Gassel C.J., Rock D., Konrad E.M., Blumenstock G., Bartz-Schmidt K.U., Rock T. Impact of keratoconus stage on outcome after corneal crosslinking. BMC Ophthalmology. 2022;22(1):207. doi: 10.1186/s12886-022-02425-8
- Link J., Herber R., Raiskup F., Pillunat L.E., Sporl E. Principles of corneal cross-linking: Presentation based on the development of the various treatment protocols. Ophthalmology. 2022;119(4):332–341. (In German) doi: 10.1007/s00347-021-01538-7.
- Melcher S., Zimmerer C., Galli R., Golden J., Herber R., Raiskup F. et al. Analysis of riboflavin/ultraviolet a corneal cross-linking by molecular spectroscopy. Heliyon. 2023;9(2):e13206. doi: 10.1016/j.heliyon.2023.e13206
- Lang S.J., Reinhard T. Crosslinking in keratoconus. Klinische Monatsblätter für Augenheilkunde. 2016;233(6):713–716. (In German) doi: 10.1055/s-0042-103494
- Халимов А.Р., Суркова В.К., Казакбаева Г.М., Усубов Э.Л., Халимова Л.И., Зайнуллина Н.Б. Особенности морфологической и ультраструктурной организации роговицы (обзор литературы). Acta Biomedica Scientifica. 2022;7(6):194–202. doi: 10.29413/ABS.2022-7.6.19.
- Зотов В.В., Сальников В.В., Поздеева Н.А. Изме-нения ультраструктуры стромы роговицы после проведения кросслинкинга. Практическая медицина. Офтальмология. 2012;1:95–96.
- Kling S., Hammer A., Conti A., Hafezi F. Corneal cross-linking with riboflavin and UV-A in the mouse cornea in vivo: morphological, biochemical, and physiological analysis. Translational Vision Science & Technology. 2017;6(1):7. doi: 10.1167/tvst.6.1.7
- Müller P.L., Loffler K.U., Kohlhaas M., Holz F.G., Herwig-Carl M.C. Morphologic Corneal Changes after Crosslinking for Keratoconus. Klinische Monatsblätter für Augenheilkunde. 2018;235(7):809–819. (In German) doi: 10.1055/s-0043-102577.
- Chang S.H., Mohammadvali A., Chen K.J., Ji Y.R., Young T.H., Wang T.J. et al. The Relationship Between mechanical properties, ultrastructural changes, and intrafibrillar bond formation in corneal UVA/riboflavin cross-linking treatment for keratoconus. Journal of Refractive Surgery. 2018;34(4):264–272. doi: 10.3928/1081597X-20180220-01
- Danielewska M.E., Kostyszak M.A., Sareło P., Gąsior-Głogowska M., Niemczyk M., Prządka P. et al. Indirectly assessing changes in corneal properties with OCT speckle after crosslinking in porcine eyes. Experimental Eye Research. 2022;219:109051. doi: 10.1016/j.exer.2022.109051
- Wollensak G., Sport E., Mazzotta C., Kalinski T., Sel S. Interlamellar cohesion after corneal crosslinking using riboflavin and ultraviolet A light. British Journal of Ophthalmology. 2011;95(6):876–880. doi: 10.1136/bjo.2010.190843
- Santhiago M.R., Randleman J.B. The biology of corneal cross-linking derived from ultraviolet light and riboflavin. Experimental Eye Research. 2021;202:108355. doi: 10.1016/j.exer.2020.108355.
- Халимов А.Р., Усубов Э.Л. Морфологическая оценка изменений в роговице экспериментальных животных после ультрафиолетового кросслинкинга. Точка зрения. Восток‒Запад. 2021;1:66–69. doi: 10.25276/2410-1257-2021-1-66-69.
- Bueno J.M., Avila F.J., Martinez-Garcia M.C. Quantitative analysis of the corneal collagen distribution after in vivo cross-linking with second harmonic microscopy. BioMed Research International. 2019;2019:3860498. doi: 10.1155/2019/3860498
- Subasinghe S.K., Ogbuehi K.C., Mitchell L., Dias G.J. Morphological alterations of the cornea following crosslinking treatment (CXL). Clinical Anatomy. 2021;34(6):859–866. doi: 10.1002/ca.23728.
- Бикбов М.М., Халимов А.Р., Шевчук Н.Е., Суркова В.К., Усубов Э.Л., Казакбаева Г.М. Особенности ультраструктурных изменений роговичного коллагена экспериментальных животных после УФ кросслинкинга роговицы. Современные технологии в офтальмологии. 2022;5(45):171–177. doi: 10.25276/2312-4911-2022-5-171-177.
- Akhtar S., Bron A.J., Salvi S.M., Hawksworth N.R., Tuft S.J., Meek K.M. Ultrastructural analysis of collagen fibrils and proteoglycans in keratoconus. Acta Ophthalmologica. 2008;86(7):764–772. doi: 10.1111/j.1755-3768.2007.01142.x.
- Almubrad T., Mencucci R., Smedowski A., Samivel R., Almutleb E., Alkanaan A. et al. Ultrastructural study of collagen fibrils, proteoglycans and lamellae of the cornea treated with iontophoresis – UVA cross-linking and hypotonic riboflavin solution. Saudi Journal of Biological Sciences. 2021;28(12):7160–7174. doi: 10.1016/j.sjbs.2021.08.019
- Akhtar S., Smedowski A., Masmali A., Alkanaan A., Khan A.A., Almutleb E. et al. Effect of Ultraviolet-A and Riboflavin treatment on the architecture of the center and periphery of normal rat cornea: 7 days post treatment. Experimental Eye Research. 2022;219:109064. doi: 10.1016/j.exer.2022.109064.
- Bradford S.M., Mikula E.R., Juhasz T., Brown D.J., Jester J.V. Collagen fiber crimping following in vivo UVA-induced corneal crosslinking. Experimental Eye Research. 2018;177:173–180. doi: 10.1016/j.exer.2018.08.009.
- Tan H Y., Chang Y.L., Lo W., Hsueh C.M., Chen W.L., Ghazaryan A.A. et al. Characterizing the morphologic changes in collagen crosslinked-treated corneas by Fourier transform-second harmonic generation imaging. Journal of Cataract & Refractive Surgery. 2013;39(5):779–788. doi: 10.1016/j.jcrs.2012.11.036
- Bradford S., Luo S., Brown D., Juhasz T., Jester J. A review of the epithelial and stromal effects of corneal collagen crosslinking. Ocular Surface. 2023;30:150–159. doi: 10.1016/j.jtos.2023.09.003.
- Xing H., Oyang H. Evaluation of corneal tissue changes after collagen cross-linking with ultraviolet and riboflavin A. Cellular and Molecular Biology (Noisy-le-Grand, France). 2022;68(5):72–76. doi: 10.14715/cmb/2022.68.5.9.
- Song W., Wang Y., Qiao J., Li H., Rond B., Yang S. et al. The comparative safety of genipin versus UVA-riboflavin crosslinking of rabbit corneas. Molecular Vision. 2017;23:504–513.
- Petroll W.M., Miron-Mendoza M., Sunkara Y., Ikebe H.R., Sripathi N.R., Hassaniardekani H. The impact of UV cross-linking on corneal stromal cell migration, differentiation and patterning. Experimental Eye Research. 2023;233:109523. doi: 10.1016/j.exer.2023.109523.
- Vimalin J., Gupta N., Jambulingam M., Padmanabhan P., Madhavan H. The effect of riboflavin-UV-A treatment on corneal limbal epithelial cells-А study on human cadaver eyes. Cornea. 2012;31(9):1052–1059. doi: 10.1097/ICO.0b013e3182498902.
- Song X., Strachan T., Wang J., Langenbucher A., Seitz B., Szentmáry N. Viability, apoptosis, proliferation, activation, and cytokine secretion of human keratoconus keratocytes after cross-linking. BioMed Research International. 2015;2015: 254237. doi: 10.1155/2015/254237.
- Bulirsch L.M., Weber C., Saßmannshausen M., Kohlhaas M., Holz F.G., Loeffler K.U. et al. Histological changes in keratoconus and wound healing after corneal cross-linking. Ophthalmologe. 2022;119(4):342–349. (In German) doi: 10.1007/s00347-021-01537-8.
- Messmer E.M., Meyer P., Herwig M.C., Loeffler K.U., Schirra F., Seitz B. et al. Morphological and immunohistochemical changes after corneal cross-linking. Cornea. 2013;32(2):111–117. doi: 10.1097/ICO.0b013e31824d701b.
- Mazzotta C., Traversi C., Caragiulo S., Rechichi M. Pulsed vs continuous light accelerated corneal collagen crosslinking: in vivo qualitative investigation by confocal microscopy and corneal OCT. Eye (Lond). 2014;28(10):1179–1183. doi: 10.1038/eye.2014.163/
- Саркисова К.Г. Комбинированный кросслинкинг роговичного коллагена при прогрессирующем кератокнусе: автореф. дис. … канд. мед. наук. М., 2023. 24 с.
- Аветисов С.Э., Бубнова И.А., Сурнина З.В., Аве-рич В.В., Саркисова К.Г. Изменения структуры роговицы после применения кросслинкинга роговичного коллагена при кератоконусе. Медицинский совет. 2022;16(6):226-233. doi: 10.21518/2079-701X-2022-16-6-226-233.
- Mazzotta C., Traversi C., Baiocchi S., Sergio P., Capo-rossi T., Caporossi A. Conservative treatment of keratoconus by riboflavin-UVA-induced cross-linking of corneal collagen: qualitative investigation. European Journal of Ophthalmology. 2006;16(4):530–535. doi: 10.1177/112067210601600405.
- Jordan C., Patel D.V., Abeysekera N., McGhee C.N.J. In vivo confocal microscopy analyses of corneal microstructural changes in a prospective study of collagen cross-linking in keratoconus. Ophthalmology. 2014;121(2):469–474. doi: 10.1016/j.ophtha.2013.09.014.
Дополнительные файлы
