Intestinal microbiota as a source of novel biomarkers of ageing


Cite item

Full Text

Abstract

It is now generally accepted that more than 40% of low molecular weight blood chemical compounds have microbial origin. We applied gas chromatography-mass spectrometry (GSMS) of blood as a microbial identification system based on determination of fatty acids, aldehydes, alcohols, sterines-metabolic markers of cell wall of certain microbial genera and species. GSMS was used for identification of the mentioned blood lipid substances and corresponding intestinal parietal microorganisms in 41 subjects in the age of 45-59 (17) and 75-90 years old (24 persons). This article focuses on the content of twenty five taxonomically identified bacterial, fungi, and viruses as markers of microecological profile in human intestinal tract. The low number of bifidobacteria, lactobacilli, propionobacteria as well as decreased quantity of endotoxin, and plasmalogen and increased proportion of E.lentum, N. asteroids, Herpes viruses was the most prominent aged-type microbiota markers of the ageing dynamic process. In this work we have confirmed that GSMS of blood might be a powerful technique in studying the diverse and complex intestinal parietal microbiota and for assessment of microecological profile in the intestinal tract of adult and elderly people.

Full Text

Введение В 2013 году в Российской Федерации 32 млн человек имели возраст старше 60 лет; у 72% из них были выявлены те или иные хронические заболеваниями и более 17 млн человек находились на постоянном диспансерном наблюдении. Через 10 лет число таких граждан достигнет 40 млн человек. В отечественной экономике занято около 10 млн лиц пенсионного возраста; еще более 300 тыс. пенсионеров готовы продолжить свою рабочую деятельность. Для этого почти 15% граждан предпенсионного и пенсионного возраста желают пройти дополнительное обучение или повысить квалификацию, получив новые знания и трудовые профессии. В этой связи становится понятным, почему в последние годы в России и в других развитых странах мира растет интерес к выяснению причин старения и каким образом сохранять и улучшать физические и умственные способности пожилых людей. Накопленные данные свидетельствуют, что у лиц с повышением возраста даже при отсутствии заболеваний возникают и постепенно прогрессируют различные физические, метаболические, нервно-психические, клеточные и молекулярные нарушения практически во всех органах и тканях [1; 2]. В настоящее время полагают, что биомаркерами старения могут быть нестабильность геномной и митохондриальной ДНК, нарушение эпиге-номной программы развития, окислительный стресс, хроническое воспаление, укорочение теломер, дисбаланс гомеостаза белков, ускоренное старение клеток, дисфункции митохондрий, дефекты трофических и энергетических сигнальных путей, истощение стволовых клеток, изменение внутриклеточной и межклеточной коммуникации [2-11]. В течение многих лет доминировало мнение, что здоровье, долголетие и риск заболеваний, преимущественно обусловлены дефектами, возникающими в эукариотических клет ках человека. Между тем, в последнее десятилетие возникла и получила все больше подтверждение новая парадигма, предлагающая рассматривать человека, как «суперорганизм», симбиотическое сообщество представителей Eukarya, Bacteriacea, Archaea и Viruses. С этих позиций, симбиотическуюмикроби-оту высших животных организмов рассматривают, как важнейший экстракорпоральный орган этого суперорганизма, как эндогенный эпигеномный фактор, активно участвующий в регуляции роста и развития хозяина, его здоровья и заболеваний [12-15]. Использование классических бактериологических и современных молекулярных «ОМИК»-технологий [16-18] позволило детально исследовать структуру и многочисленные функции симбиотической микробиоты человека на протяжении всей его жизни, с рождения до глубокой старости. При этом оказалось, что микробиота каждого индивидуума имеет уникальный профиль, как по своей структуре [19], так и функциональной активности [20]. У взрослых здоровых людей 80% кишечноймикробиоты принадлежит трем доминирующим (более 109 кое/г) филам: Bacteroidetes, Firmicutes и Actinobacteria, среди которых преобладают определенные виды клостридий(С.ієрШіті, C.coccoides) и представители родов Bacteroidetes, Eubacterium, Bifidobacterium, Peptostreptococcus, Ruminococcus, Propionibacterium; среди субдоминирующих (менее 109 кое/г) кишечных микроорганизмов наиболее часто обнаруживаются представители Lactobacillus, Proteobacteria, Fusobacterium, Cyanobacteria, Verru-comicrobia, Desulfovibrio, Sporomusa, Apopobium, Methanobrevibacter и ClostridiumlV, XI, XIVb, XVIII групп [15; 21-25]. Попытки использовать микроэкологический профиль пищеварительного тракта в качестве нового биомаркера старения и долголетия в последние годы 40 Нутрициология и лечебное питание Вестник восстановительной медицины № 2·2015 предпринимались неоднократно. Биоматериалом для таких исследований обычно служили фекалии людей, которые подвергались традиционному микробиологическому анализу и/или молекулярно-генетическому изучению [16-20; 26-33]. К сожалению, опубликованные к настоящему времени данные, касающиеся сравнительного состава микробиоты у лиц различного возраста, достаточно противоречивы. Это дало основание утверждать, что наши знания роли кишечного микробиома человека, как эндогенного фактора ускоренного старения, метаболических заболеваний или долголетия, пока еще весьма ограничены [13]. Отсутствие единого мнения, какие изменения в кишечной микробиоте человека могут быть объективными биомаркерами старения, обусловлено чрезвычайно сложным и в то же время индивидуальным популяционным составом этой микробиоты. Кроме того, на результаты исследований существенное влияние оказывал разноречивый по возрасту состав обследованных групп, отсутствие коммерческих стандартных тест-систем, позволяющих объективно сравнивать структуру их кишечной микробиоты. Присутствие хронических заболеваний, использование для их лечения множества лекарственных средств, особенности пищевого рациона, малоподвижный образ жизни, другие физиологические и социально-психические особенности также являлись факторами, затрудняющими сравнительную оценку микроэкологического статуса у представителей этой категории населения [16; 18; 20; 30]. Хотя причинная связь возрастной сукцессии кишечной микробиоты со старением и/или долголетием человека, до настоящего времени окончательно не установлена, микроэкологические подходы к ее пониманию могут послужить отправной точкой для разработки новых и совершенствования имеющихся программ сохранения активного долголетия и восстановительной медицины [35-37]. Является доказанным, что кровь человека несет широкий спектр биомолекул, включая нутриенты, гормоны, метаболиты и другие низкомолекулярные соединения, являющиеся структурными компонентами или секретируемые различными клетками суперорганизма [13; 38-42]. Более 40% всех этих соединений, обнаруживаемых в крови, имеют микробное происхождение [40; 43]. Липидный состав микроорганизмов достаточно специфичен для таксонов различного уровня (семейств, родов и даже видов). Знания структуры и количественного состава высших жирных кислот, алкоголей, стеринов и других липидных соединений в клеточной стенке определенных микроорганизмов позволяет использовать метод газовой хромато-масс-спектрометрии (ГХМС) не только для определения указанных маркерных веществ в исследуемом биоматериале, но и устанавливать таксономическую принадлежность микроорганизмов, присутствующих в биосубстрате, взятом для изучения. ГХМС анализ, использованный нами в данной работе, основан на прямом извлечении липидных соединений из цельной крови, их разделении на газовом хроматографе в капиллярной колонке высокого разрешения и последующей идентификации по площадям пиков и времени их выхода на масс-спектрометре. Предлагаемый метод обеспечивает возможность детектирования одновременно порядка 60 микроорганизмов при проведении анализа одного образца [44-49]. Нами впервые предпринята попытка оценить профиль пристеночной микробиоты кишечника у лиц пожилого и преклонного возраста путем ГХМС анализа крови на содержание в ней 126 высших жирных кислот, гидрокси-кислот, спиртов, альдегидов и стеринов, специфических для различных таксономических групп микроорганизмов. Материалы и методы Объектом исследования являлись 41 человек зрелого/пожилого - 45-59 лет (17 чел) и преклонного -75-90 лет (24 чел) возраста, отобранных методом случайной выборки. Материалом для исследования служила цельная кровь, взятая у них из вены, которую отбирали в пробирку с ЭДТА, замораживали при -18оС и транспортировали в лабораторию в течение 30-60 минут после взятия материала. Кровь отбирали согласно Методическим указаниям «Техника сбора и транспортирования биоматериалов в микробиологические лаборатории» МУ 4.2.2039-05 пункт 3. Доставленные пробы подвергали анализу на состав микробных маркеров с использованием хромато-масс-спектрометра АТ 5973 (газовый хроматограф с масс-селективным детектором серийного выпуска; Agilent Technologies Inc, США). Суть анализа состояла в прямом извлечении с помощью экстракции жирнокислотных соединений из образца крови, их разделения на хроматографе в капиллярной колонке и анализа состава на масс-спектрометре. Цельную кровь (40 мкл) переносили в виал, емкостью 1,5 мл, с завинчивающейся крышкой и с тефлонированной прокладкой, подсушивали (при снятой крышке) в термостате при 80оС с добавлением 40 мкл метанола для ускорения сушки. К загустевшей пробе приливали 400 мкл 1М соляной кислоты в метаноле; кислый метанолиз вели при 80оС в течение 60 минут. К охлажденной реакционной среде добавляли 300 нг стандарта (дей-терометиловый эфир тридекановой кислоты), растворенного в гексане. Экстракцию проводили дважды путем внесения гексана (по 200 мкл) и последующего встряхивания смеси на вортексе, каждый раз позволяя реакционной смеси отстояться в течение 5 мин при комнатной температуре. Объединенный экстракт высушивали 5-7 мин при 80оС, а затем обрабатывали 20 мкл Ы,О-бис (триметилсилил)-трифторацетамида в течение 15 мин при той же температуре и при закрытой крышке. К реакционной смеси добавляли 80 мклгексана, после чего проба была пригодна для анализа на АТ 5973 в течение недели. Для отнесения маркеров к конкретным микроорганизмам наряду с авторскими данными (740 штаммов микроорганизмов) использована база данных (2000 штаммов) прибора Шерлок (MIDI Inc, Delaware, USA) для хроматографической идентификации микроорганизмов по жирным кислотам, а также другие литературные источники. АТ 5973 снабжен компьютером с соответствующими программами автоматического анализа и обработки данных; сам процесс анализа занимает 30 мин, а с учетом времени пробоподготовки и расчета данных - не более 3 часов. Расчет концентрации маркеров и отнесение их к конкретным микроорганизмам проводили по программному продукту, поставляемому разработчиком. Результатом проведенных ГХМС исследований являлось установление маркеров, позволяющих судить о структуре и количественном содержании в пристеночной микробиоте кишечника обследуемых представителей 57 различных таксономических филотипов микроорганизмов. Нутрициология и лечебное питание 41 Вестник восстановительной медицины № 2^2015 [45; 50; 51]. Статистическую обработку результатов одноименных показателей в каждой группе сравнения проводили с использованием пакета прикладных программ Statistica 6.0 для Windows. Различия в показателях считались достоверными, если они не менее, чем в два раза, отличались от референсных значений, полученных при обследовании крови здоровых молодых людей. Результаты и их обсуждение В таблице приведены данные ГХМС исследований крови 41 человека, касающиеся содержания 25 представителей пристеночной микробиоты кишечника у лиц зрелого/пожилого и преклонного возраста. Анализ этих данных свидетельствует о достаточной индивидуальности исследованных людей по структуре и количественному содержанию изученных таксонов бактерий, грибов и вирусов. При обсуждении микроэкологического профиля кишечника зрелых, пожилых и преклонных людей немаловажным является терминологическое определение понятия «старый» человек. По данным итальянских исследователей состав и функции микрофлоры толстой кишки у пожилых людей в среднем возрасте 70 лет относительно мало отличались от таковых взрослых молодых здоровых людей, что с микроэкологи-ческой точки зрения позволило ввести даже такое понятие, как задержанное старение («delayed aging»). Лишь у лиц старше 80-90 лет (centenarians) наблюдались отчетливые различия в структуре и функциях микробиоты толстого кишечника [30]. Соотношение микроорганизмов, входящих в филогруппы Firmicutes и Bacteroidetes в содержимом толстой кишки у новорожденных, взрослых и пожилых людей составляет 0,4; 10,9 и 0,6, соответственно [29]. К особенностям фекальной микробиоты лиц старших возрастных групп относят наличие в этом биоматериале повышенного количества оппортунистических патогенов (энтеробактерий, кандида, стафилококков) с одновременным уменьшением у старых и людей преклонного возраста бифидобактерий, появление в фекалиях достаточно большого числа атипичных вариантов доминирующих и субдоминирующих представителей симбиоти-ческоймикробиоты, изменение соотношения лакта-тобразующих и бутиратсинтезирующих анаэробных бактерий. Какие-либо специфические маркерные виды микроорганизмов в фекалиях, характерные только для долгожителей (лиц старше 90 лет), не были обнаружены [16; 19; 30; 31]. Из наших данных, представленных в таблице, видно, что в группе лиц в возрасте 45-59 лет наибольшие отклонения (в два и более раз) от референсных значений (здоровые взрослые люди), отмечались последующим таксономическим микробным филотипам: Eubacterium lentum, Peptostreptococcus anaerobius, Streptococcus mutans, Bifidobacterium, Propionibacterium/ Clostridium subterminale, Herpes-вирусам. При этом отмечалось как некоторое увеличение числа условнопатогенных микроорганизмов и вирусов, так и снижение представителей «полезной» микробиоты; к последним относят, прежде всего, бифидобактерии и лактобациллы [13].В группе людей в возрасте 75-90 лет наибольшие различия с референсными значениями имелись по представителям Lactobacillus, Eubacterium/Clostridium coccoides, Bifidobacterium, Propionibacterium/Clostridium subterminale. Дефицит Bifidobacterium, Propionibacterium/ C.subterminale наблюдался в обеих возрастных группах. В более старшей возрастной группе в пристеночной микробиоте снижалось разнообразие филотипов как «полезных», так и условно-патогенных микроорганизмов, что совпадает с результатами наблюдений за структурой фекальной микробиоты у лиц старше 75 лет [16; 30; 31]. Связано ли это с особенностями питания этих лиц, «скудным» образом их жизни, или со старением организма, как биологическим процессом в целом, пока сказать невозможно. Хотя иммунная устойчивость лиц в группе 75-90 лет ниже, чем у более молодых людей [16], способность человека в этом возрасте выстраивать новые симбиотические взаимоотношения с возраст-трансформированной пристеночной кишечной микробиотой может быть важнейшим условием их долголетия. Использованная нами в работе ГХМС технология позволяла также определять в крови обследуемых лиц содержание эндотоксина и плазмалогена. Как известно, эндотоксин (микробный липополисахарид) является одним из важнейших факторов хронического воспаления, которое по последним данным [3; 9; 30], в значительной степени ответственно за ускоренное старение и развитие метаболических заболеваний, связанных с пожилым возрастом. Источником эндотоксина в организме млекопитающих являются грамотрицательные патогенные и оппортунистические бактерии, в первую очередь, энтеробактерии и бактероиды, широко представленные в составе фекальной микробиоты и, количество которых увеличивается с возрастом [16; 19; 30; 31]. Следует заметить, что некоторые исследователи [29] отмечали заметное снижении пропорции представителей фила Bacteroides в общей массе фекальных микроорганизмов. По нашим данным, содержание эндотоксина в крови лиц 45-50 лет составляло 0,54 ± 0,22 мкг/мл, что было близким к референсным значениям для здоровых взрослых людей. Троекратно сниженное количество эндотоксина (0,18±0,07 мкг/мл) в крови у лиц старше 75 лет согласуется с нашими наблюдениями, что содержание грамотрицательных бактерий в пристеночном слое нижних отделов тонкого кишечника было крайне незначительно. Плазмалогены (плазменил-, плазманил-липиды) - это фосфолипиды/гликолипиды, широко представлены в клетках млекопитающих и у анаэробных бактерий. Кишечная микробиота является дополнительным (а возможно и основным) резервуаром плазмалогенов, поскольку эти соединения в значительном количестве синтезируются и присутствуют в составе мембран многих анаэробов (эубактерии, бифидобактерии, пропионобактерии, клостридии, бактероиды, десульфовибрио, румино-кокки, вейллонеллы, пропионибактерии, мегасфера и др.). В растениях и грибах плазмалогены не встречаются [52-54]. Плазмалогены защищают от окисления полиненасыщенные жирные кислоты, участвуют в структуре и функциях мембран клеток млекопитающих и анаэробных бактерий, осуществляют межклеточные сигнальные функции и т.д. Хотя плазмалогены бактерий и эукариотических клеток функционально схожи, структурно они существенно различаются. Содержание плазмалогена в тканях мозга и биологических жидкостях существенно снижено у больных с неврологическими заболеваниями, связанными со старением, включая деменцию по типу болезни Аль-цгеймера[53]. Данные наших исследований пока- 42 Нутрициология и лечебное питание Вестник восстановительной медицины № 2·2015 зали, что содержание бактериального плазмалогена в крови составляло 21,73±12,93 и 6,47±3,56 мкг/ мл в первой и второй возрастных группах соответственно, что два - семь раз ниже референсного значения (50 мкг/мл). Это позволяет рассматривать плазмалогены, как дополнительный биомаркер старения/ долголетия, в поддержании уровня которого анаэробная кишечная микробиота, синтезирующая данную группу липидов, может активно участвовать. Представленные в настоящем исследовании данные позволяют нам рекомендовать выявленные изменения в структуре филотипов пристеночной кишечной микробиоты,как четкие, воспроизводимые возраст -ассоциированные микроэкологические маркеры старения, а сам метод ГХМС как быструю технологию оценки профиля состава пристеночной микробиоты кишечника у людей зрелого/пожилого и преклонного возраста. Заключение Объектом наших исследований являлась кровь лиц зрелого/пожилого и преклонного возраста, которую можно рассматривать как интегральный биоматериал, вобравший в себя соответствующие низкомолекулярные соединения (потенциальные микробные маркеры) на всем протяжении пищеварительного тракта. Спектр и количество низкомолекулярных субстанций (высшие жирные кислоты, спирты, альдегиды, эндотоксин, плазмалогены и др.) микробного происхождения в крови зависят от многих факторов: их способности преодолевать барьер слизистой кишечника и транслоцироваться в кровяное русло, возможностью и скоростью их утилизации в просвете кишечника эпителиоцитами и симбиотическими микроорганизмами кишечника, пропорционального содержания кишечных бактерий в структуре микробиоты в различных биотопах пищеварительного тракта, их локализацией в пристеночном (фик-сированномсостоянии) или в просвете кишечника (в плавающем состоянии). Дальнейшие исследования позволят установить, какие из перечисленных условий и в какой мере могут влиять на конечные результате ГХМС анализа крови, позволяющие установить микроэкологический профиль кишечника людей различного возраста. Наблюдения авторов первого применения ГХМС для оценки микробной экологии пищеварительного тракта человека [46; 51], также как и наши данные, позволяют говорить, что эта технология способна достаточно объективно отобразить состояние пристеночной микробиоты в нижних отделах тонкой кишки (тощая, подвздошная) и начале толстой кишки (слепая кишка). Прямое сопоставление наших данных и результатов, полученных при исследовании фекалий вряд ли возможно и целесообразно, поскольку они направлены на изучении микробной экологии разных отделов пищеварительного тракта. Скорее следует говорить, что ранее опубликованные и наши данные информационно дополняют друг друга и расширяют наши знания, касающиеся микроэкологической характеристики пищеварительного тракта. Расширение спектра образцов биоматериала, взятых из различных отделов кишечника, и одновременное их исследование бактериологическим, молекулярно- генетическим, ГХМС и другими ОМИК-методами, дадут возможность более объективно оценивать состав и количественное содержание как доминирующих, так и минорных представителей микробиоты пищеварительного тракта на всем его протяжении у лиц, принадлежащих различным возрастным группам [17]. Знания динамики и механизмов становления микробиоты в детстве и ее сукцессии в течение всей индивидуальной жизни (включая пожилой и преклонный возраст) создадут реальные предпосылки восстановления микроэкологического статуса конкретного человека в определенных условиях его жизни с использованием пробиотиков, пребиотиков,метабиотиков и синбиотиков [15; 36; 37]. Оригинальным и перспективным микроэкологи-ческим подходом поддержания здоровья и активного долголетия может стать также создание на территории РФ национальных криогеных банков с целью сохранения биоразнообразия кишечной микробиоты многочисленных этносов россиян и отдельных их представителей. На базе сохраняющихся при температурах от -80оС до -196оС (практически вечно) в неизменном состоянии индивидуальных симбиотических ассоциаций бактерий можно будет создавать аутопробиотики (пробиотики индивидуального применения) для аутотрансплантации кишечной микробиоты, которую, возможно, надо будет рекомендовать всем лицам, перешагнувшим возраст 45-50 лет [1; 55]. Внедрение в практику восстановительной медицины микроэкологической инженерии (направленное восстановление микробиоты людей пожилого и преклонного возраста) путем своевременного назначения им замороженной аутомикробиоты, взятой на хранение в молодом возрасте, открывает новые захватывающие перспективы в области создания программ активного долголетия. Выводы Использование метода хромато-масс-спектро-метрии крови позволило установить структуру и количественный состав пристеночной кишечной микробиоты у людей в зрелом, пожилом и преклонном возрасте. У обследованных групп выявлены различия в содержании определенных таксономических микробных филотипов в микробиоте кишечника, а также в количестве эндотоксина и бактериального плазмалогена в плазме крови; особенно четко эти различия выявлялись у людей старше 75 лет. Метод ГХМС крови может быть рекомендован в качестве экспрессной технологии оценки профиля состава пристеночной микробиоты кишечника людей пожилого и преклонного возраста. Выявляемые микроэкологические различия могут рассматриваться в качестве биомаркеров старения и долголетия. Авторы выражают благодарность доктору биологических наук Терешиной Е.В. за возможность получения биоматериала от людей старших возрастных групп. Нутрициология и лечебное питание 43 Вестник восстановительной медицины № 2·2015 Таблица. Содержание некоторых представителей кишечной микробиоты у лиц различных возрастных групп 44 Нутрициология и лечебное питание
×

About the authors

S. L Bezrodny

Moscow Research Institute of Epidemiology & Microbiology after G.N.Gabrichevsky

Email: frebiotik@mail.ru

B. A Shenderov

Moscow Research Institute of Epidemiology & Microbiology after G.N.Gabrichevsky

Email: shenderof@yandex.ru

References

  1. Шендерв Б.А. Роль персонального функционального питания в современных программах медицины антистарения. Вестник восстановительной медицины. 2009; №3: 9-17.
  2. Lopez-Otin C; Blasco M A; Partridge L; Serrano M; Kroemer, G.The hallmarks of aging.Cell 2013. 153 (6): 194-217.
  3. Doles J, Storer M, Cozzuto L, Roma G, Keyes WM, Age -associated inflammation inhibits epidermal stem cell function. Genes Dev 2012; 26: 2144-53
  4. Frelje JM, Lopez-Otin C. Reprogramming aging and progeria. Curr Opin Cell Biol 2012; 24: 757-64.
  5. Armanios M, Blackburn EH. The telomere syndromes. Nat Rev Genet 2012; 13: 693-704.
  6. Sena LA, Chandel NS. Physiological roles of mitochondrial reactive oxygen species. Mol Cell 2012; 48: 158-167.
  7. Шендеров БА. Молекулярно-генетические основы активного долголетия и метаболический профиль. - Anti-agemedicine: наука оставаться молодым - (ред. А.И. Труханов). М.: АСВОМЕД. - 2012. - 212-239.
  8. Shenderov BA, Midtvedt T. Epigenomic programming: a future way to health? Microb Ecol Health Dis 2014; 25.21145. doi: org/10.3402/mehd.v25.24145.
  9. Gabuzda D, Yankner BA. Inflammation links ageing to the brain Nature 2013; 497(7448).doi: 10.1038/nature12100
  10. Soares JP, Cotinhas A, Bento T, Leitao JC, Collins AR et al. Aging and DNA damage in humans: a meta-analysis study. Aging (AlbanyNY) 2014; 6 (6): 432-9.
  11. Labbadia J, Morimoto RI.Proteostasis and longevity: when does aging really begin. F1000Prime Rep 2014;6: 7. doi;10.12703/P6-7.
  12. Lederberg J. Infectious history. Science 2000; 288: 287-93.
  13. Sekirov I, Russell SL, Antunes LC, Finlay BB. Gut microbiota in health and disease. Physiological Reviews 2010; 90 (3): 859-904.
  14. Suvorov A. Gut microbiota, probiotics, and human health. Bioscience of Microbiota, Food and Health 2013; 32 (3): 81-91.
  15. Шендеров БА. Микробная экология человека и ее роль в поддержании здоровья. Метаморфозы 2014; №5: 72-80.
  16. Tiihonen K, Ouwehand AC, Rautonen N. Human intestinal microbiota and healthy ageing. Ageing Res Rev 2010; 9 (2): 107-16.
  17. Rampelli S,Candela M, Turroni S, Biagi E, Collino S, Franceschi C. et al. Functional metagenomic profiling of intestinal microbiome in extreme ageing. Aging 2013; 5 (12): 902-12.
  18. Salazar N, Arboleya S, Valdes L, Stanton C, Ross P, Ruiz L.et al. The human intestinal microbiome at extreme ages of life. Dietary intervention as a way to counteract alterations. Front Microb November 2014; doi: 10.3389/fgene. 2014.00406.
  19. Claesson MJ, Cusack S, O’Sullivan O, Greene-Diniz R, de Weerd H, Flannery E. et al. Composition, variability, and temporal stability of the intestinal microbiota of the elderly. Proc Natl Acad Sience USA 2011 108: Suppl1: 4586-91.
  20. Kinross J, Nicholson JK. Dietary and social modulation of gut microbiota in the elderly. Nat Rev Gastroenterol Hepatol 2012; 9 (10): 563-4.
  21. Lagier J-C., Millio M., Hugon P., Armougom F., Raoult D. Human gut microbiota: repertoire and variations. Fronties in Cellular and Infection Microbiology 2012.v.2.doi: 10.3389/fcimb.2012.00136.
  22. Tyakh AV, Kostryukova ES, Popenko AS, Belenikin MS, et al. Human gut microbiota community structures in urban and rural populations in Russia. Nature Communication 2013. doi: 10.1038/ncomms3469/ href='www.natyre.com/naturecommunications' target='_blank'>www.natyre.com/naturecommunications
  23. Losupone C, Stombaugh J, Gonzalez A, Ackermann G, Wendel D, Vazquez-Baeza X et al. Meta-analysis of studies of the human microbiota. Genome Res 201; doi: 10.1101.gr.151803.112.
  24. Cox MJ, Cookson WOCM, Moffatt MF. Sequencing the human microbiome in health and disease. Human Mol Gen 2013; 22: 88-94.
  25. Voreades N, Kozil A, Weir TL. Diet and the development of the human intestinal microbiome. Front Microbiol September 2014; doi: 10.3389/fmicb.2014.00494
  26. He T, Harmsen HJM, Raangs GC, Welling GW. Composition of faecal microbiota of elderly people. Microb Ecol Health Dis 2003; 15 (4): 153-159.
  27. Bartosch S, Fite A, Vacfarlane GT, McMurdo MET. Characterization of bacterial communities in faeces from healthy elderly volunteers and hospitalized elderly patients by using Real-time PCR and effects of antibiotic treatment on the fecal microbiota. Appl Environ Microbiol 2004; 70(6): 3575-3581
  28. Woodmansey EJ. Intestinal bacteria and ageing. J Appl Microbiol 2007; 102 (5): 1178-86.
  29. Mariat D, Firmesse O, Levenez F, Guimaraes VD, Sokol H, Dore J et al. The Firmicutes/Bacteroidetes ratio of the human microbiota changes with age. BMC Microbiology 2009; 9: 123; doi: 10.1186/1471-2180-9-123.
  30. Biagi E, Nylund L, Candela M, Ostan R, Bucci L, Pini E, et al. Through ageing, and beyond: gut microbiota and inflammatory status in seniours and centenarians. PLoS One 2010; 5 (5): e10667.doi: 10.1371/journal.pone.0010667.
  31. Biagi E, Candela M, Turroni S, Garagnani P, Franceschi C, Brigidi P. Ageing and gut microbes; perspectives for health maintenance and longevity. Pharmacol Res. 2013; 69 (1): 11-20.
  32. O’Tool PW. Diet-, microbiota-health correlations in older persons-the ELDERMET study. International Yakult Symposium 2013; The Intestinal Microbiota and Probiotics: Exploiting their Influence on health. 22-23 April 2013. London, UK: 16.
  33. O’Connor EM, O’Herlihy EA, O’Toole PW. Gut microbiota in older subjects: variation, health consequences and dietary intervention prospects. Proc Nutr Soc 2014; 73 (4): 441-51.
  34. Saraswat Si, Sitaraman R. Aging and the human gut microbiota-from correlation to causality. Front Mircobiol. January 2015; doi: 10.3389/fmicb.2014.00764.
  35. Toward RE, Montandon SL, Walton GE, Gibson GR. Effect of prebiotics on the human gut microbiota of elderly persons. Gut Microbes 2012; 3:1, 57-60. Doi. org/10.4161/gmic.19411.
  36. Duncan SH, Flint HJ. Probiotics and prebiotics and health in ageing populations. Maturitas 75 (2013) 44-50.doi.org/10.1016/j.maturitas.2013.02.004.
  37. Likotrafiti E, Tuohy KM, Gibson GR, rastall RA. An in vitro study of the effect of probiotics, prebiotics and synbiotics on the elderly faecal microbiota. Anaerobe 2014; 27: 50-5.
  38. Белобородова НВ, Осипов ГА. Гомеостаз малых молекул микробного происхождения и его роль во взаимоотношениях микроорганизмов с хозяином. Вестник РАМН 1999; 16 (7): 25-31.
  39. Beloborodova NV, Osipov GA. Small molecules originating from microbes (SMOM) and their role in microbes-host relationship. Microb Ecol Health Dis 2000; 12: 12-21.
  40. Nicholson JK, Holmes E, Wilson ID. Gut microorganisms, mammalian metabolism and personalized health care. Nat Rev Microbiol 2005; 3: 431-38.
  41. Hood L. Tacling the microbiome. Science 2012; 336: 1209.
  42. Collino S., Martin F-P J, Rezzi S. Clinical metabolomics paves the way towards future healthcare strategies. Br J Clin Pharm 2013; 75(3): 619-29.
  43. Shenderov BA. Probiotic (symbiotic) bacteria languages. Anaerobe 2011; 17: 490-5.
  44. Stead DE, Sellwood JE, Wilson J, Viney J. Evaluation of a commercial microbial identification system based on fatty acid profiles for rapid accurate identification of plant pathogenic bacteria. J Appl Bacteriol 1992; 72: 315-321
  45. Осипов ГА. Хромато-масс-спектрометрический анализ микроорганизмов и их сообществ в клинических пробах при инфекциях и дисбиозах. Химический анализ в медицинской диагностике. - М.: Наука, 2010. - 293-368.
  46. Осипов ГА., Парфенов А.И., Верховцева Н.В., Ручкина И.Н., Курчавов В.А., Бойко Н.Б., Рогатина Е.Л. Клиническое значение исследования микроорганизмов слизистой оболочки кишечника культурально-биохимическим и хромато-масс-спектрометрическими методами. Эксп Клин Гастроэнтерология 2003; 4: 59-67.
  47. Осипов ГА, Федосова НФ, Лядов КВ. Количественный ^^микробиологический анализ по липидным маркерам в биологических жидкостях с использованием метода газовой хроматографии-масс-спектрометрии. Здравоохранение и медицинские технологии 2007; 5: 20-23.
  48. Osipov GA, Verkhovtseva NV.Study of human microecology by mass spectrometry of microbial markers. Beneficial Microbes. 2011; 2 (1): 63-78.
  49. Полеско И.В., Бутов Ю.С., Осипов ГА., Кабаева Т.И., Парфенов В.В., Деленян Н.В. Состав кожного сала, микроэкология кожи и кишечника у больных себорейным дерматитом и акне (исследование методом газовой хроматографии масс-спектрометрии). Рос. Журн. Кож.и Вен. Бол., 2007, № 2, с. 43-50.
  50. Оценка микроэкологического статуса человека методом хроматомасс-спектрометрии. Новая медицинская технология. № НЮ-40006. Зарегистрировано в Росздравнадзоре 17.08.2009.
  51. Осипов ГА, Новикова ВП. Методика масс-спектрометирии микробных маркеров как способ оценки пристеночной кишечной микробиоты при заболеваниях органов пищеварения. Учебно-методическое пособие. Санкт-Петербург; Изд-во «Левша». 2013, 95 стр.
  52. Goldfine H. The appearance, disappearance and reappearance of plasmalogens in evolution.Prog Lipid Res 2010; 49 (4): 493-8.
  53. Rezanka T, Kresinova Z, Kolouchova I, Sigler K. Lipidomic analysis of bacterial plasmalogens. Folia Microbiol 2012; 57: 463-472.
  54. Timmer MSM, Sauvageau J, Foster AJ, Ryan J, Lagutin K, Shaw O, et al. Discovery of lipids from B.longum subsp. infantis using whole cell MALDI Analysis. J Org Chem 2014; 79 (16): 7332-41.
  55. Шендеров Б.А. Функциональное питание, криогенные банки микробиоценозов и их роль в сохранении и восстановлении здоровья. Вестник восстановительной медицины 2003; № 31: 29-31.
  56. Олескин А.В., Шендеров Б.А. Биополитический подход к реабилитологии: потенциальная роль микробной нейрохимии. Обзор. Вестник восстановительной медицины 2013; № 1: 60-67.
  57. Шендеров Б.А. «ОМИК» - технологии и их значение в современной профилактической и восстановительной медицине. Вестник восстановительной медицины 2012; №3: 70-78.

Supplementary files

Supplementary Files
Action
1. JATS XML

Copyright (c) 2015 Bezrodny S.L., Shenderov B.A.

Creative Commons License
This work is licensed under a Creative Commons Attribution 4.0 International License.

This website uses cookies

You consent to our cookies if you continue to use our website.

About Cookies