Молекулярный отбор селекционного материала сахарной свеклы с генами устойчивости к биотическим стрессорам

Обложка

Цитировать

Полный текст

Открытый доступ Открытый доступ
Доступ закрыт Доступ предоставлен
Доступ закрыт Доступ платный или только для подписчиков

Аннотация

Представлены результаты молекулярно-генетических исследований селекционного материала гибридов сахарной свеклы отечественной и зарубежной селекции на наличие генов устойчивости к галловой нематоде, ризомании и мучнистой росе. Тестирование растений проведено с применением метода полимеразной цепной реакции. Гены R6m-1, Rz1 и Rz2, Pm были идентифицированы с помощью 5 одноцепочечных RAPD и 4 аллель-специфичных праймеров. В результате молекулярного скрининга сортообразцов культуры выявлено наличие данных генов устойчивости.

Полный текст

Доступ закрыт

Об авторах

А. А. Налбандян

Федеральное государственное бюджетное научное учреждение "Всероссийский научно-исследовательский институт сахарной свёклы имени А.Л. Мазлумова"

Автор, ответственный за переписку.
Email: arpnal@rambler.ru

кандидат биологических наук

Россия, 396030, Воронежская область, Рамонский район, п. ВНИИСС, д. 86

Т. П. Федулова

Федеральное государственное бюджетное научное учреждение "Всероссийский научно-исследовательский институт сахарной свёклы имени А.Л. Мазлумова"

Email: arpnal@rambler.ru

доктор биологических наук

Россия, 396030, Воронежская область, Рамонский район, п. ВНИИСС, д. 86

А. С. Хуссейн

Федеральное государственное бюджетное научное учреждение "Всероссийский научно-исследовательский институт сахарной свёклы имени А.Л. Мазлумова"

Email: arpnal@rambler.ru

кандидат биологических наук

Россия, 396030, Воронежская область, Рамонский район, п. ВНИИСС, д. 86

Список литературы

  1. Yu M.H. Root-Knot Nematode Develop-ment and RootGall Formation in Sugar Beet // Journal of Sugar Beet Research. – 1995. – V. 32. – №1. – P. 47-58.
  2. Bakooie M., Pourjam E., Mahmoudi S., Safaie N., Naderpour M. Development of an SNP Marker for Sugar Beet Resis-tance/Susceptible Genotyping to Root-Knot Nematode // J. Agr. Sci. Tech. – 2015. – Vol. 17. – P. 443-454.
  3. Gai D., Kleine M., Kifle S., Harloff H. Positional cloning of a gene for nematode resistance in sugar beet // Science. – 1997. – V. 275. – P. 832-834.
  4. Stevanato P., Trebbi D., Panella L., Richardson K., Broccanello C. Identification and Validation of a SNP Marker Linked to the Gene HsBvm-1 for Nematode Resistance in Sugar Beet // Plant Mol Biol Rep. – 2015.– V. 33. – P. 474-479.
  5. Klein M., Voss H., Gai D., Jung C. Evalution of nematode-resistance sugar beet (Beta vulgaris L.) lines by molecular analysis // Theor. Appl. Genet. – 1998. – V. 97. – P. 896-904.
  6. Weiland J., Yu M. A Cleaved Amplified Polimorphic Sequence (CAPS) Marker Associated with Root-Knot Nematode Resistance in Sugarbeet // Crop Sci. – 2003. – V. 43. – P. 1814-1818.
  7. Lewellen R., Schrandt J. Inheritance of Powdery Mildew Resistance in Sugar Beet Derived from Beta vulgaris subsp. maritima // Plant Disease. – 2001. – V.85. – № 6. – P. 627-631.
  8. Blanco A., Gadaleta A., Cenci A., Carluccio A., Abdelbacki A., Simeone R. Molekular mapping of the novel powdery mildew resistance gene Pm36 introgressed from Triticum turgidum var. dicoccoides in durum wheat // Theor Appl Genet. – 2008. – V. 117. – P. 135-142.
  9. Petersen S., Lyerly J., Worthihgton M., Parks W., Cowger C., Marshall D., Brown-Guedira G., Murphy J. Mapping of powdery mildew resistance gene Pm53 introgressed from Aegilops speltoides into soft red winter wheat // Theor Appl Genet. – 2015. – V. 128 (2). – P. 303-312.
  10. Janssen J., Nihlgard M., Kraft Th. Mapping of Resistance Genes to Powdery Mildew (Erysiphe betae) in Sugar beet // 1 joint IIRB-ASSBT Congress.2003. – USA. – P. 175-180.
  11. Grimmer M. K., Bean M. R., Asher M. J. C. Mapping of five resistance genes to sugar-beet powdery mildew using AFLP and anchored SNP markers // Theor. Appl. Genet. – 2007. – V.115. – P. 67-75.
  12. Tamada T. Susceptibility and resistance of Beta vulgaris subsp. maritima to foliar rub-inoculation with Beet necrotic yellow vein virus. // J. Gen Plant Pathology. – 2007. –V. 73. – P. 76-80.
  13. Lewellen R., Skoyen I., Erichsen A. Breeding sugar beet for resistance to rhizomania: evaluation of host-plant reaction and selections for and inheritance of resistance. // Proc. Of the 50th Winter Congress of the IIRB. – 1987. – P. 139-156.
  14. Capistano-Gossmann G., Ries D., Holtgrawe D., Minoche A., Kraft T., Frerichmann S., Soerensen T. Crop wild relative populations of Beta vulgaris allow direct mapping of agronomically important genes. // Nature Communication. – 2017. – V. 8. – P. 1-8. 15. Nouhi A., Amiri R., Hagh N., Saba Jalal, Mesbah M. Use of Molecular Marker for Assay Gene Dosage Resistant Gene to Rhizomania Disease (Rz1) in Sugar beet (Beta vulgaris L.). // Asian Journal of Biotechnology. – 2009. – V. 1. – P. 37-41.
  15. Litwinec A., Goska M., Kuzdowicz K., Lukanowski A., Skibowska B. Evaluation of rhizomania-resistance segregating sequences and overall genetic diversity pattern among selected accessions of Beta and Patellifolia. Potencial implications of breeding for genetic bottlenecks in terms of rhizomania resistance // Euphytica. – 2016. – V. 207. – P. 685-706.
  16. Hussein Fedulova Bogacheva A.S., Nalbandyan A.A., T.P., N.N. Efficient and nontoxic DNA isolation method for PCR analysis // Russian Agricultural Sciences. – 2014. – V. 40. – Issue 3. – Р. 177-178.
  17. Rogers S., Bendich A. Extraction of DNA from milligram amounts of fresh, herbarium and mummified plant tissues // Plant Molecular Biologi. – 1985. – V. 5. – P. 67- 69. 17. Amiri R., Mesbah M., Moghaddam M. A new RAPD marker for beet necrotic yellow vein virus resistance gene in Beta vulgaris. // Biologia Plantarum. – 2009. – V. 53 (1). – P. 112-119.

Дополнительные файлы

Доп. файлы
Действие
1. JATS XML
Скачать
2. Рис. 1. Электрофореграмма разделения ПЦР-продуктов с использованием праймера Nem06 F/R. Дорожки (образцы сахарной свеклы): 1 – Н7581, Швеция; 2 – БО32 4Х, Украина; 3 – Р1537, Россия; 4 – Z67-Z-тип, Германия; 5 – Poli, Болгария; 6 – 4HH25, США. М – маркер молекулярных масс (Сибэнзим), 100-3000 п.н., К – отрицательный контроль (ПЦР – смесь без ДНК).

Скачать (29KB)
Метаданные
3. Рис. 2. Электрофореграмма разделения ПЦР-продуктов с использованием праймера Pm36 F/R. Дорожки (образцы сахарной свеклы): 1 – Н7581, Швеция; 2 – БО32 4Х, Украина; 3 – Р1537, Россия; 4 – Z67-Z-тип, Германия; 5 – Poli, Болгария; 6 – 4HH25, США. М – маркер молекулярных масс (Сибэнзим), 100-3000 п.н. К -– отрицательный контроль (ПЦР – смесь без ДНК).

Скачать (31KB)
Метаданные
4. Рис. 3. Электрофореграмма разделения ПЦР-продуктов с использованием праймера АВ 6-15. Дорожки (образцы сахарной свеклы): 1 – Н7581, Швеция; 2 – БО32 4Х, Украина; 3 – Р1537, Россия; 4 – Z67-Z-тип, Германия; 5 – Poli, Болгария; 6 – 4HH25, США. М – маркер молекулярных масс (Сибэнзим), 100-3000 п.н.

Скачать (53KB)
Метаданные
5. Рис. 4. Электрофореграмма разделения ПЦР-продуктов с использованием праймера ОЗ-АN9. Дорожки (образцы сахарной свеклы): 1 – Н7581, Швеция; 2 – БО32 4Х, Украина; 3 – Р1537, Россия; 4 – Z67-Z-тип, Германия; 5 – Poli, Болгария; 6 – 4HH25, США. М – маркер молекулярных масс (Сибэнзим), 100-3000 п.н.

Скачать (36KB)
Метаданные

© Российская академия наук, 2019