ЦИРКУЛИРУЮЩИЕ НЕЙТРОФИЛЬНЫЕ ВНЕКЛЕТОЧНЫЕ ЛОВУШКИ У ПАЦИЕНТОВ С САХАРНЫМ ДИАБЕТОМ 2-ГО ТИПА С ГНОЙНО-НЕКРОТИЧЕСКИМИ ОСЛОЖНЕНИЯМИ



Цитировать

Полный текст

Открытый доступ Открытый доступ
Доступ закрыт Доступ предоставлен
Доступ закрыт Доступ платный или только для подписчиков

Аннотация

Цель исследования. Известно участие нейтрофильных внеклеточных ловушек (НВЛ) во многих патологических процессах, что указывает на их содержание в крови как на важную характеристику состояния организма. При исследовании НВЛ их концентрацию в крови обычно оценивают косвенным путем, что имеет ряд недостатков. Нашей целью было определять их количество как целостных образований напрямую, используя мазки крови как наиболее подходящий для клиники вариант, и провести для выяснения целесообразности этого анализа измерение содержания НВЛ в крови у пациентов с сахарным диабетом 2-го типа (СД2) с гнойно-некротическими осложнениями. Материалы и методы. НВЛ оценивали подсчетом в стандартизированных мазках крови, окрашенных по Романовскому. Результаты. Средний уровень НВЛ в крови пациентов был выше, чем у здоровых лиц. С ростом содержания в крови гликированного гемоглобина (HbA1c) возрастала концентрация НВЛ в группе здоровых добровольцев и у пациентов с высоким уровнем НВЛ. У остальных пациентов концентрация НВЛ с ростом HbA1c снижалась. Высокое содержание НВЛ и прямая корреляция этого показателя с HbA1c наблюдались у пациентов с флегмоной, обширной инфицированной раной, гангреной голени, гнойным медиастенитом. У остальной части пациентов преобладали инфицированные раны, абсцессы, гангрена пальца. Заключение. Данная пилотная работа показала целесообразность измерения (с помощью мазков крови) концентрации циркулирующих в крови НВЛ как клинического показателя для дополнительной оценки тяжести состояния, прогноза длительности заживления послеоперационных ран и вероятности осложнений в виде тромбозов при СД2.

Полный текст

Доступ закрыт

Об авторах

Д И Максимов

ФГБУ «Федеральный научно-клинический центр физико-химической медицины Федерального медико-биологического агентства»

Ё Ю Басырева

ФГБУ «Федеральный научно-клинический центр физико-химической медицины Федерального медико-биологического агентства»

А А Гусев

ФГБУ «Федеральный научно-клинический центр физико-химической медицины Федерального медико-биологического агентства»

Т В Вахрушева

ФГБУ «Федеральный научно-клинический центр физико-химической медицины Федерального медико-биологического агентства»

А В Яскевич

ФГБУ «Федеральный научно-клинический центр физико-химической медицины Федерального медико-биологического агентства»

С А Гусев

ФГБУ «Федеральный научно-клинический центр физико-химической медицины Федерального медико-биологического агентства»

ЕМ M Островский

ФГБУ «Федеральный научно-клинический центр физико-химической медицины Федерального медико-биологического агентства»

О М Панасенко

ФГБУ «Федеральный научно-клинический центр физико-химической медицины Федерального медико-биологического агентства»

В И Сергиенко

ФГБУ «Федеральный научно-клинический центр физико-химической медицины Федерального медико-биологического агентства»

Список литературы

  1. Brinkmann V., Reichard U, Goosmann C, Fauler B, Uhlemann Y, Weiss D.S., Weinrauch Y., Zychlinsky A. Neutrophil extracellular traps kill bacteria // Science. 2004. Vol. 303, No 5663. P. 1532-1535.
  2. Brinkmann V, Zychlinsky A. Neutrophil extracellular traps: is immunity the second function of chromatin // J. Cell Biol. 2012. Vol. 198, No 5. P. 773-783.
  3. Marin-Esteban V., Turbica I., Dufour G., Semiramoth N, Gleizes A, Gorges R. Afa/Dr diffusely adhering Escherichia coli strain C1845 induces neutrophil extracellular traps that kill bacteria and damage human enterocyte-like cells // Infect. Immun. 2012. Vol. 80, No 5. P. 1891-1899.
  4. Delgado-Rizo V., Martnnez-Guzman M.A., Idguez-Gutierrez L, Garcna-Orozco A., Alvarado-Navarro A., Fafutis-Morris M. Neutrophil extracellular traps and its implications in inflammation: an overview // Front. Immunol. 2017. Vol. 8. P. 81.
  5. Simon D., Simon H.U., Yousefi S. Extracellular DNA traps in allergic, infectious, and autoimmune diseases // Allergy. 2013. Vol. 68, No 4. P. 409-416.
  6. Perez-Sanchez C, Ruiz-Limyn P, Aguirre M.A., Jimenez-Gymez Y, Arias-de la Rosa I., Abalos-Aguilera M.C., Rodriguez-Ariza A, Castro-Villegas M.C., Ortega-Castro R., Segui P., Martinez C., Gonzalez-Conejero R., Rodrnguez-Lypez S., Gonzalez-Reyes J.A., Villalba J.M., Collantes-Estevez E., Escudero A., Barbarroja N., Lypez-Pedrera C. Diagnostic potential of NETosis-derived products for disease activity, atherosclerosis and therapeutic effectiveness in Rheumatoid Arthritis patients // J. Autoimmun. 2017. Vol. 82. P. 31-40.
  7. Silk E., Zhao H., Weng H., Ma D. The role of extracellular histone in organ injury // Cell Death Dis. 2017. Vol. 8. Р. 2812.
  8. Fuchs T.A., Brill A, Duerschmied D., Schaizberg D., Monestier M., Myers D.D.Jr., Wrobleski S.K., Wakefield T.W., Hartwig J.H., Wagner D.D. Extracellular DNA traps promote thrombosis // Proc. Natl. Acad. Sci. U.S.A. 2010. Vol. 107, No 36. P. 15880-15885.
  9. Lizcano A., Secundino I., Dyhrmann S., Corriden R., Rohena C., Diaz S., Ghosh P., Deng L., Nizet V., Varki A. Erythrocyte sialoglycoproteins engage Siglec-9 on neutrophils to suppress activation // Blood. 2017. Vol. 129, No 23. P. 3100-3110.
  10. Hamaguchi S., Hirose T., Akeda Y, Matsumoto N., Irisawa T, Seki M, Hosotsubo H., Tasaki O., Oishi K, Shimazu T, Tomono K. Identification of neutrophil extracellular traps in the blood of patients with systemic inflammatory response syndrome // J. Int. Med. Res. 2013. Vol. 41, No 1. P. 162-168.
  11. Beiter T, Fragasso A, Hudemann J., Schild M, Steinacker J., Mooren F.C., Niess A.M. Neutrophils release extracellular DNA traps in response to exercise // J. Appl. Physiol. 2014. Vol. 117, No 3. P. 325-333.
  12. Hirose T, Hamaguchi S, Matsumoto N, Irisawa T, Seki M, Tasaki O, Hosotsubo H, Yamamoto N, Yamamoto K, Akeda Y, Oishi K, Tomono K, Shimazu T. Presence of Neutrophil Extracellular Traps and Citrullinated Histone H3 in the Bloodstream of Critically ill Patients // PLoS One. 2014. Vol. 9, No 11. e111755.
  13. Долгушин И.И., Андреева Ю.С., Савочкина А.Ю. Нейтрофильные внеклеточные ловушки и методы оценки функционального статуса нейтрофилов. М.: Изд-во РАМН, 2009. 203 с. [Dolgushin I.I., Andreeva Yu.S., Savochkina A.Yu. Neutrophil extracellular traps and methods to assess the functional state of neutrophils. Moscow: Izdatel’stvo RAMS, 2009. 203 p.]
  14. Basyreva L.Y, Brodsky I.B., Gusev A.A., Zhapparova O.N., Mikhalchik E.V, Gusev S.A., Shor D.B., Dahan S, Blank M, Shoenfeld Y. The effect of intravenous immunoglobulin (IVIG) on ex vivo activation of human leukocytes // Hum. Antibodies. 2016. Vol. 24, No 3-4. P. 39-44.
  15. Wellen K.E., Hotamisligil G.S. Inflammation, stress, and diabetes // J. Clin. Invest. 2005. Vol. 115, No 5. P. 1115-1119.
  16. Fernandez-Real J.M., Pickup J.C. Innate immunity, insulin resistance and type 2 diabetes // Diabetologia. 2012. Vol. 55, No 2. P. 273-278.
  17. Villanueva E, Yalavarthi S, Berthier C.C., Hodgin J.B., Khandpur R, Lin A.M., Rubin C.J., Zhao W., Olsen S.H., Klinker M, Shealy D, Denny M.F., Plumas J., Chaperot L, Kretzler M, Bruce A.T., Kaplan M.J. Netting neutrophils induce endothelial damage, infiltrate tissues, and expose immunostimulatory molecules in systemic lupus erythematosus // J. Immunol. 2011. Vol. 187, No 1. P. 538-552.

Дополнительные файлы

Доп. файлы
Действие
1. JATS XML
Скачать

© Максимов Д.И., Басырева Ё.Ю., Гусев А.А., Вахрушева Т.В., Яскевич А.В., Гусев С.А., Островский Е.M., Панасенко О.М., Сергиенко В.И., 2018

Creative Commons License
Эта статья доступна по лицензии Creative Commons Attribution 4.0 International License.
СМИ зарегистрировано Федеральной службой по надзору в сфере связи, информационных технологий и массовых коммуникаций (Роскомнадзор).
Регистрационный номер и дата принятия решения о регистрации СМИ: серия ПИ № ФС 77 - 74760 от 29.12.2018 г.