Кишечная микробиота как источник новых биомаркеров старения


Цитировать

Полный текст

Аннотация

В настоящее время установлено, что свыше 40% всех присутствующих в крови низкомолекулярных соединений имеет микробное происхождение. Метод газовой хромато-масс-спектрометрии (ГХМС), позволяет выявлять в цельной крови высшие жирные кислоты, альдегиды, спирты и стерины, которые являются метаболическими маркерами клеточных стенок определенных микроорганизмов. Методом ГХМС изучен состав указанных липидных компонентов крови у 41 человека зрелого/пожилого - 45-59 лет (17 чел.) - и преклонного - 75-90 лет (24 чел.) - возраста; это позволило установить у них структуру и количественный состав пристеночной кишечной микробиоты. Анализ содержания двадцати пяти таксономически идентифицированных групп бактерий, грибов и вирусов в микробиоте кишечника позволил выявить отчетливые различия микроэкологического профиля кишечника у исследованных людей старшего возраста: сниженное содержание в пристеночной микробиоте бифидобактерий, лактобацилл и пропионибактерий и, напротив, повышенную пропорцию представителей видов E. lentum, N. asteroids, Herpesvirus. Наиболее выраженными по сравнению с референсными значениями эти различия были у лиц преклонного возраста. В обеих исследованных группах отмечено также сниженное содержание в крови эндотоксина и плазмалогена, более выраженное у лиц в возрасте 75-90 лет. Полученные данные позволяют рассматривать выявленные изменения в пристеночной кишечной микробиоте как потенциальные индикаторные возраст-ассоциированные микроэкологические маркеры старения. Рекомендуется использовать исследование крови методом ГХМС, как экспрессный прием оценки микроэкологического профиля кишечника взрослых, пожилых и людей преклонного возраста..

Полный текст

Введение В 2013 году в Российской Федерации 32 млн человек имели возраст старше 60 лет; у 72% из них были выявлены те или иные хронические заболеваниями и более 17 млн человек находились на постоянном диспансерном наблюдении. Через 10 лет число таких граждан достигнет 40 млн человек. В отечественной экономике занято около 10 млн лиц пенсионного возраста; еще более 300 тыс. пенсионеров готовы продолжить свою рабочую деятельность. Для этого почти 15% граждан предпенсионного и пенсионного возраста желают пройти дополнительное обучение или повысить квалификацию, получив новые знания и трудовые профессии. В этой связи становится понятным, почему в последние годы в России и в других развитых странах мира растет интерес к выяснению причин старения и каким образом сохранять и улучшать физические и умственные способности пожилых людей. Накопленные данные свидетельствуют, что у лиц с повышением возраста даже при отсутствии заболеваний возникают и постепенно прогрессируют различные физические, метаболические, нервно-психические, клеточные и молекулярные нарушения практически во всех органах и тканях [1; 2]. В настоящее время полагают, что биомаркерами старения могут быть нестабильность геномной и митохондриальной ДНК, нарушение эпиге-номной программы развития, окислительный стресс, хроническое воспаление, укорочение теломер, дисбаланс гомеостаза белков, ускоренное старение клеток, дисфункции митохондрий, дефекты трофических и энергетических сигнальных путей, истощение стволовых клеток, изменение внутриклеточной и межклеточной коммуникации [2-11]. В течение многих лет доминировало мнение, что здоровье, долголетие и риск заболеваний, преимущественно обусловлены дефектами, возникающими в эукариотических клет ках человека. Между тем, в последнее десятилетие возникла и получила все больше подтверждение новая парадигма, предлагающая рассматривать человека, как «суперорганизм», симбиотическое сообщество представителей Eukarya, Bacteriacea, Archaea и Viruses. С этих позиций, симбиотическуюмикроби-оту высших животных организмов рассматривают, как важнейший экстракорпоральный орган этого суперорганизма, как эндогенный эпигеномный фактор, активно участвующий в регуляции роста и развития хозяина, его здоровья и заболеваний [12-15]. Использование классических бактериологических и современных молекулярных «ОМИК»-технологий [16-18] позволило детально исследовать структуру и многочисленные функции симбиотической микробиоты человека на протяжении всей его жизни, с рождения до глубокой старости. При этом оказалось, что микробиота каждого индивидуума имеет уникальный профиль, как по своей структуре [19], так и функциональной активности [20]. У взрослых здоровых людей 80% кишечноймикробиоты принадлежит трем доминирующим (более 109 кое/г) филам: Bacteroidetes, Firmicutes и Actinobacteria, среди которых преобладают определенные виды клостридий(С.ієрШіті, C.coccoides) и представители родов Bacteroidetes, Eubacterium, Bifidobacterium, Peptostreptococcus, Ruminococcus, Propionibacterium; среди субдоминирующих (менее 109 кое/г) кишечных микроорганизмов наиболее часто обнаруживаются представители Lactobacillus, Proteobacteria, Fusobacterium, Cyanobacteria, Verru-comicrobia, Desulfovibrio, Sporomusa, Apopobium, Methanobrevibacter и ClostridiumlV, XI, XIVb, XVIII групп [15; 21-25]. Попытки использовать микроэкологический профиль пищеварительного тракта в качестве нового биомаркера старения и долголетия в последние годы 40 Нутрициология и лечебное питание Вестник восстановительной медицины № 2·2015 предпринимались неоднократно. Биоматериалом для таких исследований обычно служили фекалии людей, которые подвергались традиционному микробиологическому анализу и/или молекулярно-генетическому изучению [16-20; 26-33]. К сожалению, опубликованные к настоящему времени данные, касающиеся сравнительного состава микробиоты у лиц различного возраста, достаточно противоречивы. Это дало основание утверждать, что наши знания роли кишечного микробиома человека, как эндогенного фактора ускоренного старения, метаболических заболеваний или долголетия, пока еще весьма ограничены [13]. Отсутствие единого мнения, какие изменения в кишечной микробиоте человека могут быть объективными биомаркерами старения, обусловлено чрезвычайно сложным и в то же время индивидуальным популяционным составом этой микробиоты. Кроме того, на результаты исследований существенное влияние оказывал разноречивый по возрасту состав обследованных групп, отсутствие коммерческих стандартных тест-систем, позволяющих объективно сравнивать структуру их кишечной микробиоты. Присутствие хронических заболеваний, использование для их лечения множества лекарственных средств, особенности пищевого рациона, малоподвижный образ жизни, другие физиологические и социально-психические особенности также являлись факторами, затрудняющими сравнительную оценку микроэкологического статуса у представителей этой категории населения [16; 18; 20; 30]. Хотя причинная связь возрастной сукцессии кишечной микробиоты со старением и/или долголетием человека, до настоящего времени окончательно не установлена, микроэкологические подходы к ее пониманию могут послужить отправной точкой для разработки новых и совершенствования имеющихся программ сохранения активного долголетия и восстановительной медицины [35-37]. Является доказанным, что кровь человека несет широкий спектр биомолекул, включая нутриенты, гормоны, метаболиты и другие низкомолекулярные соединения, являющиеся структурными компонентами или секретируемые различными клетками суперорганизма [13; 38-42]. Более 40% всех этих соединений, обнаруживаемых в крови, имеют микробное происхождение [40; 43]. Липидный состав микроорганизмов достаточно специфичен для таксонов различного уровня (семейств, родов и даже видов). Знания структуры и количественного состава высших жирных кислот, алкоголей, стеринов и других липидных соединений в клеточной стенке определенных микроорганизмов позволяет использовать метод газовой хромато-масс-спектрометрии (ГХМС) не только для определения указанных маркерных веществ в исследуемом биоматериале, но и устанавливать таксономическую принадлежность микроорганизмов, присутствующих в биосубстрате, взятом для изучения. ГХМС анализ, использованный нами в данной работе, основан на прямом извлечении липидных соединений из цельной крови, их разделении на газовом хроматографе в капиллярной колонке высокого разрешения и последующей идентификации по площадям пиков и времени их выхода на масс-спектрометре. Предлагаемый метод обеспечивает возможность детектирования одновременно порядка 60 микроорганизмов при проведении анализа одного образца [44-49]. Нами впервые предпринята попытка оценить профиль пристеночной микробиоты кишечника у лиц пожилого и преклонного возраста путем ГХМС анализа крови на содержание в ней 126 высших жирных кислот, гидрокси-кислот, спиртов, альдегидов и стеринов, специфических для различных таксономических групп микроорганизмов. Материалы и методы Объектом исследования являлись 41 человек зрелого/пожилого - 45-59 лет (17 чел) и преклонного -75-90 лет (24 чел) возраста, отобранных методом случайной выборки. Материалом для исследования служила цельная кровь, взятая у них из вены, которую отбирали в пробирку с ЭДТА, замораживали при -18оС и транспортировали в лабораторию в течение 30-60 минут после взятия материала. Кровь отбирали согласно Методическим указаниям «Техника сбора и транспортирования биоматериалов в микробиологические лаборатории» МУ 4.2.2039-05 пункт 3. Доставленные пробы подвергали анализу на состав микробных маркеров с использованием хромато-масс-спектрометра АТ 5973 (газовый хроматограф с масс-селективным детектором серийного выпуска; Agilent Technologies Inc, США). Суть анализа состояла в прямом извлечении с помощью экстракции жирнокислотных соединений из образца крови, их разделения на хроматографе в капиллярной колонке и анализа состава на масс-спектрометре. Цельную кровь (40 мкл) переносили в виал, емкостью 1,5 мл, с завинчивающейся крышкой и с тефлонированной прокладкой, подсушивали (при снятой крышке) в термостате при 80оС с добавлением 40 мкл метанола для ускорения сушки. К загустевшей пробе приливали 400 мкл 1М соляной кислоты в метаноле; кислый метанолиз вели при 80оС в течение 60 минут. К охлажденной реакционной среде добавляли 300 нг стандарта (дей-терометиловый эфир тридекановой кислоты), растворенного в гексане. Экстракцию проводили дважды путем внесения гексана (по 200 мкл) и последующего встряхивания смеси на вортексе, каждый раз позволяя реакционной смеси отстояться в течение 5 мин при комнатной температуре. Объединенный экстракт высушивали 5-7 мин при 80оС, а затем обрабатывали 20 мкл Ы,О-бис (триметилсилил)-трифторацетамида в течение 15 мин при той же температуре и при закрытой крышке. К реакционной смеси добавляли 80 мклгексана, после чего проба была пригодна для анализа на АТ 5973 в течение недели. Для отнесения маркеров к конкретным микроорганизмам наряду с авторскими данными (740 штаммов микроорганизмов) использована база данных (2000 штаммов) прибора Шерлок (MIDI Inc, Delaware, USA) для хроматографической идентификации микроорганизмов по жирным кислотам, а также другие литературные источники. АТ 5973 снабжен компьютером с соответствующими программами автоматического анализа и обработки данных; сам процесс анализа занимает 30 мин, а с учетом времени пробоподготовки и расчета данных - не более 3 часов. Расчет концентрации маркеров и отнесение их к конкретным микроорганизмам проводили по программному продукту, поставляемому разработчиком. Результатом проведенных ГХМС исследований являлось установление маркеров, позволяющих судить о структуре и количественном содержании в пристеночной микробиоте кишечника обследуемых представителей 57 различных таксономических филотипов микроорганизмов. Нутрициология и лечебное питание 41 Вестник восстановительной медицины № 2^2015 [45; 50; 51]. Статистическую обработку результатов одноименных показателей в каждой группе сравнения проводили с использованием пакета прикладных программ Statistica 6.0 для Windows. Различия в показателях считались достоверными, если они не менее, чем в два раза, отличались от референсных значений, полученных при обследовании крови здоровых молодых людей. Результаты и их обсуждение В таблице приведены данные ГХМС исследований крови 41 человека, касающиеся содержания 25 представителей пристеночной микробиоты кишечника у лиц зрелого/пожилого и преклонного возраста. Анализ этих данных свидетельствует о достаточной индивидуальности исследованных людей по структуре и количественному содержанию изученных таксонов бактерий, грибов и вирусов. При обсуждении микроэкологического профиля кишечника зрелых, пожилых и преклонных людей немаловажным является терминологическое определение понятия «старый» человек. По данным итальянских исследователей состав и функции микрофлоры толстой кишки у пожилых людей в среднем возрасте 70 лет относительно мало отличались от таковых взрослых молодых здоровых людей, что с микроэкологи-ческой точки зрения позволило ввести даже такое понятие, как задержанное старение («delayed aging»). Лишь у лиц старше 80-90 лет (centenarians) наблюдались отчетливые различия в структуре и функциях микробиоты толстого кишечника [30]. Соотношение микроорганизмов, входящих в филогруппы Firmicutes и Bacteroidetes в содержимом толстой кишки у новорожденных, взрослых и пожилых людей составляет 0,4; 10,9 и 0,6, соответственно [29]. К особенностям фекальной микробиоты лиц старших возрастных групп относят наличие в этом биоматериале повышенного количества оппортунистических патогенов (энтеробактерий, кандида, стафилококков) с одновременным уменьшением у старых и людей преклонного возраста бифидобактерий, появление в фекалиях достаточно большого числа атипичных вариантов доминирующих и субдоминирующих представителей симбиоти-ческоймикробиоты, изменение соотношения лакта-тобразующих и бутиратсинтезирующих анаэробных бактерий. Какие-либо специфические маркерные виды микроорганизмов в фекалиях, характерные только для долгожителей (лиц старше 90 лет), не были обнаружены [16; 19; 30; 31]. Из наших данных, представленных в таблице, видно, что в группе лиц в возрасте 45-59 лет наибольшие отклонения (в два и более раз) от референсных значений (здоровые взрослые люди), отмечались последующим таксономическим микробным филотипам: Eubacterium lentum, Peptostreptococcus anaerobius, Streptococcus mutans, Bifidobacterium, Propionibacterium/ Clostridium subterminale, Herpes-вирусам. При этом отмечалось как некоторое увеличение числа условнопатогенных микроорганизмов и вирусов, так и снижение представителей «полезной» микробиоты; к последним относят, прежде всего, бифидобактерии и лактобациллы [13].В группе людей в возрасте 75-90 лет наибольшие различия с референсными значениями имелись по представителям Lactobacillus, Eubacterium/Clostridium coccoides, Bifidobacterium, Propionibacterium/Clostridium subterminale. Дефицит Bifidobacterium, Propionibacterium/ C.subterminale наблюдался в обеих возрастных группах. В более старшей возрастной группе в пристеночной микробиоте снижалось разнообразие филотипов как «полезных», так и условно-патогенных микроорганизмов, что совпадает с результатами наблюдений за структурой фекальной микробиоты у лиц старше 75 лет [16; 30; 31]. Связано ли это с особенностями питания этих лиц, «скудным» образом их жизни, или со старением организма, как биологическим процессом в целом, пока сказать невозможно. Хотя иммунная устойчивость лиц в группе 75-90 лет ниже, чем у более молодых людей [16], способность человека в этом возрасте выстраивать новые симбиотические взаимоотношения с возраст-трансформированной пристеночной кишечной микробиотой может быть важнейшим условием их долголетия. Использованная нами в работе ГХМС технология позволяла также определять в крови обследуемых лиц содержание эндотоксина и плазмалогена. Как известно, эндотоксин (микробный липополисахарид) является одним из важнейших факторов хронического воспаления, которое по последним данным [3; 9; 30], в значительной степени ответственно за ускоренное старение и развитие метаболических заболеваний, связанных с пожилым возрастом. Источником эндотоксина в организме млекопитающих являются грамотрицательные патогенные и оппортунистические бактерии, в первую очередь, энтеробактерии и бактероиды, широко представленные в составе фекальной микробиоты и, количество которых увеличивается с возрастом [16; 19; 30; 31]. Следует заметить, что некоторые исследователи [29] отмечали заметное снижении пропорции представителей фила Bacteroides в общей массе фекальных микроорганизмов. По нашим данным, содержание эндотоксина в крови лиц 45-50 лет составляло 0,54 ± 0,22 мкг/мл, что было близким к референсным значениям для здоровых взрослых людей. Троекратно сниженное количество эндотоксина (0,18±0,07 мкг/мл) в крови у лиц старше 75 лет согласуется с нашими наблюдениями, что содержание грамотрицательных бактерий в пристеночном слое нижних отделов тонкого кишечника было крайне незначительно. Плазмалогены (плазменил-, плазманил-липиды) - это фосфолипиды/гликолипиды, широко представлены в клетках млекопитающих и у анаэробных бактерий. Кишечная микробиота является дополнительным (а возможно и основным) резервуаром плазмалогенов, поскольку эти соединения в значительном количестве синтезируются и присутствуют в составе мембран многих анаэробов (эубактерии, бифидобактерии, пропионобактерии, клостридии, бактероиды, десульфовибрио, румино-кокки, вейллонеллы, пропионибактерии, мегасфера и др.). В растениях и грибах плазмалогены не встречаются [52-54]. Плазмалогены защищают от окисления полиненасыщенные жирные кислоты, участвуют в структуре и функциях мембран клеток млекопитающих и анаэробных бактерий, осуществляют межклеточные сигнальные функции и т.д. Хотя плазмалогены бактерий и эукариотических клеток функционально схожи, структурно они существенно различаются. Содержание плазмалогена в тканях мозга и биологических жидкостях существенно снижено у больных с неврологическими заболеваниями, связанными со старением, включая деменцию по типу болезни Аль-цгеймера[53]. Данные наших исследований пока- 42 Нутрициология и лечебное питание Вестник восстановительной медицины № 2·2015 зали, что содержание бактериального плазмалогена в крови составляло 21,73±12,93 и 6,47±3,56 мкг/ мл в первой и второй возрастных группах соответственно, что два - семь раз ниже референсного значения (50 мкг/мл). Это позволяет рассматривать плазмалогены, как дополнительный биомаркер старения/ долголетия, в поддержании уровня которого анаэробная кишечная микробиота, синтезирующая данную группу липидов, может активно участвовать. Представленные в настоящем исследовании данные позволяют нам рекомендовать выявленные изменения в структуре филотипов пристеночной кишечной микробиоты,как четкие, воспроизводимые возраст -ассоциированные микроэкологические маркеры старения, а сам метод ГХМС как быструю технологию оценки профиля состава пристеночной микробиоты кишечника у людей зрелого/пожилого и преклонного возраста. Заключение Объектом наших исследований являлась кровь лиц зрелого/пожилого и преклонного возраста, которую можно рассматривать как интегральный биоматериал, вобравший в себя соответствующие низкомолекулярные соединения (потенциальные микробные маркеры) на всем протяжении пищеварительного тракта. Спектр и количество низкомолекулярных субстанций (высшие жирные кислоты, спирты, альдегиды, эндотоксин, плазмалогены и др.) микробного происхождения в крови зависят от многих факторов: их способности преодолевать барьер слизистой кишечника и транслоцироваться в кровяное русло, возможностью и скоростью их утилизации в просвете кишечника эпителиоцитами и симбиотическими микроорганизмами кишечника, пропорционального содержания кишечных бактерий в структуре микробиоты в различных биотопах пищеварительного тракта, их локализацией в пристеночном (фик-сированномсостоянии) или в просвете кишечника (в плавающем состоянии). Дальнейшие исследования позволят установить, какие из перечисленных условий и в какой мере могут влиять на конечные результате ГХМС анализа крови, позволяющие установить микроэкологический профиль кишечника людей различного возраста. Наблюдения авторов первого применения ГХМС для оценки микробной экологии пищеварительного тракта человека [46; 51], также как и наши данные, позволяют говорить, что эта технология способна достаточно объективно отобразить состояние пристеночной микробиоты в нижних отделах тонкой кишки (тощая, подвздошная) и начале толстой кишки (слепая кишка). Прямое сопоставление наших данных и результатов, полученных при исследовании фекалий вряд ли возможно и целесообразно, поскольку они направлены на изучении микробной экологии разных отделов пищеварительного тракта. Скорее следует говорить, что ранее опубликованные и наши данные информационно дополняют друг друга и расширяют наши знания, касающиеся микроэкологической характеристики пищеварительного тракта. Расширение спектра образцов биоматериала, взятых из различных отделов кишечника, и одновременное их исследование бактериологическим, молекулярно- генетическим, ГХМС и другими ОМИК-методами, дадут возможность более объективно оценивать состав и количественное содержание как доминирующих, так и минорных представителей микробиоты пищеварительного тракта на всем его протяжении у лиц, принадлежащих различным возрастным группам [17]. Знания динамики и механизмов становления микробиоты в детстве и ее сукцессии в течение всей индивидуальной жизни (включая пожилой и преклонный возраст) создадут реальные предпосылки восстановления микроэкологического статуса конкретного человека в определенных условиях его жизни с использованием пробиотиков, пребиотиков,метабиотиков и синбиотиков [15; 36; 37]. Оригинальным и перспективным микроэкологи-ческим подходом поддержания здоровья и активного долголетия может стать также создание на территории РФ национальных криогеных банков с целью сохранения биоразнообразия кишечной микробиоты многочисленных этносов россиян и отдельных их представителей. На базе сохраняющихся при температурах от -80оС до -196оС (практически вечно) в неизменном состоянии индивидуальных симбиотических ассоциаций бактерий можно будет создавать аутопробиотики (пробиотики индивидуального применения) для аутотрансплантации кишечной микробиоты, которую, возможно, надо будет рекомендовать всем лицам, перешагнувшим возраст 45-50 лет [1; 55]. Внедрение в практику восстановительной медицины микроэкологической инженерии (направленное восстановление микробиоты людей пожилого и преклонного возраста) путем своевременного назначения им замороженной аутомикробиоты, взятой на хранение в молодом возрасте, открывает новые захватывающие перспективы в области создания программ активного долголетия. Выводы Использование метода хромато-масс-спектро-метрии крови позволило установить структуру и количественный состав пристеночной кишечной микробиоты у людей в зрелом, пожилом и преклонном возрасте. У обследованных групп выявлены различия в содержании определенных таксономических микробных филотипов в микробиоте кишечника, а также в количестве эндотоксина и бактериального плазмалогена в плазме крови; особенно четко эти различия выявлялись у людей старше 75 лет. Метод ГХМС крови может быть рекомендован в качестве экспрессной технологии оценки профиля состава пристеночной микробиоты кишечника людей пожилого и преклонного возраста. Выявляемые микроэкологические различия могут рассматриваться в качестве биомаркеров старения и долголетия. Авторы выражают благодарность доктору биологических наук Терешиной Е.В. за возможность получения биоматериала от людей старших возрастных групп. Нутрициология и лечебное питание 43 Вестник восстановительной медицины № 2·2015 Таблица. Содержание некоторых представителей кишечной микробиоты у лиц различных возрастных групп 44 Нутрициология и лечебное питание
×

Об авторах

С. Л Безродный

ФБУН «Московский НИИ эпидемиологии и микробиологии им. Г.Н.Габричевского»

Email: frebiotik@mail.ru

Б. А Шендеров

ФБУН «Московский НИИ эпидемиологии и микробиологии им. Г.Н.Габричевского»

Email: shenderof@yandex.ru

Список литературы

  1. Шендерв Б.А. Роль персонального функционального питания в современных программах медицины антистарения. Вестник восстановительной медицины. 2009; №3: 9-17.
  2. Lopez-Otin C; Blasco M A; Partridge L; Serrano M; Kroemer, G.The hallmarks of aging.Cell 2013. 153 (6): 194-217.
  3. Doles J, Storer M, Cozzuto L, Roma G, Keyes WM, Age -associated inflammation inhibits epidermal stem cell function. Genes Dev 2012; 26: 2144-53
  4. Frelje JM, Lopez-Otin C. Reprogramming aging and progeria. Curr Opin Cell Biol 2012; 24: 757-64.
  5. Armanios M, Blackburn EH. The telomere syndromes. Nat Rev Genet 2012; 13: 693-704.
  6. Sena LA, Chandel NS. Physiological roles of mitochondrial reactive oxygen species. Mol Cell 2012; 48: 158-167.
  7. Шендеров БА. Молекулярно-генетические основы активного долголетия и метаболический профиль. - Anti-agemedicine: наука оставаться молодым - (ред. А.И. Труханов). М.: АСВОМЕД. - 2012. - 212-239.
  8. Shenderov BA, Midtvedt T. Epigenomic programming: a future way to health? Microb Ecol Health Dis 2014; 25.21145. doi: org/10.3402/mehd.v25.24145.
  9. Gabuzda D, Yankner BA. Inflammation links ageing to the brain Nature 2013; 497(7448).doi: 10.1038/nature12100
  10. Soares JP, Cotinhas A, Bento T, Leitao JC, Collins AR et al. Aging and DNA damage in humans: a meta-analysis study. Aging (AlbanyNY) 2014; 6 (6): 432-9.
  11. Labbadia J, Morimoto RI.Proteostasis and longevity: when does aging really begin. F1000Prime Rep 2014;6: 7. doi;10.12703/P6-7.
  12. Lederberg J. Infectious history. Science 2000; 288: 287-93.
  13. Sekirov I, Russell SL, Antunes LC, Finlay BB. Gut microbiota in health and disease. Physiological Reviews 2010; 90 (3): 859-904.
  14. Suvorov A. Gut microbiota, probiotics, and human health. Bioscience of Microbiota, Food and Health 2013; 32 (3): 81-91.
  15. Шендеров БА. Микробная экология человека и ее роль в поддержании здоровья. Метаморфозы 2014; №5: 72-80.
  16. Tiihonen K, Ouwehand AC, Rautonen N. Human intestinal microbiota and healthy ageing. Ageing Res Rev 2010; 9 (2): 107-16.
  17. Rampelli S,Candela M, Turroni S, Biagi E, Collino S, Franceschi C. et al. Functional metagenomic profiling of intestinal microbiome in extreme ageing. Aging 2013; 5 (12): 902-12.
  18. Salazar N, Arboleya S, Valdes L, Stanton C, Ross P, Ruiz L.et al. The human intestinal microbiome at extreme ages of life. Dietary intervention as a way to counteract alterations. Front Microb November 2014; doi: 10.3389/fgene. 2014.00406.
  19. Claesson MJ, Cusack S, O’Sullivan O, Greene-Diniz R, de Weerd H, Flannery E. et al. Composition, variability, and temporal stability of the intestinal microbiota of the elderly. Proc Natl Acad Sience USA 2011 108: Suppl1: 4586-91.
  20. Kinross J, Nicholson JK. Dietary and social modulation of gut microbiota in the elderly. Nat Rev Gastroenterol Hepatol 2012; 9 (10): 563-4.
  21. Lagier J-C., Millio M., Hugon P., Armougom F., Raoult D. Human gut microbiota: repertoire and variations. Fronties in Cellular and Infection Microbiology 2012.v.2.doi: 10.3389/fcimb.2012.00136.
  22. Tyakh AV, Kostryukova ES, Popenko AS, Belenikin MS, et al. Human gut microbiota community structures in urban and rural populations in Russia. Nature Communication 2013. doi: 10.1038/ncomms3469/ href='www.natyre.com/naturecommunications' target='_blank'>www.natyre.com/naturecommunications
  23. Losupone C, Stombaugh J, Gonzalez A, Ackermann G, Wendel D, Vazquez-Baeza X et al. Meta-analysis of studies of the human microbiota. Genome Res 201; doi: 10.1101.gr.151803.112.
  24. Cox MJ, Cookson WOCM, Moffatt MF. Sequencing the human microbiome in health and disease. Human Mol Gen 2013; 22: 88-94.
  25. Voreades N, Kozil A, Weir TL. Diet and the development of the human intestinal microbiome. Front Microbiol September 2014; doi: 10.3389/fmicb.2014.00494
  26. He T, Harmsen HJM, Raangs GC, Welling GW. Composition of faecal microbiota of elderly people. Microb Ecol Health Dis 2003; 15 (4): 153-159.
  27. Bartosch S, Fite A, Vacfarlane GT, McMurdo MET. Characterization of bacterial communities in faeces from healthy elderly volunteers and hospitalized elderly patients by using Real-time PCR and effects of antibiotic treatment on the fecal microbiota. Appl Environ Microbiol 2004; 70(6): 3575-3581
  28. Woodmansey EJ. Intestinal bacteria and ageing. J Appl Microbiol 2007; 102 (5): 1178-86.
  29. Mariat D, Firmesse O, Levenez F, Guimaraes VD, Sokol H, Dore J et al. The Firmicutes/Bacteroidetes ratio of the human microbiota changes with age. BMC Microbiology 2009; 9: 123; doi: 10.1186/1471-2180-9-123.
  30. Biagi E, Nylund L, Candela M, Ostan R, Bucci L, Pini E, et al. Through ageing, and beyond: gut microbiota and inflammatory status in seniours and centenarians. PLoS One 2010; 5 (5): e10667.doi: 10.1371/journal.pone.0010667.
  31. Biagi E, Candela M, Turroni S, Garagnani P, Franceschi C, Brigidi P. Ageing and gut microbes; perspectives for health maintenance and longevity. Pharmacol Res. 2013; 69 (1): 11-20.
  32. O’Tool PW. Diet-, microbiota-health correlations in older persons-the ELDERMET study. International Yakult Symposium 2013; The Intestinal Microbiota and Probiotics: Exploiting their Influence on health. 22-23 April 2013. London, UK: 16.
  33. O’Connor EM, O’Herlihy EA, O’Toole PW. Gut microbiota in older subjects: variation, health consequences and dietary intervention prospects. Proc Nutr Soc 2014; 73 (4): 441-51.
  34. Saraswat Si, Sitaraman R. Aging and the human gut microbiota-from correlation to causality. Front Mircobiol. January 2015; doi: 10.3389/fmicb.2014.00764.
  35. Toward RE, Montandon SL, Walton GE, Gibson GR. Effect of prebiotics on the human gut microbiota of elderly persons. Gut Microbes 2012; 3:1, 57-60. Doi. org/10.4161/gmic.19411.
  36. Duncan SH, Flint HJ. Probiotics and prebiotics and health in ageing populations. Maturitas 75 (2013) 44-50.doi.org/10.1016/j.maturitas.2013.02.004.
  37. Likotrafiti E, Tuohy KM, Gibson GR, rastall RA. An in vitro study of the effect of probiotics, prebiotics and synbiotics on the elderly faecal microbiota. Anaerobe 2014; 27: 50-5.
  38. Белобородова НВ, Осипов ГА. Гомеостаз малых молекул микробного происхождения и его роль во взаимоотношениях микроорганизмов с хозяином. Вестник РАМН 1999; 16 (7): 25-31.
  39. Beloborodova NV, Osipov GA. Small molecules originating from microbes (SMOM) and their role in microbes-host relationship. Microb Ecol Health Dis 2000; 12: 12-21.
  40. Nicholson JK, Holmes E, Wilson ID. Gut microorganisms, mammalian metabolism and personalized health care. Nat Rev Microbiol 2005; 3: 431-38.
  41. Hood L. Tacling the microbiome. Science 2012; 336: 1209.
  42. Collino S., Martin F-P J, Rezzi S. Clinical metabolomics paves the way towards future healthcare strategies. Br J Clin Pharm 2013; 75(3): 619-29.
  43. Shenderov BA. Probiotic (symbiotic) bacteria languages. Anaerobe 2011; 17: 490-5.
  44. Stead DE, Sellwood JE, Wilson J, Viney J. Evaluation of a commercial microbial identification system based on fatty acid profiles for rapid accurate identification of plant pathogenic bacteria. J Appl Bacteriol 1992; 72: 315-321
  45. Осипов ГА. Хромато-масс-спектрометрический анализ микроорганизмов и их сообществ в клинических пробах при инфекциях и дисбиозах. Химический анализ в медицинской диагностике. - М.: Наука, 2010. - 293-368.
  46. Осипов ГА., Парфенов А.И., Верховцева Н.В., Ручкина И.Н., Курчавов В.А., Бойко Н.Б., Рогатина Е.Л. Клиническое значение исследования микроорганизмов слизистой оболочки кишечника культурально-биохимическим и хромато-масс-спектрометрическими методами. Эксп Клин Гастроэнтерология 2003; 4: 59-67.
  47. Осипов ГА, Федосова НФ, Лядов КВ. Количественный ^^микробиологический анализ по липидным маркерам в биологических жидкостях с использованием метода газовой хроматографии-масс-спектрометрии. Здравоохранение и медицинские технологии 2007; 5: 20-23.
  48. Osipov GA, Verkhovtseva NV.Study of human microecology by mass spectrometry of microbial markers. Beneficial Microbes. 2011; 2 (1): 63-78.
  49. Полеско И.В., Бутов Ю.С., Осипов ГА., Кабаева Т.И., Парфенов В.В., Деленян Н.В. Состав кожного сала, микроэкология кожи и кишечника у больных себорейным дерматитом и акне (исследование методом газовой хроматографии масс-спектрометрии). Рос. Журн. Кож.и Вен. Бол., 2007, № 2, с. 43-50.
  50. Оценка микроэкологического статуса человека методом хроматомасс-спектрометрии. Новая медицинская технология. № НЮ-40006. Зарегистрировано в Росздравнадзоре 17.08.2009.
  51. Осипов ГА, Новикова ВП. Методика масс-спектрометирии микробных маркеров как способ оценки пристеночной кишечной микробиоты при заболеваниях органов пищеварения. Учебно-методическое пособие. Санкт-Петербург; Изд-во «Левша». 2013, 95 стр.
  52. Goldfine H. The appearance, disappearance and reappearance of plasmalogens in evolution.Prog Lipid Res 2010; 49 (4): 493-8.
  53. Rezanka T, Kresinova Z, Kolouchova I, Sigler K. Lipidomic analysis of bacterial plasmalogens. Folia Microbiol 2012; 57: 463-472.
  54. Timmer MSM, Sauvageau J, Foster AJ, Ryan J, Lagutin K, Shaw O, et al. Discovery of lipids from B.longum subsp. infantis using whole cell MALDI Analysis. J Org Chem 2014; 79 (16): 7332-41.
  55. Шендеров Б.А. Функциональное питание, криогенные банки микробиоценозов и их роль в сохранении и восстановлении здоровья. Вестник восстановительной медицины 2003; № 31: 29-31.
  56. Олескин А.В., Шендеров Б.А. Биополитический подход к реабилитологии: потенциальная роль микробной нейрохимии. Обзор. Вестник восстановительной медицины 2013; № 1: 60-67.
  57. Шендеров Б.А. «ОМИК» - технологии и их значение в современной профилактической и восстановительной медицине. Вестник восстановительной медицины 2012; №3: 70-78.

Дополнительные файлы

Доп. файлы
Действие
1. JATS XML

© Безродный С.Л., Шендеров Б.А., 2015

Creative Commons License
Эта статья доступна по лицензии Creative Commons Attribution 4.0 International License.