Introduction to the cell culture and production of brachycome iberidifolia and chrysanthemum carinatum



如何引用文章

全文:

详细

Brachycome iberidifolia and chrysanthemum carinatum as cell cultures. The optimal medium for callus formation, regeneration and rooting of regenerated plants are found.

全文:

Хризантема килеватая и брахикома иберисолистная широко используются в озеленении города, на клумбах, в миксбордерах, в срезке, обладают удивительной многоликостью красок и продолжительным цветением. Хризантема килеватая (Chrysanthemum carinatum L.) – однолетнее, обильноцветущее, с конца июня по сентябрь, растение, семейство Сложноцветных (Астровые). Соцветия – корзинки, чаще простые, реже полумахровые или махровые, душистые, довольно крупные, 5-7 см в диаметре, различной окраски. Плод – треугольная или сплюснутая семянка с крыловидными выростами. Семена сохраняют всхожесть 2-3 года. Хризантему килеватую часто выращивают на срезку, поскольку ее привлекательные соцветия могут довольно долго стоять в вазе с водой не увядая. Кроме этого она может быть с успехом использована для украшения клумб и рабаток как в одиночных посадках, так и небольшими компактными группами[1]. Брахикома иберисолистная (Brachycome iberidifolia L.) – однолетнее сильноветвистое растение, семейство Сложноцветных, высотой 15-25 см с изящными листьями, расположенными в очередном порядке. Кустики несут многочисленные мелкие соцветия – корзинки 3–3,5 см в диаметре. Применяется для оформления клумб, бордюров, альпийский горок, как горшочная культура, входит в состав мавританского газона, используемого в городском озеленении и на садовых участках [1-2]. Брахикома заслуживает самого широкого использования из-за высокой декоративности и продолжительного цветения. Обладая высокой декоративностью и неприхотливостью в уходе, эти растения чувствительны к воздействию неблагоприятных факторов окружающей среды, что существенно ограничивает использование их в условиях высокого уровня загрязнения. Для того чтобы повысить толерантность этих растений, можно использовать клеточную селекцию, обязательным условием использования которой является введение в культуру клеток растений [3]. Цель работы: введение в культуру клеток и регенерация растений брахикомы иберисолистной и хризантемы килеватой Материалы и методы В работе использованы семена брахикомы иберисолистной (Brachycome iberidifolia L.) сорт Голубая Неженка и хризантемы килеватой (Chrysanthemum carinatum L.) сорт Эльдорадо. В качестве эксплантов использовали семена растений. Экспланты стерилизовали однократной обработкой спиртом с последующей стерилизацией раствором, содержащим гипохлорит натрия в течение 15-30 минут (в зависимости от растения). Затем их три раза промывали стерильной дистиллированной водой. Оптимальное время стерилизации определяли по жизнеспособности первичных эксплантов и зараженности фитопатогенами. Для культивирования in vitro применяли агаризованные питательные среды Мурасиге-Скуга (МС) [4] и Гамборга (В5) [5] в сочетании с 3% сахарозы. В качестве регуляторов роста в питательные среды добавляли 2,4-дихлорфеноксиуксусную кислоту (2,4-Д), 6-бензиламинопурин (БАП) и α-нафтилуксусную кислоту (НУК), индолилуксусную кислоту (ИУК), кинетин в различных концентрациях и комбинациях Результаты и обсуждения Работ по введению культуру клеток брахикомы нет, нами были использованы питательные среды Мурасиге-Скуга и Гамборга. По результатам работы установлено, что каллусы образовывались во всех вариантах опыта, при концентрациях 2,4-Д от 1 до 10 мг/л на средах МС и В5, но на концентрациях 1, 2, 4 мг/л 2,4-Д наблюдалось интенсивное прорастание семян. Процент образования каллусов на среде В5 был больше, чем на среде МС, например на среде МС при концентрации 2 мг/л частота каллусообразования составляла 15,6 %, а на среде В5 – 25,4%. При концентрации 1 мг/л 2,4-Д на питательной среде В5 – интенсивность каллусообразования составляла 11,3%, при концентрации 4 мг/л 2,4-Д – 34,7%, а на среде МС 9,6% и 24,4% соответственно (таблица 1). Каллус образовывался светло-желтого цвета, средней плотности, в течение 10-14 дней. Добавление в среду 2 мг/л кинетина, в сочетании с различными концентрациями 2,4-Д, увеличивало процент образования каллусов. При добавлении кинетина в среду с 4 мг/л 2,4-Д каллусобразование увеличивалось с 34,7% до 42,1%; при концентрации 8 мг/л 2,4-Д – с 43,3% до 48,1%. Оптимальной средой для каллусообразования брахикомы иберисолистной была среда В5 с 6 мг/л 2,4-Д и 2 мг/л кинетина (56,1%). Таблица 1 Влияние 2,4-Д и Кинетина в питательной среде на интенсивность каллусообразования брахикомы иберисолистной (X±х). Для дальнейшего культивирования и регенерации полученные каллусы брахикомы иберисолистной пересаживали на питательную среду МС с половинным содержанием всех минеральных компонентов (½ МС). Для стимулирования процесса образования регенерантов в питательную среду добавляли фитогормоны БАП и НУК в различных концентрациях и комбинациях. Наибольший процент образования регенерантов был на среде ½ МС с 0,1 мг/л НУК и 2 мг/л БАП (62,3%). Регенеранты образовывались через 2-3 пассажа, темно-зеленого цвета. Хризантема оказалась трудоемкой культурой, было рассмотрено большое количество комбинаций питательных сред и фитогормонов для каллусообразования и регенерации растений. К тому же большинство работ по культуре клеток хризантемы связано с микроклональным размножением хризантемы многолетней, другого вида хризантем (дендрантема) [6-7], так как большинство традиционно относимых к роду Chrysanthemum хризантем по современной классификации видов относят к роду Dendranthema. Для получения каллусных тканей семена хризантемы высаживали на среды МС содержащие 2,4-Д, кинетин, БАП, ИУК в различных комбинациях и концентрациях. Интенсивное каллусообразования наблюдали при добавлении в питательную среду БАП и ИУК. Максимальное каллуссобразование (78,2%) было на среде МС с 1 мг/л БАП и 0,1 мг/л ИУК. Добавление в питательную среду 2 мг/л кинетина в сочетание с различными концентрациями 2,4-Д не привело к интенсификации процесса каллусообразования, частота каллусообразования во всех сочетаниях была менее 40% (рисунки 1 и 2). Для регенерации была подобрана питательная среда ½ МС с 0,5 мг/л БАП, через 2-3 пассажа были получены регенеранты (24,8%). Каллусогенез и регенерация растений осложнялась повышенной чувствительностью каллусов к компонентам среды и pH. При культивировании каллусов более 3 недель происходило потемнение каллуса. Для укоренения растения-регенеранты брахикомы иберисолистной и хризантемы килеватой пересаживали в пробирки на жидкую питательную среду ½ МС с добавлением 0,1 мг/л НУК, корни образовывались через 1-2 пассажа. Таким образом, подобраны среды для каллусообразования, регенерации и укоренения для брахикомы иберелисолистной: каллусообразования на среде В5 с 6 мг/л 2,4-Д и 2 мг/л кинетина, регенерация растений на среде 1/2МС с 0,1 мг/л НУК и 2 мг/л БАП, укоренение на среде с ½ МС с 0,1 мг/л НУК; для хризантемы килеватой – каллусообразования на среде 1 мг/л БАП и 0,1 мг/л ИУК, регенерация на ½ МС с 0,5 мг/л БАП и укоренение на ½ МС с 0,1 мг/л НУК. Рисунок 1 – Регенеранты брахикомы иберисолистной с корнями Рисунок 2 – Частота каллусообразования у хризантемы килеватой в зависимости от вида фитогормонов на среде МС Рисунок 3 – Регенеранты хризантемы килеватой с корнями
×

作者简介

I. Litvinova

Moscow State University of Mechanical Engineering (MAMI)

Email: ilina-15@ya.ru

E. Gladkov

Moscow State University of Mechanical Engineering (MAMI); Institute of Plant Physiology of RAS

Ph.D.

参考

  1. Колесникова Е.Г. Газоны элементы садового дизайна. КЛАДЕЗЬ-БУКС, М., 2010: 8-9.
  2. Ващенко М. Мавританский газон. Цветоводство, 2002, № 2: 9.
  3. Гладков Е.А, Долгих Ю.И., Бирюков В.В., Гладкова О.В. Клеточная селекция газонных трав, толерантных к ионам меди, Биотехнология, 2006, № 5, 63
  4. Murashige T., Skoog F. A revised medium for rapid growth and bioassaya with tobacco tissue cultures // Physiologia Plantarum, 1962, V. 15: 473-476.
  5. Gambourg O.L., Elevegh D. Culture methods and detection of glucanases in suspension cultures of weat and parleys // Can.J.Biochem, 1968, 46: 417-421.
  6. Матюшкина Т.Ю., Долгов С.В. Разработка методов регенерации и трансформации хризантем (Chrysanthemum morifolium Ramat). В сб.: Новые методы биотехнологии растений. Пущино, 1993: 34.
  7. Гранда Р. Микроклональное размножение хризантем. Известие ТСХА, 2009, 1: 146-148.

补充文件

附件文件
动作
1. JATS XML

版权所有 © Litvinova I.I., Gladkov E.A., 2012

Creative Commons License
此作品已接受知识共享署名-非商业性使用-禁止演绎 4.0国际许可协议的许可。

##common.cookie##