НАКОПЛЕНИЕ БЕЛКОВ, СОДЕРЖАЩИХ ПОЛИГЛУТАМИННУЮ ПОСЛЕДОВАТЕЛЬНОСТЬ, В НЕЙРОНАХ КРАСНОГО ЯДРА
- Авторы: Григорьев ИП1, Сырцова МА1, Сухорукова ЕГ1, Кирик ОВ1, Алексеева ОС1
-
Учреждения:
- Институт экспериментальной медицины
- Выпуск: Том 17, № 2 (2017)
- Страницы: 76-79
- Раздел: Статьи
- Статья опубликована: 15.06.2017
- URL: https://journals.eco-vector.com/MAJ/article/view/9432
- DOI: https://doi.org/10.17816/MAJ17276-79
- ID: 9432
Цитировать
Полный текст
![Открытый доступ](https://journals.eco-vector.com/lib/pkp/templates/images/icons/text_open.png)
![Доступ закрыт](https://journals.eco-vector.com/lib/pkp/templates/images/icons/text_unlock.png)
![Доступ закрыт](https://journals.eco-vector.com/lib/pkp/templates/images/icons/text_lock.png)
Аннотация
Одним из признаков развивающегося нейродегенеративного процесса является внутриядерная концентрация белков, имеющих в составе полипептидной цепи полиглутаминную последовательность. Целью настоящего исследования было выявление таких белков и определение характера их распределения в нейронах красного ядра у людей, не страдавших нейродегенеративными заболеваниями. В работе были использованы фрагменты среднего мозга человека (n=7). Полиглутаминную последовательность (poly-Q) выявляли иммуноцитохимически с помощью моноклональных мышиных антител (клон 1С2). Анализ полученных препаратов показал наличие слабой диффузной реакции структур клеточного ядра в большинстве клеток (как нервных, так и глиальных) красного ядра. При этом в крупных нейронах в двух из семи исследованных случаев реакция внутриядерных структур была диффузной, а в остальных пяти случаях в ядрах крупных нейронов определялись нечетко контурирующиеся иммунопозитивные скопления, которые всегда располагались вне ядрышка. Полученные данные свидетельствуют о том, что в ядрах нервных и глиальных клеток красного ядра может происходить накопление характерных для патологических структур полиглутамин-содержащих белков, не ассоциированное с нейродегенеративным процессом.
Ключевые слова
Полный текст
![Доступ закрыт](https://journals.eco-vector.com/lib/pkp/templates/images/icons/text_lock.png)
Об авторах
И П Григорьев
Институт экспериментальной медицины
М А Сырцова
Институт экспериментальной медицины
Е Г Сухорукова
Институт экспериментальной медицины
О В Кирик
Институт экспериментальной медицины
О С Алексеева
Институт экспериментальной медицины
Список литературы
- Habas C., Guillevin R., Abanou A. In vivo structural and functional imaging of the human rubral and inferior olivary nuclei: a mini-review // Cerebellum. 2010. Vol. 9, No 2. P. 167-173.
- Dwork A.J., Schon E.A., Herbert. J. Nonidentical distribution of transferrin and ferric iron in human brain // Neurosci. 1988. Vol. 27, No 1. P. 333-345.
- Uchihara T., Fujigasaki H., Koyano S. Yagishita S., Iwabuchi K. Non-expanded polyglutamine proteins in intranuclear inclusions of hereditary ataxias-triple-labeling immunofluorescence study // Acta Neuropathol. 2001. Vol. 102, No 2. P. 149-152.
- Blum E.S., Schwendeman A.R., Shaham S. PolyQ disease: misfiring of a developmental cell death program? // Trends Cell Biol. 2013. Vol. 23. P. 168-174.
- Григорьев И.П., Коржевский Д.Э. Тельца Маринеско - внутриядерные включения дофаминергических нейронов // Мед. акад. журн. 2015. Т. 15, № 2. С. 28-34 [Grigorev I.P., Korzhevskii D.E. Marinesco bodies: intranuclear inclusion-bodies of dopaminergic neurons, Med. Acad. Journal. 2015. Vol. 15. No 2. pp. 28-34].
- Korzhevskii D.E., Sukhorukova E.G., Gilerovich E.G., Petrova E.S., Kirik O.V., Grigor`ev I.P. Advantages and disadvantages of zinc-ethanol-formaldehyde as a fixature for immunocytochemical studies and confocal laser microscopy // Neurosci. Behav. Physiol. 2014. Vol. 44, No 5. P. 542-545.
- Schaefer M.H., Wanker E.E., Andrade-Navarro M.A. Evolution and function of CAG/polyglutamine repeats in protein-protein interaction networks // Nucleic Acids Res. 2012. Vol. 40, No 10. P. 4273-4287.
- Freiman R.N., Tjian R. Neurodegeneration. A glutamine-rich trail leads to transcription factors // Science. 2002. Vol. 296, No 5576. P. 2149-2150.
- Cattaneo E., Zuccato C., Tartari M. Normal huntingtin function: an alternative approach to Huntington's disease // Nat. Rev. Neurosci. 2005. Vol. 6, No 12. Р. 919-930.
- Rigamonti D., Sipione S., Goffredo D., Zuccato C., Fossale E., Cattaneo E. Huntingtin's neuroprotective activity occurs via inhibition of procaspase-9 processing // J. Biol. Chem. 2001. Vol. 276. No 18. Р. 14545-14548.
- Korzhevskii D.E., Grigor`ev I.P., Kirik O.V., Alekseeva O.S. Neuroglobin distribution in the rat cerebellar Purkinje cells // J. Evol. Biochem. Physiol. 2015. Vol. 51, No 6. P. 517-519.
- Kirik O.V., Grigorev I.P., Alekseeva O.S., Korzhevskii D.E. Three-Dimensional Organization of the Cytoplasmic Neuroglobin-Immunopositive Structures in the Rat Medulla Oblongata Neurons // Biochemistry (Moscow), Supplement Series A: Membrane and Cell Biology. 2016. Vol. 10, No 4. P. 333-337.
Дополнительные файлы
![](/img/style/loading.gif)