REGENERATIVE HISTION OF GRANULATION TISSUE

Full Text

Оптимизация лечения раневых процессов различной этиологии и заживление ран кожи представляют собой актуальные задачи современной медицины. В настоящее время акцент делается на изучение методов повышения эффективности ранозаживляющих процессов кожи и прилегающих тканевых структур. В настоящее время на кафедре гистологии с курсом эмбриологии сформулированы и изучены следующие фазы регенерации тканей: фаза активации и пролиферации камбиальных источников развития, фаза миграции и дифференцировки тканевых компонентов, фаза адаптации тканевых структур. Строгая последовательность процессов регенерации носит посредственный характер - течение различных процессов может накладываться друг на друга, возможно одновременное протекание. Образование грануляционной ткани регистрируется вфазу миграции идифференцировки тканевых элементов. Грануляционная ткань - один из обязательных компонентов, участвующих в заживлении ран. Это особый вид соединительной ткани, который, как правило, возникает между некротизированной и функционирующей тканью на 5-е, 6-е сутки ввиду пролиферативной и синтетической деятельности фибробластов и роста новообразованных сосудов [1]. В ее структуре выделяют 6 последовательно расположенных слоев: лейкоцитарно-некротический слой, слой сосудистый петель, слой вертикальных сосудов, созревающий слой, слой горизонтальных фибробластов и рубцовый слой. Грануляционная ткань схожа клеточно-дифферонным составом с рыхлой соединительной тканью, помимо схожих, выделяют миофибробластический, фиброкластический и миоэпителиоцитный диффероны. Роль грануляционной ткани в заживлении ран состоит в процессах субституции и секвестрации раневого дефекта [2]. Цель: исследование клеточно-дифферонного состава регенерационного гистиона грануляционной ткани при заживлении кожно-мышечной раны. Задачи: Анализ полутонких срезов на светооптическом уровне. Соотнесение экспериментального и литературного материала, с целью точного обозначения роли грануляционной ткани в репаративной регенерации. Материалы и методы. Экспериментальным материалом послужили: полутонкие срезы, полученные с использованием ультрамикротома Reichert Ultracut R (Reichert- Jung GmbH, Heidelberg, Germany) толщиной 1 µm и окрашенные толуидиновым синим, кожа спины крысы 6-е сутки после ранения, которые были изучены с помощью светового микроскопа Zeiss Imager.A2 с камерой Axiocam 305 color, программное обеспечение Zen 2.3; гистологические препараты срезов кожи на 6-е сутки после нанесения травмы в кожную складку спины крысы, окрашенные гематоксилином и эозином. Результаты. Расположение клеток в грануляционной ткани не имеет упорядоченной структуры, в составе фиброкластический, ткани выявлены следующие клеточные диффероны: миофибробластический, миоэпителиоцитный, миоэпителиоцитный, фибробластический, макрофагальный, плазмоцитарный, дифферон тучных клеток, перицитарный, дифферон адвентициальных клеток. Основным признаком грануляционной ткани является наличие первых 3-х дифферонов. Миофибробласты являются результатом дифференцировки фибробластов при механических напряжениях, что доказывает одно из положений Николая Григорьевича Хлопина о возможной дивергенции тканевых элементов в процессе регенерации. В ультраструктуре миофибробластов выделяют мощный сократительный аппарат, который обуславливается наличием α-гладкомышечного актина. Благодаря сократимости межклеточного матрикса происходит постепенное уменьшение площади раны. После того как рана закрывается миофибробласты погибают путем апоптоза. Преобладание данного дифферона наблюдается на 11-е, 12-е сутки. Фиброкластический дифферон -это совокупность специализированных для фагоцитоза форм фибробластов, фагоцитарная способность которых обусловлена наличием развитого лизосомального аппарата. Роль этих клеток состоит в резорбции раны. Они принимают участие в первой фазе регенерации, выделяя цитокины, которые ингибируют дифференцировку моноцитов, T- и B-лимфоцитов, а также активируют миграцию гранулоцитов. Миоэпителиоциты имели овальное ядро и были группированы таким образом, что имели сходство с межклеточной конфигурацией клеток гладкой мышечной ткани. Прикреплялись к базальной мембране, тем самым формируя развитый сократительный аппарат, который играет важную роль в стягивании поврежденного участка. Макрофаги представляют собой популяцию гетерогенных клеток, при микроскопии наблюдались произвольная форма, развитый лизосомальный аппарат (множество эндоцитозных везикул, лизосом двух типов). Наблюдали ядра эллипсовидной формы. Роль макрофагов в заживлении раны сводится к наличию у данных клеток рецепторов плазмолеммы, так называемых иммуноглобулиновых рецепторов, которые участвуют секретируют совокупность биологически активных веществ. вформировании иммунных реакций иВ грануляционной ткани происходит активный ангиогенез, в котором принимали участие элементы рыхлой соединительной ткани. Перицитам характерна вытянутая форма, овальная форма ядра, также встречалась лопастная форма ядра, которое локализуется дистальнее по отношению к просвету кровеносного сосуда. Они принимают участие в формировании гистогематических барьеров, обуславливая создание базальных мембран. Также регулируют пролиферативную активность эндотелиальных клеток. Эндотелиоциты выделяют как популяцию гетерогенных клеток, отличающихся не только морфологией, но и метаболической активностью клеток. Гетерогенность наблюдалась даже в кровеносных сосудах одного органа. На морфологию данных клеток влияет совокупность факторов, важнейшими из которых принято выделять величину внутрисосудистого давления, скорость крови в сосуде. Роль эндотелиальных клеток сосудов состоит в обеспечении вазодилатации и вазоконстрикции, а также регулировании факторов плазмы крови, соответственно они принимают участие в реакциях гемостаза. Основной функцией является образование новых сосудов - ангиогенез. Адвентициальные клетки представляют собой малодифференцированные клетки, которые сопровождают кровеносные сосуды по их ходу. Наблюдали овальное ядро, вытянутую, веретенообразную форму клеток, цитоплазма окрашена слабобазофильно. Играют роль патентного запаса для дифференцировки в фибробласты и миофибробласты в зависимости от условий. Тканевые базофилы (тучные клетки) принимают участие во всех фазах раневого процесса, располагаясь ближе к микроциркуляторным сосудам. Форма гетероморфна, не часто имеют небольшие отростки, которые участвуют в амебовидных движениях тучных клеток. В цитоплазме клетки выделяют множество гранул, отличающихся метахромазией. Их роль состоит в регуляции гомеостаза грануляционной ткани и гемостаза. В субэпителиальном слое максимальная концентрация тучных клеток наблюдается в период образования молодой грануляционной ткани, как правило, на 6-е, 7-е сутки заживления раны. На данном этапе тучные клетки дегранулируются, выделяя медиаторы воспаления. Процесс дегрануляции наблюдается, когда грануляционная ткань претерпевает пролиферативную фазу. Плазматические клетки -дифференцированная форма B-лимфоцитов, синтезирующая исекретирующая иммуноглобулины в ответ на присутствие в организме антигена. Наблюдали округлую или овальную форму, базофильную цитоплазму. Отличительной особенностью выделяем гипертрофированный комплекс Гольджи, который привносит оксифилию в цитоплазму плазмоцита. Базофилия плазмоцита обусловлена хорошо развитым шероховатым эндоплазматическим ретикулумом. По мере созревания грануляционной ткани формируется регенерационный гистион, морфологическая оценка которого имеет роль в диагностике и прогнозе заживления раны. Он образуется посредством сложных межклеточных взаимодействий, влияния факторов роста, таких как цитокины, стимулирующих пролиферацию и дифференцировку клеток. Выводы. Установлено, что этап новообразования грануляционной ткани начинается на 5-е, 6-е сутки, после повреждения. Исследованы клеточные диффероны, входящие в состав грануляций. В ходе изучения на светооптическом уровне экспериментальных препаратов срезов кожи на 6-е сутки после нанесения кожно-мышечной раны, сформировано представление о грануляционной ткани. Раскрыв состав регенерационного гистиона грануляционной ткани становится возможным перейти на новый уровень в диагностике и прогнозировании темпов и исходов прогнозирования кожно-мышечных ран.

About the authors

V. V Nikogosyan

S.M. Kirov Military Medical Academy of the Ministry of Defense of the Russian Federation

St. Petersburg, Russia

A. V Gorbulich

S.M. Kirov Military Medical Academy of the Ministry of Defense of the Russian Federation

St. Petersburg, Russia

References

Supplementary files