PHYSIOLOGICAL AND REPARATIVE REGENERATION OF HAIR ROOT EPITELIOCYTES



Cite item

Full Text

Abstract

The physiological and reparative regeneration of epithelial cells of human and mouse hair roots was studied at the level of light microscopy. Comparison and analysis of longitudinal and transverse sections of hair roots at different levels. Reactive cell changes in the area of the hair follicle were identified and described. The cyclic activity of hair growth and sources of cambial cells of hair follicles were studied. At the stages of catagen and telogen (stages of stunting and dormancy during physiological regeneration), reduction of cells of the internal root sheath is noted. During reparative regeneration, only reactive changes in these cells were observed. During physiological regeneration at the catagen stage, mitoses of the cells of the external epithelial sheath are usually localized, and during reparative regeneration they are visible around the entire circumference of the hair follicle. It was shown that the state of epithelial cells of hair roots, especially cell of hair matrix, allows more accurate orientation within the perinecrotic area of the wound on the skin surface.

Full Text

Введение. Исследования процессов физиологической и репаративной регенерации эпителиоци- тов корня волоса человека и экспериментальных животных (например, мышей) важны для понимания механизмов эпителизации ран и восстановления волосяного покрова головы. Физиологическая и репа- ративная регенерация волоса протекает довольно быстро благодаря многочисленным источникам камбиальных клеток. Но для обеспечения эффективного заживления ран требуется скоординированное действие всех эпидермальных стволовых клеток, расположенных в разных областях кожи, включая ство- ловые клетки волоса и себоциты сальных желез, связанных с межфолликулярным эпидермисом [3, 4, 6, 12]. Сложные индуцированные взаимодействия эпидермальных стволовых клеток с другими клеточными дифферонами дермы обеспечивают активацию, миграцию и пластичность этих клеток во время вос- становления тканей кожи [3, 6]. Повреждение эпидермиса обычно сопровождается усилением проли- ферации кератиноцитов, расположенных не на краю раны, а на расстоянии 0,5-1,5 мм от края, в про- лиферативной зоне [3]. Активное участие в репаративной регенерации принимают клетки наружного волосяного влагалища верхней части корня волоса, образованного ростковым слоем эпидермиса [4]. Также в восстановлении эпидермиса принимают участие стволовые клетки волосяного фолликула в об- ласти Аубера (самая широкая часть волосяной луковицы) дифференцируясь в клетки межфоллику- лярного эпидермиса [2, 6]. При механической кожно-мышечной травме в области раневого канала происходит первичная гибель тканевых структур. В течение первой фазы репаративного гистогенеза происходит миграция и дифференцировка тканевых элементов с образованием лейкоцитарного вала, отделяющего зону первичного некроза [1, 3]. Вокруг этой зоны расположена перинекротическая об- ласть (ПНО), в которой разворачиваются реактивные изменения и отсроченная гибель клеток кожи и ее дериватов [1, 3]. Исследования реактивных изменений эпителиоцитов корня волоса позволяют более точно диагностировать область обратимых и необратимых реактивных изменений, благодаря оценке состояния клеток волосяной луковицы. Цель данного исследования - изучить реактивные изменения эпителиоцитов корня волоса мыши при механической травме кожи на светооптическом уровне. Задачи: провести сравнительный анализ продольных и поперечных срезов корня волоса на разных уровнях; изучить циклическую активность роста волос и источники камбиальных клеток волосяных фол- ликулов; выявить и описать реактивные изменения клеток волосяной луковицы при репаративной регене- рации. Материалы и методы. В работе использованы гистологические препараты кожи с волосами из архива кафедры, окрашенные гематоксилином/эозином и азаном. В качестве экспериментального объекта были использованы взрослые беспородные мыши-самцы (n=5). Им наносили механическую травму пробойником (диаметр 3 мм) в складку кожи на спине под эфирным наркозом. Материал за- фиксирован в 4% формальдегиде с постфиксацией солями осмия, обезвожен в этиловом спирте воз- растающей концентрации и залит в смесь эпоксидных смол. Полутонкие срезы, толщиной 0,8 - 1 мкм окрашивали 1% толуидиновым синим и изучали под световым микроскопом Scope A1с камерой Axiocam ERc 5s и использованием лицензированной программы ZEN 2.3. Результаты и обсуждение. Изучение строения корня волоса в норме проведено на продольных срезах гистологических препаратов кожи, окрашенных гематоксилином и эозином, и поперечных сре- зах, окрашенных азаном. Сопоставление продольных и поперечных срезов волосяных фолликулов на разных уровнях показало, что волос окружен клетками внутреннего и наружного эпителиальных влага- лищ разной формы и различной степени кератинизации. Сам волос состоит из мозгового, коркового вещества и кутикулы. Рост волоса начинается от клеток матрицы, расположенной над дермальным со- сочком. Малодифференцированные клетки матрицы вытянутой формы с крупным ядром и ободком цитоплазмы постепенно формируют ось волоса. На полутонких поперечных срезах ближе к матрице ось волоса состоит из трех плотно прилежащих друг к другу клеток, расположенных в один ряд (Рис. 1А,Б). Они окружены несколькими слоями более мелких клеток, содержащих гранулы в цитоплазме, покрытых одним слоем плоских клеток с ядрами веретеновидной формы. Вместе они образуют внут- реннее эпителиальное влагалище. Следующие два слоя представлены клетками полигональной фор- мы с округлыми ядрами и также окружены плоскими клетками с резко базофильной цитоплазмой. Это клетки наружного эпителиального влагалища. Их окружает 2-3 слоя вытянутых клеток фибробластиче- ского дифферона, образующих волосяную сумку. Дермальный сосочек представлен клетками вытяну- той формы и межклеточным веществом рыхлой соединительной ткани (рис. 1А). У экспериментальных животных через сутки после нанесения травмы в области вокруг раневого кана- ла наблюдали гибель волосяных фолликулов и реактивные изменения эпителиоцитов корня волоса раз- личной степени выраженности на границе с перинекротической областью (ПНО). На ранних сроках ре- генерационного гистогенеза реактивные изменения выявлены в клетках всех структур луковицы волоса. Чаще всего наблюдали нарушения межклеточных контактов эпителиоцитов, вызванных отёком межкле- точного вещества. В клетках дермального сосочка и матрицы отмечены необратимые изменения - пик- ноз ядер (Рис. 1А,В). В перинекротической области находятся волосяные фолликулы с выраженными обратимыми реактивными изменениями, затрагивающими клетки наружного эпителиального влагали- ща (рис. 1Б,Г). Фолликулы с повреждениями клеток дермального сосочка и матрицы - источника кам- биальных элементов волоса - локализуются в зоне, прилежащей к области некроза тканей и раневого канала. Фолликулы с обратимыми реактивными изменениями эпителиоцитов наружного волосяного влагалища наиболее удалены от раны. Важными источниками физиологической регенерации, диф- ференцировки камбиальных клеток является волосяной сосочек, клетки матрицы волоса, внутреннее и наружное волосяные влагалища. В цикле роста волоса выделяют три фазы. В фазе анагена происходит пролиферация стволовых клеток и интенсивный рост волоса [2, 5, 10]. В то же время происходит актив- ное деление клеток матрицы, заполняющих нижнюю часть фолликула и растущих вверх от дермального сосочка. В полностью функциональных фолликулах пролиферация матричных эпидермальных клеток идет одновременно с движением стержня волоса наружу, что позволяет положению луковицы фоллику- ла в дерме оставаться стабильным [11]. Помимо этого, увеличивается перифолликулярная васкуляриза- ция, которая регулируется экспрессией эндотелиального фактора роста, продуцируемого кератино- цитами наружного эпителиального влагалища [9]. На последнем этапе анагена волос появляется над поверхностью кожи и приобретает типичный для восприятия вид. Находясь в фазе катагена, пролифе- рация и дифференцировка клеток волосяного фолликула, а именно клеток матрикса, постепенно ос- лабевают, но клетки, приступившие к дифференцировке, поднимаются вверх и в них происходит кера- тинизация [7, 8]. Клетки внутреннего корневого влагалища исчезают, а клетки наружного эпителиального влагалища сохраняются, и в его нижней части, и в области «bulge» - контакта с мышцей, поднимающей волос, остаются стволовые клетки для будущего волосяного фолликула [4]. В фазе телогена фолликул представлен тяжем клеток в состоянии покоя, расположенным над фибробластами сосочка. В поздней фазе телогена стволовые клетки в области «bulge» волосяного фолликула дифференцируются в клетки матрицы после стимуляции, чтобы снова войти в фазу анагена [12]. Реактивные изменения при репара- тивной регенерации чаще представлены отеком межклеточного пространства эпителиоцитов, обрати- мыми и необратимыми изменениями ядер клеток в области матрицы и дермального сосочка. При фи- зиологической регенерации и циклических изменениях, связанных с ростом волоса, в самой широкой части волосяной луковицы - в области Аубера, точнее в наружном эпителиальном влагалище наблюда- ется неравномерное распределении клеток. За счет этого происходит выход эпителиоцитов из наруж- ного волосяного влагалища в волосяную сумку с последующим ее растяжением. Именно эти признаки имеют важное значение в определении различий между реактивно измененным (репаративная реге- нерация) и находящимся в заключительной фазе анагена и катагена (физиологическая регенерация) волосом. Выводы. При исследовании репаративной регенерации эпителиоцитов корня волоса эксперимен- тальных животных на световом уровне показано, что реактивные изменения клеток затрагивают все структуры волоса. Благодаря комбинации реактивных изменений эпителиоцитов корня волоса и их ло- кализации можно точнее диагностировать области перинекротической зоны заживающей раны. Реактивные изменения при репаративной регенерации и состояние структур волоса в физиологиче- ском цикле роста имеют разную степень выраженности и локализации внутри луковицы. Таким образом, анализ характера реактивных изменений и их локализация в клетках корня волоса при повреждениях кожи помогут определить границы перинекротической области раны и, значит, позволят более качественно и точно применить современные клеточные технологии по оптимизации регенера- ции раневой области.
×

About the authors

V. D Petrov

S.M. Kirov Military Medical Academy of the Ministry of Defense of the Russian Federation

St. Petersburg, Russia

O. E Mirgorodskaya

S.M. Kirov Military Medical Academy of the Ministry of Defense of the Russian Federation

St. Petersburg, Russia

References

  1. Гололобов, В.Г. Органы опорно-двигательной системы. Гистогенез и регенерация / В.Г. Гололобов, И.А. Одинцова. - СПб., 2010. - 28 c.
  2. Горячкина. В.Л. Физиология волосяных фолликулов / В.Л. Горячкина [и др.] // Российский журнал кожных и венерических болезней. - 2015. - №3. - С.54-62.
  3. Данилов, Р.К. Раневой процесс: гистогенетические основы / Р.К. Данилов. - СПб.: ВМедА, 2007. - 380 c.
  4. Руководство по гистологии / Под ред. Р. К. Данилова. - Изд. 2-е, испр. и доп. - Т.2. - СПб.: СпецЛит, 2011. - 831 c.
  5. Ali, N. Regulatory cells in skin facilitate epithelial stem cell differentiation / N. Ali [et al.] // Сell. - 2017. - Vol.169. - P.1-11.
  6. Dekoninck, S. Stem cell dynamics, migration and plasticity during wound healing / S. Dekoninck, Blanpain // Nature Cell Biology. - 2019. - Vol.21. - P.18-24.
  7. Jang, H. Metabolism in embryonic and cancer stemness / H. Jang [et al.] // Archives of Pharmacal Research. - 2015. - Vol.38. - Р.381-388.
  8. Ling, G. Restores hair follicle-inductive capacity of skin-derived precursors / G. Ling // Scientific reports. - 2019. - Vol.9. - Р.1-10.
  9. Lemasters, J.J. Compartmentation of mitochondrial and oxidative metabolism in growing hair follicles: a ring of fire / J.J. Lemasters [et al.] // Journal of Investigative Dermatology. - 2017. - Vol.137. - Р.1434-1444.
  10. Siiri, E.I. Comparative regenerative mechanisms across different mammalian tissues / E.I. Siiri // Regenerative Medicine. 2018. Vol.6. Р.1-20.
  11. Tang, Y. Mitochondrial aerobic respiration is activated during hair follicle stem cell differentiation, and its dysfunction retards hair regeneration / Y. Tang [et al.] // Peer J. - 2016. - Vol.4. - Р.1-15.
  12. Wang, X. Hair follicle and sebaceous gland de novo regeneration with cultured epidermal stem cells and skin-derived / X. Wang [et al.] // Stem Cells Translational Medicine. - 2016. - Vol.5. - Р.1695-1706.

Supplementary files

Supplementary Files
Action
1. JATS XML

Copyright (c) 2020 Petrov V.D., Mirgorodskaya O.E.

Creative Commons License
This work is licensed under a Creative Commons Attribution-NonCommercial-NoDerivatives 4.0 International License.

СМИ зарегистрировано Федеральной службой по надзору в сфере связи, информационных технологий и массовых коммуникаций (Роскомнадзор).
Регистрационный номер и дата принятия решения о регистрации СМИ: серия ПИ № ФС 77 - 77760 от 10.02.2020.


This website uses cookies

You consent to our cookies if you continue to use our website.

About Cookies