Анализ методик моделирования глубоких дефектов кожи и суставного хряща на лабораторных животных в эксперименте

Обложка


Цитировать

Полный текст

Открытый доступ Открытый доступ
Доступ закрыт Доступ предоставлен
Доступ закрыт Доступ платный или только для подписчиков

Аннотация

Создание и внедрение новых способов и средств местного лечения ран происходит поэтапно, однако на каждом этапе возникает ряд сложностей. В статье рассматривается одна из основных проблем, возникающих на доклиническом этапе, при моделировании глубоких дефектов кожи и суставного хряща, — сложность их точного послойного воспроизведения. Рассмотрены различные факторы, влияющие на успех такого моделирования, — вид животного, размер дефекта и его расположение.

Полный текст

Доступ закрыт

Об авторах

Даулет Джумабаевич Избулатов

Военный инновационный технополис «ЭРА»

Email: izbulatov98@mail.ru

старший оператор 3-й научной роты

Россия, Анапа

Наталья Валерьевна Варламова

Военный инновационный технополис «ЭРА»

Email: varlamova@tpu.ru
ORCID iD: 0000-0002-6100-2427
SPIN-код: 9139-6019

д-р техн. наук, старший научный сотрудник

Россия, Анапа

Владимир Евгеньевич Михайлов

Военный инновационный технополис «ЭРА»

Email: mikhaylov.ve@yandex.ru

старший оператор 3-й научной роты

Россия, Анапа

Илья Владимирович Маркин

Военный инновационный технополис «ЭРА»

Email: ilya.markin.92@bk.ru
ORCID iD: 0000-0002-9334-910X
SPIN-код: 6021-7645

канд. техн. наук, старший научный сотрудник

Россия, Анапа

Артур Леонидович Эрдниев

Военный инновационный технополис «ЭРА»

Email: arti-erd@mail.ru

старший оператор 3-й научной роты

Россия, Анапа

Петр Кириллович Потапов

Военный инновационный технополис «ЭРА»

Email: forwardspb@mail.ru
SPIN-код: 5979-4490

канд. мед. наук, заместитель начальника отдела медико-биологических исследований

Россия, Анапа

Юрий Аркадьевич Уткин

Уральский научно-исследовательский институт композиционных материалов

Автор, ответственный за переписку.
Email: uautkin@yandex.ru

заместитель генерального директора по медицинскому направлению

Россия, Пермь

Список литературы

  1. Довнар Р.И. Моделирование кожных ран в эксперименте // Новости хирургии. 2021. Т. 29, № 4. С. 480–489. doi: 10.18484/2305-0047.2021.4.480
  2. Щелкунова Е.И., Воропаева А.А., Русова Т.В., Штопис И.С. Применение экспериментального моделирования при изучении патогенеза остеоартроза (обзор литературы) // Сибирский научный медицинский журнал. 2019. Т. 39, № 2. С. 27–39. doi: 10.15372/SSMJ20190203
  3. Миронов А.Н., Бунатян Н.Д., Васильев А.Н. Руководство по проведению доклинических исследований лекарственных средств. Часть первая. Москва: Гриф и К, 2012. 944 с.
  4. Гуменюк С.Е., Гайворонская Т.В., Гуменюк А.С. и др. Моделирование раневого процесса в экспериментальной хирургии // Кубанский научный медицинский вестник. 2019. Т. 26, № 2. С. 18–25. doi: 10.25207/1608-6228-2019-26-2-18-25
  5. Farmoudeh A., Akbari J., Saeedi M. et al. Methylene blue-loaded niosome: preparation, physicochemical characterization, and in vivo wound healing assessment // Drug. Deliv. Transl. Res. 2020. Vol. 10, No. 5. P. 1428–1441. doi: 10.1007/s13346-020-00715-6
  6. Ren Y., Yu X., Li Z. et al. Fabrication of pH-responsive TA-keratin bio-composited hydrogels encapsulated with photoluminescent GO quantum dots for improved bacterial inhibition and healing efficacy in wound care management: In vivo wound evaluations // J. Photochem. Photobiol. B. 2020. Vol. 202. P. 111676. doi: 10.1016/j.jphotobiol.2019.111676
  7. Чекмарева И.А., Легонькова О.А., Коротаева А.И. и др. Изучение влияния соединений церия на послеожоговый рубец в эксперименте in vivo методом трансмиссионной электронной микроскопии // Биотехнология. 2020. Т. 36, № 4. С. 99–105. doi: 10.21519/0234-2758-2020-36-4-99-105
  8. Ложкомоев А.С., Кирилова Н.В., Бакина О.В. Новый перевязочный материал на основе полимерных микроволокон с оксигидроксидом алюминия: свойства и механизм ранозаживляющего действия // Раны и раневые инфекции. Журнал имени проф. Б.М. Костючёнка. 2020. Т. 7, № 1. С. 46–57. doi: 10.25199/2408-9613-2020-7-1-46-57
  9. Sim P., Strudwick X.L., Song YM et al. Influence of acidic pH on wound healing in vivo: A novel perspective for wound treatment // International journal of molecular sciences. 2022. Vol. 23, No. 21. P. 13655. doi: 10.3390/ijms232113655
  10. Дуданов И.П., Виноградов В.В., Криштоп В.В., Никонорова В.Г. Сравнительная характеристика ранозаживляющего эффекта ксерогеля на основе нейтрального гидрозоля диоксида титана для терапии ожоговых ран // Исследования и практика в медицине. 2021. Т. 8, № 1. С. 30–39. doi: 10.17709/2409-2231-2021-8-1-3
  11. Wei Q., Wang Y., Ma K. et al. Extracellular vesicles from human umbilical cord mesenchymal stem cells facilitate diabetic wound healing through MiR-17-5p-mediated enhancement of angiogenesis // Stem Cell Rev. Rep. 2022. Vol. 18, No. 3. Р. 1025–1040. doi: 10.1007/s12015-021-10176-0
  12. Борхунова Е.Н., Надеждин Д.В. Особенности заживления раневого дефекта кожи под влиянием аутологичных клеточных продуктов мультипотентных мезенхимных стромальных клеток и стромально-васкулярной фракции // Ветеринария Кубани. 2021. № 1. С. 30–32. doi: 10.33861/2071-8020-2021-1-30-32
  13. Teng L., Maqsood M., Zhu M. et al. Exosomes derived from human umbilical cord mesenchymal stem cells accelerate diabetic wound healing via promoting M2 macrophage polarization, angiogenesis, and collagen deposition // Int. J. Mol. Sci. 2022. Vol. 23, No. 18. P. 10421. doi: 10.3390/ijms231810421
  14. Лебедева С.А., Галенко-Ярошевский Мл П.А., Мельник С.И. и др. Ранозаживляющее действие металлоорганического комплекса цинка на модели плоскостной кожной раны у крыс // Научные результаты биомедицинских исследований. 2022. Т. 8, № 1. С. 71–81. doi: 10.18413/2658-6533-2022-8-1-0-5
  15. Собин Ф.В., Пулина Н.А., Чащина С.В. Ранозаживляющая активность экспериментальных гелей на основе гетариламидов 4-R-2-гидрокси-4-оксо-2-бутеновых кислот // Медицинский вестник Башкортостана. 2022. Т. 17, № 5(101). С. 70–73.
  16. Олимов М.А., Шарофова М.У., Ходжаева Ф.М. и др. In vivo исследование ранозаживляющей активности полисахаридного геля с инкапсулированным облепиховым маслом (Hippophae rhamnoides) // Вестник Авиценны. 2023. Т. 25, № 1. С. 84–93. doi: 10.25005/2074-0581-2023-25-1-84-93
  17. Айрапетов Г.А., Загородний Н.В., Воротников А.А. Экспериментальный метод замещения костно-хрящевых дефектов суставов (ранние результаты) // Медицинский вестник Юга России. 2019. № 2. С. 71–76. doi: 10.21886/2219-8075-2019-10-2-71-76
  18. Кабалык М.А. Молекулярные механизмы регенерации хряща и субхондральной кости при внутрисуставном введении хондроитина сульфата натрия на экспериментальной модели остеоартрита // Opinion Leader. 2019. № 3(21). С. 76–84.
  19. Калюжная Л.И., Хоминец В.В., Чеботарев С.В. и др. Применение биоматериала из пуповины человека для восстановления повреждений суставного хряща // Профилактическая и клиническая медицина. 2019. № 4(73). С. 45–52.
  20. Li Y., Xu Y., Liu Y. et al. Decellularized cartilage matrix scaffolds with laser-machined micropores for cartilage regeneration and articular cartilage repair // Mater. Sci. Eng. C Mater. Biol. Appl. 2019. Vol. 105. P. 110139. doi: 10.1016/j.msec.2019.110139
  21. Boopalan R., Varghese V.D., Sathishkumar S, et al. Similar regeneration of articular cartilage defects with autologous and allogenic chondrocytes in a rabbit model // Indian J. Med. Res. 2019. Vol. 149, No. 5. P. 650–655. doi: 10.4103/ijmr.ijmr_1233_17
  22. Котельников Г.П., Долгушкин Д.А., Лазарев В.А., Зельтер П.Н. Применение компьютерной томографии для оценки плотности тканевого регенерата после хондропластики в эксперименте у кроликов // Вестник медицинского института «Реавиз»: реабилитация, врач и здоровье. 2020. № 5(47). С. 28–35. doi: 10.20340/vmi-rvz.2020.5.2
  23. Лаврик А.А., Али С.Г., Москалев В.Б. и др. Регенеративные свойства пептидного препарата «УльтраСелл-Дог» при травмах коленного сустава (экспериментальное исследование) // Ветеринария, зоотехния и биотехнология. 2020. № 5. С. 6–19. doi: 10.26155/vet.zoo.bio.202005001
  24. Попков А.В., Попков Д.А., Кобызев А.Е. и др. Положительный опыт полнослойного замещения дефекта суставного хряща при использовании деградируемого имплантата с биоактивной поверхностью в сочетании с обогащенной тромбоцитами плазмой крови (экспериментальное исследование) // Гений ортопедии. 2020. Т. 26, № 3. С. 392–397. doi: 10.18019/1028-4427-2020-26-3-392-397
  25. Белова С.В., Зубавленко Р.А., Ульянов В.Ю. Реорганизация скелетных соединительных тканей у животных с моделью посттравматического остеоартроза // Политравма. 2021. № 3. С. 75–81. doi: 10.24412/1819-1495-2021-3-75-81
  26. Гладкова Е.В. Хирургические подходы к формированию экспериментального посттравматического остеоартроза коленных суставов и его структурно-метаболические паттерны // Вестник новых медицинских технологий. 2021. Т. 28, № 1. С. 35–40. doi: 10.24412/1609-2163-2021-1-35-40
  27. Пресняков Е.В., Рочев Е.С., Церцеил В.В. и др. Индукция хондрогенеза in vivo под влиянием гидрогелевого ген-активированного материала на основе гиалуроновой кислоты и плазмидной ДНК с геном VEGF // Гены и клетки. 2021. Т. 16, № 2. С. 47–53. doi: 10.23868/202107005
  28. Луканина С.Н., Сахаров А.В., Просенко О.И. Морфофункциональная характеристика посттравматического регенерата суставного хряща крыс в норме и при заполнении дефекта матрицей тканеинженерной конструкции на основе хитозана // Материалы конференции «Бородинские чтения». Новосибирск, 22 марта 2022 г. Новосибирск, 2022. С. 301–306.
  29. Taufik S.A., Dirja B.T., Utomo D.N., et al. Double membrane platelet-rich fibrin (PRF)-Synovium succeeds in regenerating cartilage defect at the knee: An experimental study on rabbit // Heliyon. 2023. Vol. 9, No. 2. P. e13139. doi: 10.1016/j.heliyon.2023.e13139
  30. Беляков В.И., Инюшкина Е.М., Громова Д.С. и др. Лабораторные крысы: содержание, разведение и биоэтические аспекты использования в экспериментах по физиологии поведения: учебное пособие. Самара: Издательство Самарского университета, 2021. 96 с.

Дополнительные файлы

Доп. файлы
Действие
1. JATS XML
Скачать
2. Рис. 1. Макроскопическая характеристика дефектов кожного покрова: а — нанесение кожной раны крысе; b — модель кожной раны у крысы после операции; с — кожная рана, обработанная приготовленным препаратом, в конце 2-х суток

Скачать (50KB)
Метаданные
3. Рис. 2. Макроскопическая характеристика дефектов кожного покрова: а — модель кожной раны у мышей с диабетом; b — модель раны у гладкошерстных морских свинок; c — полнослойная спинная рана у крыс с диабетом; d — плоскостная рана у крыс

Скачать (65KB)
Метаданные
4. Рис. 3. Дефекты поверхности сустава: а — полнослойный дефект нагружаемой поверхности коленного сустава овцы [17]; b — дефект правого коленного сустава белого кролика [21]; с — компьютерная томограмма интактного коленного сустава кролика; d — компьютерная томограмма сустава после выполнения хондропластики (хорошо визуализируются 2 круглых дефекта на надколенниковой поверхности бедренной кости) [22]

Скачать (89KB)
Метаданные
5. Рис. 4. Дефекты поверхности сустава: а – область хирургического вмешательства после формирования полнослойного дырчатого дефекта на пателлярной поверхности мыщелка бедренной кости; b — процесс формирования хрящевых дефектов; с — процесс формирования хрящевых микропереломов

Скачать (56KB)
Метаданные

© Эко-Вектор, 2023

Creative Commons License
Эта статья доступна по лицензии Creative Commons Attribution-NonCommercial-NoDerivatives 4.0 International License.
СМИ зарегистрировано Федеральной службой по надзору в сфере связи, информационных технологий и массовых коммуникаций (Роскомнадзор).
Регистрационный номер и дата принятия решения о регистрации СМИ: серия ПИ № ФС 77 - 74760 от 29.12.2018 г.


Данный сайт использует cookie-файлы

Продолжая использовать наш сайт, вы даете согласие на обработку файлов cookie, которые обеспечивают правильную работу сайта.

О куки-файлах