ЭПИТЕЛИАЛЬНО-МЕЗЕНХИМАЛЬНЫЙ ПЕРЕХОД I ТИПА КАК ВАЖНЫЙ БИОЛОГИЧЕСКИЙ ПРОЦЕСС В ЭМБРИОГЕНЕЗЕ


Цитировать

Полный текст

Аннотация

Эпителиально-мезенхимальный (ЭМП) и мезенхимально-эпителиальный (МЭП) переходы играют значительную роль в процессах эмбрио-, органогенеза и клеточной дифференцировке. Эпителиально-мезенхимальный переход также способствует регенерации поврежденных тканей, но в случае его аберрантной активации может инициировать и усугублять течение таких патологических процессов, как фиброз, метастазирование и канцерогенез. В обзоре мы рассмотрели основные исторические этапы изучения данных процессов в контексте эмбрионального развития, а также обсудили проблемы терминологии и разные взгляды на представления о детерминированности зрелых клеток.

Полный текст

Эпителиально-мезенхимальный переход (ЭМП) -сложный динамический процесс, в результате которого эпителиальные клетки постепенно приобретают обратимый мезенхимальный фенотип. Данный термин был предложен и утвержден в 2007 г. в Польше и в 2008 г. в Cold Spring Harbor Laboratories [42]. только два клеточных фенотипа: эпителиальный или мезенхимальный. 6000 1980 2000 2020 Years Рис. 1. Количество статей по запросу ЭМП на ресурсе PubMed История изучения ЭМП как биологического феномена начинается в 1968 г., при этом количество опубликованных научных работ, посвященных данной тематике, было относительно невелико. Но, начиная с 2000 г., наблюдается взрывной интерес к ЭМП и его роли в физиологических и патологических процессах. Так, число поисковых запросов «эпителиальный переход в мезенхиму» в базе данных PubMed увеличилось с 31 в 2001 до 244 в 2005 г., в 2010 г. их было уже 942, а в 2020 г. - 5188 (рис. 1). Впервые ЭМП был охарактеризован как трансформация эпителиальных клеток в мезенхимальные В настоящее время установлено, что клетки претерпевают только морфофункциональные изменения, не затрагивающие генетический аппарат клетки, вследствие чего ЭМП является обратимым процессом [2]. [30], при этом утверждалось, что переход является «билетом в один конец» и что детерминированы Кроме того, сам ЭМП включает в себя ряд промежуточных трансформационных стадий от эпителиального до мезенхимального фенотипов, между которыми могут переключаться клетки после внеклеточных стимулов прогрессивным и обратимым образом [64]. Несмотря на то, что ЭМП опосредуется множеством молекулярных механизмов, основные общие черты процесса включают в себя потерю клеткой эпителиальных свойств (межклеточные взаимодействия и апико-базальная полярность) с одновременным усилением мезенхимальных признаков (цитозольное расширение, задняя-передняя полярность и повышенная миграция/способность к инвазии) [46]. Эпителиально-мезенхимальный переход может инициироваться как при физиологических (эмбриональное развитие, заживление ран), так и патологических (фиброз, рак) процессах и обычно классифицируется в соответствии с внеклеточным контекстом, а не молекулярными механизмами. Также выделяют полный и частичный ЭМП. К частичному ЭМП относят, например, эпителизацую ран, когда миграции подвергается эпителиальный пласт, а при полном ЭМП происходит миграция отдельных клеток [3]. Каллури с соавторами [42] выделяют 3 разновидности ЭМП. ЭМП I типа наблюдается преимущественно при эмбриологическом развитии, механизмы ЭМП II типа включаются во время заживления ран и фиброза, а ЭМП III типа характерен для процессов онкогенеза. В данном обзоре будут представлены основные этапы в истории изучения ЭМП и рассмотрены молекулярные аспекты ЭМП I типа и его роль во время эмбрионального развития. Также более подробно остановимся на проблеме «признания» ЭМП как биологического явления. «Фенотипический» этап изучения эпителиально-мезенхимального перехода Элизабет Декстер «Бетти» Хэй (1927-2007, Гарвардская медицинская школа), вероятно, была первой, кто описал ЭМП, а позже использовал этот термин. Элизабет Хей впервые изучала регенерацию конечностей амфибий и подробно описала дедифференци-ровку хрящевых клеток конечностей эмбриона саламандры, которые участвовали в формировании новых конечностей путем повторной дифференцировки, что напоминало своего рода ЭМП [49]. В дальнейшем, изучая роль внеклеточного матрикса (ВКМ) в дифференцировке эпителиальных клеток, она показала, что состав ВКМ влияет на дифференци-ровку эпителиальных клеток роговицы и секрецию белков ВКМ, таких как коллаген и гликозаминогликаны [53]. Затем Элизабет Хэй, используя модели куриных эмбрионов, определила и перечислила различные клеточные фенотипы в процессе их развития. Во время своего выступления на 18-м симпозиуме Ганемана в Балтиморе в 1968 г. она описала, как мезенхимальные ткани выделяются из эпителиальных клеток во время миграции клеток нервного гребня при формировании нервной трубки [37]. Хэй и ее команда впервые использовали термин «трансформация эпителия в мезенхиму» в 1982 г. в публикации, впервые описывающей зрелые клетки, подвергающиеся ЭМП. Они показали, что культура эпителиальных клеток хрусталика цыпленка (взрослых или эмбриональных), суспендированных в коллагеновых гелях, может приводить к цитозольному расширению у псевдопод. Эти клетки затем могут индивидуально перемещаться в коллагеновой матрице и обладают мезенхимальным фенотипом [32]. В 1981 г. R. Dulbecco с соавторами опубликовали статью в журнале «Cell Biology», в которой был описан «переход клеток от кубовидной формы к веретенообразной» [20]. Они заметили, что кубовидные эпителиальные клетки опухолей молочной железы крыс, индуцированные однократной внутривенной инъекцией N-нитрозометилмочевины, могут приводить к образованию веретенообразных клеток, морфологически схожих с фибробластами при культивировании. В другой работе [8] аналогичные изменения отмечали у изолированных клеток, выдел е нных от разных крыс. В 1982 году швейцарские и немецкие исследователи [24] показали, что первые мезенхимные клетки, появляющиеся во время эмбриогенеза мышей, происходят из эпителиальных клеток, которые теряют десмосомы, а цитокератиновые фила-менты замещаются виментиновыми. Они не использовали термин ЭМП, но охарактеризовали данный процесс как «быстрое изменение эпителиального характера на мезенхимальный». Ком а нда Э. Хэй продолжила работу над изучением ЭМП, начав с морфологического исследования цитоскелета во время ЭМП, используя только световую и электронную микроскопию. В 1986 г. с помощью метода вестерн-блоттинга им удалось показать, что в эпителиальных клетках хрусталика курицы происходило снижение коллагена IV типа, составляющего остов базальной пластинки, и Y-кристаллина, но при этом появлялся коллаген I типа, характерный для соединительных тканей [31]. При изучении ЭМП в щитовидной железе было продемонстрировано, что в тимо-цитах данный процесс сопровождался глобальным ремоделированием цитоскелета, включая активацию синтеза виментина, сопровождающееся снижением тиреоглобулина, что косвенным образом указывало на дедифференцировку клеток [31]. В течение следующих лет лаборатория под руководством Э. Хэй работала над изучением процессов эмбрионального развития и предложила «теорию фиксированной коры» для объяснения миграции клеток нервного гребня [9. 33]. В публикации [38] авторами особо подчеркивалась важность межклеточных взаимодействий для миграции мезенхимальных клеток. В дальнейшем научная группа Э. Хэй выяснила, что ЭМП задействован и в другом процессе во время развития эмбриона: небном слиянии, когда эпителиальные клетки из медиального края эмбрионального небного эпителия мигрируют с каждой стороны, обеспечивая слияние неба [23]. «Молекулярный» этап изучения эпителиально-мезенхимального перехода В начале 1990-х годов первыми изученными молекулярными структурами, индуцирующими ЭМП, были белки семейства TGF (trans growth factor, трансформирующий фактор роста): TGF-a, TGF-p1, TGF-p2, TGF-p3. Так, показано, что избыточная экспрессия TGF-a приводит к усилению мезенхимальных и инвазивных свойств в клетках рака простаты крыс [25]. В 1991 году Поттс с соавторами продемонстрировали важное значение TGF-p3 в ЭМП эндотелиальных клеток сердца эмбриона [68], а в 1994 году они показали, что эпителиальные клетки молочных желез, обработанные TGF-p, могут подвергаться ЭМП [54]. В последующие годы, благодаря усовершенствованию соответствующих методов исследования, более подробно были изучены молекулярные механизмы, регулирующие ЭМП. Команда Э. Хэй привела доказательства важности белков семейства TGF-p, в том числе TGF-p3, во время ЭМП при сращении небного эмбриона цыпленка [75]. В дальнейшем при более детальном изучении они установили, что в регуляцию TGF-p-индуцированного ЭМП вовлечены белки семейства SMAD (Similar to Mothers Against Decapentaplegic) [58, 59]. Данное наблюдение получило подтверждение в 1999 г. в лаборатории под руководством P. Dijke (Ludwig Institute for Cancer Research, Уппсала, Швеция), где установили и детализировали роль белков SMAD в индукции ЭМП после активации рецептора TGF-p [68]. Уже в 2008 г. команда Э. Хэй, работая с клеточными линиями, полученных из опухолей, показала, что семейство белков SNAIL в синергии с EMT-ATF (активированный фактор транскрипции эпителиально-мезенхимального перехода) может индуцировать экспрессию TGF-p3 [52]. Одновременно с этим и другие исследователи описали ЭМП при работе с линиями опухолевых клеток, но с использованием других моделей. Анализируя и суммируя полученную информацию, Э. Хэй с соавторами опубликовали обзор [36], в котором они изложили известные на тот момент молекулярные механизмы индукции ЭМП, гены, регули-руемые или регулирующие ЭМП, а также участие ЭМП в патологических процессах, особенно при метастази-ровании. В другой обзорной статье, опубликованной в том же году, они впервые использовали термин «переход от эпителия к мезенхиме», и описали отдельные гены, участвующие в ЭМП или обратном феномене, переходе от мезенхимы к эпителию (мезенхимально-эпителиальный переход, МЭП) [40]. Современное представление о молекулярных механизмах эпителиально-мезенхимального перехода Многочисленные исследования, посвященные изучению Э М П, в значительной мере поспособствовали пониманию молекулярных механизмов, управляющих данным процессом. Однако за последнее десятилетие многие механизмы были полностью пересмотрены и актуализированы [63, 27]. Здесь будет представлено краткое изложение современных знаний о путях молекулярной индукции факторов транскрипции в ЭМП. Как было уже показано, первый описанный механизм индукции ЭМП был опосредован белками семейства TGF-p, который и в настоящее время не потерял своей актуальности [35]. Так, рецептор TGF-p может активировать несколько внутриклеточных путей ЭМП, таких как канонический путь с участием SMAD, что приводит к экспрессии EMT-ATF [86]. Другие неканонические пути, такие как Rho-GTPase [80, 16], PI3K/AKT [43] и MAPK [85, 6], также активируются рецептором TGF-p и могут индуцировать ЭМП. Все эти пути являются избыточными и могут действовать вместе или по отдельности, что объясняет множество фенотипов ЭМП. Установлены и другие пути, приводящие к индукции ЭМП независимо от TGF-p. Так, TNF-a-опосредо-ванный путь транскрипционного фактора NFkB или путь EGF (эпидермальный фактор роста) может действовать в синергии с TGF-p [48, 22]. Кроме того, другие факторы роста, такие как FGF (фактор роста фибро-бластов) [76], HGF (фактор роста гепатоцитов) [34], IGF1 (инсулиноподобный фактор роста 1) [28], PDGF (фактор роста тромбоцитов) [91] и VEGF (фактор роста эндотелия сосудов) [87], также могут потенцировать PI3K/AKT и сигнализацию MAPK. К еще одним индукторам ЭМП, выявленным на разных клеточных линиях, относятся сигнальные пути Wnt [60], Hedgehog [12] и Notch [83, 61]. Кроме того, в условиях гипоксии и в присутствии интерлейкинов 6 и 8 (IL-6 и IL-8) в опухолевых клетках также активизируется процесс ЭМП. Многие сигнальные пути ЭМП приводят к активации экспрессии транскрипционного фактора EMT-ATF. Первыми описанными регуляторами EMT-ATF были Snail и Slug (позже названные Snail 1 и Snail 2) [72, 62], которые могут репрессировать или активировать транскрипцию гена EMT-ATF в ответ на индукцию ЭМП. Впервые механизм ингибирования ЭМП in vivo, реализованный через блокаду Snail или Slug, был показан Nieto с соавторами в 1994 [64], а также в других исследованиях [15, 84]. EMT-ATF представлено двумя основными семейства. Семейство ZEB (Zinc finger E-box-binding homeobox) было описано в 2001 г. [17] и включает двух представителей: ZEB1 и ZEB2, которые одновременно являются активаторами или репрессорами транскрипции. В 2004 г. было установлено второе семейство факторов транскрипции EMT-ATF: Twist (Twist 1 и Twist 2) [90]. Данные транскрипционные факторы могут непосредственно репрессировать экспрессию гена E-cadherin во время ЭМП [17, 88, 14, 21]. Снижение белка E-cadherin в клетке является центральным явлением в этом феномене, и этот одно из первых молекулярных событий, которое позволило связать ЭМП с онкогенезом [7, 10, 66]. На рис. 2 наглядно представлены основные молекулярные механизмы, задействованные в ЭМП. Анализируя даже эту краткую схему, можно понять, насколько сложным и динамическим процессом является эпителиально-мезенхимальный переход. Рис. 2. Основные сигнальные пути регуляции ЭМП. Адаптировано из Lachat (2021) Эпителиально-мезенхимальный переход во время эмбрионального развития Впервые ЭМП наблюдали в процессе эмбрионального развития. Здесь представлены основные этапы эмбриогенеза и органогенеза, в которых значительная роль принадлежит ЭМП. Гаструляция В начале третьей недели развития эмбрион состоит из эмбрионального диска, включающего два слоя: гипобласт (примитивная энтодерма) и эпибласт (примитивная эктодерма). Некоторые клетки эпибласта подвергаются ЭМП и перемещаются между двумя слоями, образуя третий слой: мезодерму [79, 57]. Формирование нервной трубки В конце третьей недели эмбрионального развития эмбрион состоит из трех эмбриональных слоев: э ктодерм ы, м езоде рмы и энтодермы. Нервная пластинка соответствует толстому участку эктодермы, где клетки быстро делятся. Края этой пластинки растут, образуя нервную бороздку, по обе стороны от которой расположены нервные гребни. В дальнейшем клетки нервного гребня перемещаются к медиальному краю, что и обеспечивает слияние нервных гребней. В процессе слияния клетки нервного гребня подвергаются ЭМП, и они рассеиваются в мезодерме [70, 13], а нервная трубка отделяется от эктодермы. Слияние нёба эмбриона В течение девятой недели эмбриогенеза эмбриональные нёбные полки (по одной с каждой стороны) перемещаются, чтобы встретиться медиальными краями и слиться. Эпителий медиальных краев парного нёба сначала слипается, а затем исчезает, когда его эпителиальные клетки подвергаются ЭМП и рассеиваются в соседней мезенхиме [26]. Вначале было выдвинуто предположение, что апоптоз может быть причиной исчезновения медиального краевого эпителия нёба [28, 55]; однако другие авторы показали, что апоптотические клетки были частью поверхностного слоя этого эпителия. Этот поверхностный слой под влиянием апоптотических стимулов позволяет клеткам базальных слоев сливаться и подвергаться ЭМП [23, 58]. Недавно было продемонстрировано, что эти клетки не рассеиваются, а вместе мигрируют в направлении ротовой полости. Они могут подвергаться лишь частичному ЭМП, что приводит к поддержанию некоторых межклеточных соединений. Клетки с выраженным мезенхимальным фенотипом могут способствовать миграции группы клеток [49]. Это явление наблюдается и при образовании метастазов раковыми клетками. Гаструляция, формирование нервной трубки и эмбриональное слияние нёба являются основными этапами эмбрионального развития с вовлечением ЭМП. Однако ЭМП также участвует и в комплиментарных процессах: ЭМП совместно с МЭП контролируют образование сомитов [19, 56, 77] и образование сердечных клапанов из эмбрионального эндокарда [69, 67, 71]. ЭМП при фиброзе Одно из первых описаний ЭМП при фиброзе было сделано группой Эрика Нилсона в 2002 г. (Нэшвилл, Теннесси, США) [41]. На модели фиброза почек они показали, что фибробласт-подобные клетки могут появляться локально в результате ЭМП во время фиброгенеза. Позже команда Рагху Каллури (Гарвардская медицинская школа, Бостон, Массачусетс, США) предоставила доказательства того, что ЭнМП (или переход от эндотелия к мезенхиме) также способствует появлению фибробласт-подобных клеток в печени и при фиброзе сердца [90, 91]. При этом в вопросе происхождения миофибробластов исследователи не пришли к общему знаменателю. Так, авторы в недавно опубликованной работе [47] опровергли происхождение миофибробластов из эпите-лиоцитов почки в процессе фиброза, однако в других работах представлены новые доказательства в необходимости частичного ЭМП эпителиальных клеток почки для аттракции мезенхимальных клеток из костного мозга и миофибробластов, участвующих в фиброзе [85, 86, 87]. Также значительный вклад ЭМП в процессы фиброгенеза обсуждался и в других работах [28, 88, 89]. Таким образом, основные стратегии лечения фиброза различных органов и тканей нацелены на прерывание каскада реакций ЭМП [28]. Признаки эпителиально-мезенхимального перехода При ЭМП в клетках изменяется активность генов, что проявляется синтезом определенных белков, которые могут использоваться в качестве маркеров ЭМП. К числу маркеров ЭМП можно отнести как изменение количества эпителиальных/мезенхимальных маркеров, так и регуляторных белков, участвующих в запуске и осуществлении программ ЭМП [1]: Морфологические маркеры: - изменение формы клеток на более вытянутую; - потеря связи с соседними клетками; - потеря связи с базальной мембраной и ее разрушение. Молекулярные и иммуногистохимические маркеры: - снижение экспрессии генов цитокератина, Е-кад-герина, ZO-1; - экспрессия генов виментина, N-кадгерина, фибронектина; - ядерная транслокация р-катенина; - нарушение межклеточных контактов; - перестройка цитоскелета; - изменение уровней экспрессии транскрипционных факторов, белков плотных контактов, матриксных металлопротеиназ. Функциональные маркеры: - способность отделяться от окружающих клеток; - повышенная подвижность; - повышенная инвазивность, способность разрушать базальную мембрану; - устойчивость к апоптозу; - устойчивость к химиотерапии; - приобретение признаков раковых стволовых клеток; - способность синтезировать компоненты экстра-целлюлярного матрикса. Проблема эпителиально-мезенхимального перехода Несмотря на большое количество работ, посвященных исследованию ЭМП, а также организованной Международной Ассоциации ЭМП, существует ряд исследований, ставящих под сомнение существование этого явление в норме [45]. Так, Круз с соавторами отметили неточности в постановке и интерпретации результатов эксперимента в работе Ивано с соавторами [51], а также поставили под сомнение досто верность полученных результатов. В своей статье группа ученых из Массачусетса под руководством Хамфриса приводят опровержения как способности эпителиоцитов в нормальных условиях превращаться в миофибробласты, так и существование самого явления ЭМП [5]. Климковский с соавторами выдвинули предположение, что процесс ЭМП представляет собой совокупность нескольких сходных процессов и предлагает различать ЭМП с полным переходом эпителиальных клеток в мезенхимальные (в эмбриогенезе), и ЭМП-подобные процессы без всех характерных признаков в канцерогенезе [44]. Так как большое количество существующей научной литературы по ЭМП опубликована на английском языке, это вызывает дополнительные трудности в корректной интерпретации используемой терминологии [4]. Также ряд вопросов вызывает сам русскоязычный термин «эпителиально-мезенхимальный переход» из-за неоднозначности перевода общепринятого термина «Epithelial-mesenchymal transition». Так, в русскоязычном переводе международной номенклатуры за 2009 г. [82] определения «эпителиально-мезенхимальный переход» нет. В издании международных терминов по эмбриологии с официальным списком русских эквивалентов есть термин «эпителиально -мезенхимальная трансформация», однако объяснения этого термина также отсутствуют [81]. Вследствие чего некоторые российские ученые высказывают сомнения в необходимости данной терминологии [3]. ЗАКЛЮЧЕНИЕ Таким образом, интерес исследователей к ЭМП не ослабевает, а данное направление в медико-биологических науках не теряет своей актуальности и значимости. Вопросы о механизмах, роли, доказательствах и терминологии ЭМП до сих пор остаются дискутабельными, несмотря на более чем 50-летнюю историю изучения данного вопроса во многих странах мира. Дальнейшее изучение механизмов ЭМП и его роли в физиологических и патологических процессах поможет установить взаимосвязи между ними и послужить основой для разработки новых терапевтических стратегий коррекции заболеваний, опосредованных индукцией процесса «переход от эпителия к мезенхиме».
×

Об авторах

Ирина Александровна Дворяшина

ФГБОУ ВО «Волгоградский государственный медицинский университет» Министерства здравоохранения Российской Федерации

Email: germionna@yandex.ru
старший преподаватель кафедры гистологии, эмбриологии, цитологии

Ю. И Великородная

ГБУ «Волгоградский медицинский научный центр»

А. В Терентьев

ФГБОУ ВО «Волгоградский государственный медицинский университет» Министерства здравоохранения Российской Федерации

кафедра гистологии, эмбриологии, цитологии

В. Л Загребин

ФГБОУ ВО «Волгоградский государственный медицинский университет» Министерства здравоохранения Российской Федерации

кафедра гистологии, эмбриологии, цитологии

Список литературы

  1. Потапов В. Е., Синельник Е. А., Акименко М. А. и др. /Современные представления о роли эпителиально-мезенхимального перехода в развитии почечного фиброза// Молодой ученый. - 2016. - № 15.2 (119.2). - С. 28-33.
  2. Мнихович М.В., Вернигородский С.В., Буньков К.В., Мишина Е.С. Эпителиально-мезенхимальный переход, трансдифференциация, репрограммирование и метаплазия: современный взгляд на проблему // Вестник Национального медико-хирургического Центра им. Н. И. Пирогова. - 2018. - № 2. - 2018.
  3. Русакова С.Э., Бирина В.В., Камардин Е.В.Мезенхима, эпителии и «эпителиально-мезенхимальные переходы» // Вопросы морфологии XXI века : Сборник трудов. - 2018. - С. 40-46.
  4. Сазонов С.В., Конышев К.В., Казанцева Н.В. и др. Эпителиально-мезенхимальный переход в норме и патологии // Архив патологии ]. - 2015. - Т. 77, № 1. - С. 75-83.
  5. Humphreys B.D., Lin S.L., Kobayashi A. Fate tracing reveals the pericyte and not epithelial origin of myofibroblasts in kidney fibrosis // Am. J. Pathol. - 2010. - No. 176. - Р. 85-97.
  6. Bakin A.V., Rinehart, C., Tomlinson A.K., Arteaga C.L. p38 mitogen-activated protein kinase is required for TGFbeta-mediated fibroblastic transdifferentiation and cell migration // J. Cell Sci. - 2002. - No. 115. - P. 3193-3206.
  7. Batlle, E., Sancho, E., Franci, C., et al. The transcription factor Snail is a repressor of E-cadherin gene expression in epithelial tumour cells // Nat. Cell Biol. - 2000. - No. 2. - P. 84-89.
  8. Bennett D.C., Peachey L.A., Durbin H., Rudland P.S. A possible mammary stem cell line // Cell. - 1978. - No. 15. -P. 283-298.
  9. Bilozur M.E., Hay E.D. Cell migration into neural tube lumen provides evidence for the "fixed cortex" theory of cell motility // Cell Motil. - 1989. - No. 14. - P. 469-484.
  10. Birchmeier C., Brand-Saheri B., Birchmeier W., Brand-Saberi B. Epithelial-Mesenchymal Transitions in Cancer Progression // Cells Tissues Organs. - 1996. - No. 156. -P. 217-226.
  11. Borges F.T., Melo S.A., Ozdemir B.C., et al. TGF-p1-Containing exosomes from injured epithelial cells activate fibroblasts to initiate tissue regenerative responses and fibrosis // J. Am. Soc. Nephrol. - 2012. - No. 24. - P. 385-392.
  12. Briscoe J., Therond P.P. The mechanisms of Hedgehog s i gnalling and its roles in development and disease // Nat. Rev. Mol. Cell Biol. - 2013. - No. 14. - P. 416-429.
  13. Bronner M.E. Formation and migration of neural crest cells in the vertebrate embryo // Histochem. Cell Biol. - 2012. -No. 138. - P. 179-186.
  14. Cano A., Perez-Moreno M.A., Rodrigo I., et al. The transcription factor Snail controls epithelial-mesenchymal transitions by repressing E-cadherin expression // Nat. Cell Biol. - 2000. - No. 2. - P. 76-83.
  15. Carver E.A., Jiang R., Lan Y., et al. The mouse snail gene encodes a key regulator of the epithelial-mesenchymal transition // Mol. Cell. Biol. - 2001. - No. 21. - P. 8184-8188.
  16. Cho H.J., Yoo J. Rho activation is required for transforming growth factor-beta-induced epithelial-mesenchymal transition in lens epithelial cells // Cell Biol. Int. - 2007. -No. 31. - P. 1225-1230.
  17. Comijn J., Berx G., Vermassen P., et al. The twohanded e box binding zinc finger protein sip1 downregulates E-cadherin and induces invasion // Mol. Cell. - 2001. - No. 7. -P. 1267-1278.
  18. Cuervo R., Covarrubias L. Death is the major fate of medial edge epithelial cells and the cause of basal lamina degradation during palatogenesis // Development. - 2004. -No. 131. - P. 15-24.
  19. Duband J.L., Dufour, S., Hatta, K., et al. Adhesion molecules during somitogenesis in the avian embryo // J. Cell Biol. - 1987. - No. 104. - P. 1361-1374.
  20. Dulbecco R., Henahan M., Bowman M., et al. Generation of fibroblast-like cells from cloned epithelial mammary cells in vitro: A possible new cell type // Proc. Natl. Acad. Sci. -1981. - No. 78. - P. 2345-2349.
  21. Eger A., Aigner K., Sonderegger S., et al. DeltaEF1 is a transcriptional repressor of E-cadherin and regulates epithelial plasticity in breast cancer cells // Oncogene. - 2005. - No. 24. - P. 2375-2385.
  22. Ellerbroek S.M., Halbleib J.M., Benavidez M., et al. Phosphatidylinositol 3-kinase activity in epidermal growth factor-stimulated matrix metalloproteinase-9 production and cell surface association // Cancer Res. - 2001. - No. 61. -P. 1855-1861.
  23. Fitchett J.E., Hay E.D. Medial edge epithelium transforms to mesenchyme after embryonic palatal shelves fuse // Dev. Biol. - 1989. - No. 131. - P. 455-474.
  24. Franke W.W., Grund C., Kuhn C., et al. Formation of cytoskeletal elements during mouse embryogenesis. III. Primary mesenchymal cells and the first appearance of vimentin filaments // Differentiation. - 1982. - No. 23. - P. 43-59.
  25. Gavrilovic J., Moens G., Thiery J.P., Jouanneau J. Expression of transfected transforming growth factor alpha induces a motile fibroblast-like phenotype with extracellular matrix-degrading potential in a rat bladder carcinoma cell line // Cell Regul. - 1990. - No. 1. - P. 1003-1014.
  26. Gibbins J.R., Manthey A., Tazawa Y.M., et al. Midline fusion in the formation of the secondary palate anticipated by upregulation of keratin K5/6 and localized expression of vimentin mRNA in medial edge epithelium // Int. J. Dev. Biol. -1999. - No. 43. - P. 237-244.
  27. Gonzalez D.M., Medici D. Signaling mechanisms of the epithelial-mesenchymal transition // Sci. Signal. - 2014. -Vol. 7 (344), re8. - doi: 10.1126/scisignal.2005189.
  28. Graham T.R., Zhau H.E., Odero-Marah V.A., et al. Insulin-like growth factor-i-dependent up-regulation of ZEB1 drives epithelial-to-mesenchymal transition in human prostate cancer cells // Cancer Res. - 2008. - No. 68. -P. 2479-2488.
  29. Grande M.T., Sanchez-Laorden B., Lopez-Blau C., et al. Snail1-induced partial epithelial-to-mesenchymal transition drives renal fibrosis in mice and can be targeted to reverse established disease // Nat. Med. - 2015. - No. 21. - P. 989-997.
  30. Greenburg G., Hay E. Cytodifferentiation and tissue phenotype change during transformation of embryonic lens epithelium to mesenchyme-like cells in vitro // Dev. Biol. -1986. - No. 115. - P. 363-379.
  31. Greenburg G., Hay E. Cytoskeleton and thyroglobulin expression change during transformation of thyroid epithelium to mesenchyme-like cells. Development. - 1988. - No. 102. -P. 605-622.
  32. Greenburg G., Hay E.D. Epithelia suspended in collagen gels can lose polarity and express characteristics of migrating mesenchymal cells // J. Cell Biol. - 1982. - No. 95. - P. 333-339.
  33. Bilozur M.E., Hay E.D. Neural crest migration in 3D extracellular matrix utilizes laminin, fibronectin, or collagen // Dev. Biol. - 1988. - No. 125. - P. 19-33.
  34. Grotegut S., Von Schweinitz D., Christofori G., Lehembre F. Hepatocyte growth factor induces cell scattering through MAPK/Egr-1-mediated upregulation of Snail // EMBO J. - 2006. - No. 25. - P. 3534-3545.
  35. Hao Y., Baker D., Dijke P.T. TGF-p-Mediated Epithelial-Mesenchymal Transition and Cancer Metastasis // Int. J. Mol. Sci. - 2019. - No. 20. - P. 2767.
  36. Hay E.D. An overview of epithelio-mesenchymal transformation // Acta Anat. - 1995. - No. 154. - P. 8-20.
  37. Hay E.D. Organization and Fine Structure of Epithelium and Mesenchyme in the Developing Chick Embryo. In Epithelial-Mesenchymal Intercations // 18th Hahnemann Symposium / R. Fleischmajer, R. Billingham (Ed.); The Williams and Wilkins Company. - Baltimore, MD, 1968. - P. 31-55.
  38. Hay E.D. Role of cell-matrix contacts in cell migration and epithelial-mesenchymal transformation // Cell Differ. Dev. -1990. - No. 32. - P. 367-375.
  39. Hay E.D. The Fine Structure of Blastema Cells and Differentiating Cartilage Cells in Regenerating Limbs of Am-blystoma Larvae // J. Cell Biol. - 1958. - No. 4. - P. 583-592.
  40. Hay E.D., Zuk A. Transformations between epithelium and mesenchyme: Normal, pathological, and experimentally induced // Am. J. Kidney Dis. - 1995. - No. 26. - P. 678-690.
  41. Iwano M., Plieth D., Danoff T.M., et al. Evidence that fibroblasts derive from epithelium during tissue fibrosis // J. Clin. Investig. - 2002. - No. 110. - P. 341-350.
  42. Kalluri R., Weinberg R. A. The basic of epithelial-mesenchymal transition // J. Clin. Invest. - 2009. - No. 119. -P. 1420-1428.
  43. Kattla J.J., Carew R.M., Heljic M., et al. Protein kinase B/Akt activity is involved in renal TGF-p1-driven epithelial-mesenchymal transition in vitro and in vivo // Am. J. Physiol. Ren. Physiol. - 2008. - No. 295. - P. F215-F225.
  44. Klymkowsky M.W., Savagner P. Epithelial-mesenchymal transition. A cancer researcher's conceptual friend and foe // Am. J. Pathol. - 2009. - Vol. 174 (5). - P. 1588-1593.
  45. Kriz W., Kaissling B., Le Hir M. Epithelial-mesenchymal transition (EMT) in kidney fibrosis: fact or fantasy? // J Clin Invest. - 2011. - Vol. 121 (2). - P. 468-474.
  46. Lachat C., Peixoto P., Hervouet E. Epithelial to Mesenchymal Transition History: From Embryonic Development to Cancers // Biomolecules. - 2021. - Vol. 11 (6). - P. 782.
  47. LeBleu V.S., Taduri G., O'Connell J., et al. Origin and function of myofibroblasts in kidney fibrosis // Nat. Med. - 2013. - No. 19. - P. 1047-1053.
  48. Liao S.-J., Luo J., Li D., et al. TGF-p1 and TNF-a synergistically induce epithelial to mesenchymal transition of breast cancer cells by enhancing TAK1 activation // J. Cell Commun. Signal. - 2019. - No. 13. - P. 369-380.
  49. Logan S.M., Benson M.D. Medial epithelial seam cell migration during palatal fusion // J. Cell. Physiol. - 2020. -No. 235. - P. 1417-1424.
  50. Lovisa S., LeBleu V.S., Tampe B., et al. Epithelial-to-mesenchymal transition induces cell cycle arrest and parenchymal damage in renal fibrosis // Nat. Med. - 2015. -No. 21. - P. 998-1009.
  51. Iwano M., Plieth D., Danoff T.M. Evidence that fibroblasts derive from epithelium during tissue fibrosis // J. Clin. Invest. - 2002. - No. 110. - Р. 341-350.
  52. Medici D., Hay E.D., Olsen B.R. Snail and Slug Promote Epithelial-Mesenchymal Transition through p-Catenin-T-Cell Factor-4-dependent Expression of Transforming Growth Factor-p3 // Mol. Biol. Cell. - 2008. - No. 19. - P. 4875-4887.
  53. Meier S., Hay E.D. Control of corneal differentiation by extracellular materials. Collagen as a promoter and stabilizer of epithelial stroma production // Dev. Biol. - 1974. - No. 38. -P. 249-270.
  54. Miettinen P.J., Ebner R., Lopez A.R., Derynck R. TGF-beta induced transdifferentiation of mammary epithelial cells to mesenchymal cells: Involvement of type I receptors / J. Cell Biol. - 1994. - No. 127. - P. 2021-2036.
  55. Mori C., Nakamura N., Okamoto Y., Osawa M., Shiota K. Cytochemical identification of programmed cell death in the fusing fetal mouse palate by specific labelling of DNA fragmentation // Anat. Embryol. - 1994. - No. 190. - P. 21-28.
  56. Nakaya Y., Kuroda S., Katagiri Y.T., et al. Mesenchymal-epithelial transition during somitic segmentation is regulated by differential roles of Cdc42 and Rac1 // Dev. Cell. - 2004. -No. 7. - P. 425-438.
  57. Nakaya Y., Sheng G. Epithelial to mesenchymal transition during gastrulation: An embryological view // Dev. Growth Differ. - 2008. - No. 50. - P. 755-766.
  58. Nawshad A., LaGamba D., Hay E. Transforming growth factor p (TGFp) signalling in palatal growth, apoptosis and epithelial mesenchymal transformation (EMT) // Arch. Oral Biol. -2004. - No. 49. - P. 675-689.
  59. Nawshad A., Medici D., Liu C.-C., Hay E.D. TGFp3 inhibits E-cadherin gene expression in palate medial-edge epithelial cells through a Smad2-Smad4-LEF1 transcription complex // J. Cell Sci. - 2007. - No. 120. - P. 1646-1653.
  60. Niehrs C. The complex world of WNT receptor signaling // Nat. Rev. Mol. Cell Biol. - 2012. - No. 13. - P. 767-779.
  61. Niessen K., Fu Y., Chang L., Hoodless P.A., et al. Slug is a direct Notch target required for initiation of cardiac cushion cellularization // J. Cell Biol. - 2008. - No. 182. - P. 315-325.
  62. Nieto M., Bennett M., Sargent M., Wilkinson D. Cloning and developmental expression of Sna, a murine homologue of the Drosophila snail gene // Development. - 1992. - No. 116. -P. 227-237.
  63. Nieto M.A., Huang R.Y.-J., Jackson R.A., Thiery, J.P. EMT: 2016 // Cell. - 2016. - Vol. 166. - P. 21-45.
  64. Nieto M.A., Sargent M.G., Wilkinson D., Cooke J. Control of cell behavior during vertebrate development by Slug, a zinc finger gene // Science. - 1994. - No. 264. - P. 835-839.
  65. Pastushenko I., Blanpain C. EMT Transition States during Tumor Progression and Metastasis // Trends Cell Biol. -2019. - No. 29. - P. 212-226.
  66. Perl A.T., Wilgenbus P., Dahl U., et al. A causal role for E-cadherin in the transition from adenoma to carcinoma // Nat. Cell Biol. - 1998. - No. 392. - P. 190-193.
  67. Person A.D., Klewer S.E., Runyan R.B. Cell Biology of Cardiac Cushion Development // Int. Rev. Cytol. - 2005. -No. 243. - P. 287-335.
  68. Piek E., Moustakas A., Kurisaki A., et al. TGF-(beta) type I receptor/ALK-5 and Smad proteins mediate epithelial to mesenchymal transdifferentiation in NMuMG breast epithelial cells // J. Cell Sci. - 1999. - No. 112. - P. 4557-4568.
  69. Potts J.D., Dagle J., Walder J.A., et al. Epithelial-mesenchymal transformation of embryonic cardiac endothelial cells is inhibited by a modified antisense oligodeoxynucleotide to transforming growth factor beta 3 // Proc. Natl. Acad. Sci. USA. - 1991. - No. 88. - P. 1516-1520.
  70. Rogers C.D., Saxena A., Bronner M.E. Sip1 mediates an E-cadherin-to-N-cadherin switch during cranial neural crest EMT // J. Cell Biol. - 2013. - No. 203. - P. 835-847
  71. Runyan R.B., Heimark R.L., Camenisch T.D., Klewer S.E. Epithelial-Mesenchymal Transformation in the Embryonic Heart. In Rise and Fall of Epithelial Phenotype: Concepts of Epithelial-Mesenchymal Transition / Savagner, P. (Ed.). - Boston, MA, USA. - 2005. - P. 40-55.
  72. Smith D., del Amo F.F., Gridley T. Isolation of Sna, a mouse gene homologous to the Drosophila genes snail and escargot: Its expression pattern suggests multiple roles during postimplantation development // Development. - 1992. -No. 116. - P. 1033-1039.
  73. Stone R.C., Pastar I., Ojeh N., et al. Epithelial-mesenchymal transition in tissue repair and fibrosis // Cell Tissue Res. - 2016. - No. 365. - P. 495-506.
  74. Strippoli R., Moreno-Vicente R., Battistelli C., et al. Molecular Mechanisms Underlying Peritoneal EMT and Fibrosis // Stem Cells Int. - 2016. - Vol. 2016. - P. 1-11.
  75. Sun D., Vanderburg C., Odierna G., Hay E. TGFbeta3 promotes transformation of chicken palate medial edge e p ithelium to mesenchyme in vitro // Development. - 1998. -N o. 125. - P. 95-105.
  76. Sun X., Meyers E.N., Lewandoski M., Martin G.R. Targeted disruption of Fgf8 causes failure of cell migration in the gastrulating mouse embryo // Genes Dev. - 1999. -No. 13. - P. 1834-1846.
  77. Takahashi Y., Sato Y., Suetsugu R., Nakaya Y. Mesen-chymal-to-epithelial transition during somitic segmentation: a novel approach to studying the roles of rho family GTPases in morphogenesis // Cells Tissues Organs. - 2005. - No. 179. -P. 36-42.
  78. Tam P., Beddington R. The formation of mesodermal tissues in the mouse embryo during gastrulation and early organogenesis // Development. - 1987. - No. 99. - P. 109-126.
  79. Tam P.P.L., Williams E.A., Chan W.Y. Gastrulation in the mouse embryo: Ultrastructural and molecular aspects of germ layer morphogenesis // Microsc. Res. Tech. - 1993. -No. 26. - P. 301-328.
  80. Tavares A.L.P., Mercado-Pimentel M.E., Runyan R.B., Kitten G.T. TGF beta-mediated RhoA expression is necessary for epithelial-mesenchymal transition in the embryonic chick heart // Dev. Dyn. - 2006. - No. 235. - P. 1589-1598.
  81. Terminologia Embryologica. International terms in human embryology with an official list of Russian equivalents / L. L. Kolesnikov, N. N. Shevlyuk, L. M. Erofeeva (Ed.). - Moscow, GEOTAR-Media Publ., 2014.
  82. Terminologia Histologica. International terms in human cytology and histology with an official list of Russian equivalents / V. V. Banina, V. L. Bykova (Ed.). - Moscow, GEOTAR-Media Publ., 2009.
  83. Timmerman L.A., Grego-Bessa J., Raya A., et al. Notch promotes epithelial-mesenchymal transition during cardiac development and oncogenic transformation // Genes Dev. - 2004. - No. 18. - P. 99-115.
  84. Tran H.D., Luitel K., Kim M., et al. Transient SNAIL1 expression is necessary for metastatic competence in breast cancer // Cancer Res. - 2014. - No. 74. - P. 6330-6340.
  85. Xie L., Law B.K., Chytil A.M., et al. Activation of the erk pathway is required for TGF-p1-Induced EMT in vitro //Neo-plasia. - 2004. - No. 6. - P. 603-610.
  86. Xu J., Lamouille S., Derynck R. TGF-p-induced epithelial to mesenchymal transition // Cell Res. - 2009. - No. 19. -P. 156-172.
  87. Yang A.D., Camp E.R., Fan F., et al. Vascular endothelial growth factor receptor-1 activation mediates epithelial to mesenchymal transition in human pancreatic carcinoma cells // Cancer Res. - 2006. - No. 66. - P. 46-51.
  88. Yang J., Mani S.A., Donaher J.L., et al. Twist, a master regulator of morphogenesis, plays an essential role in tumor metastasis // Cell. - 2004. - No. 117. - P. 927-939.
  89. Yang L., Lin C., Liu Z.-R. P68 RNA helicase mediates PDGF-induced epithelial mesenchymal transition by displacing Axin from beta-catenin // Cell. - 2006. - No. 127. - P. 139-155.
  90. Zeisberg E.M., Tarnavski O., Zeisberg M., et al. Endothe-lial-to-mesenchymal transition contributes to cardiac fibrosis // Nat. Med. - 2007. - No. 13. - P. 952-961.
  91. Zeisberg M., Yang C., Martino M., et al. Fibroblasts derive from hepatocytes in liver fibrosis via epithelial to mesenchymal transition // J. Biol. Chem. - 2007. - No. 282. -P. 23337-23347.

Дополнительные файлы

Доп. файлы
Действие
1. JATS XML

© Дворяшина И.А., Великородная Ю.И., Терентьев А.В., Загребин В.Л., 2021

Creative Commons License
Эта статья доступна по лицензии Creative Commons Attribution 4.0 International License.

СМИ зарегистрировано Федеральной службой по надзору в сфере связи, информационных технологий и массовых коммуникаций (Роскомнадзор).
Регистрационный номер и дата принятия решения о регистрации СМИ: серия ПИ № ФС 77 - 79562 от 27.11.2020 г.

Данный сайт использует cookie-файлы

Продолжая использовать наш сайт, вы даете согласие на обработку файлов cookie, которые обеспечивают правильную работу сайта.

О куки-файлах