Технология TIME-LAPSE в современной эмбриологической практике

Обложка


Цитировать

Полный текст

Открытый доступ Открытый доступ
Доступ закрыт Доступ предоставлен
Доступ закрыт Доступ платный или только для подписчиков

Аннотация

В настоящей статье описаны основные принципы работы технологии непрерывной покадровой съемки, или технологии TIME-LAPSE. Обозначено место данной технологии в современной эмбриологической практике, проведено сравнение с традиционной системой культивирования. Представлен обзор современных инкубаторов, оснащенных системой TIME-LAPSE, в том числе отечественного производства, перечислены их преимущества и недостатки. Рассмотрены основные этапы раннего эмбрионального развития человека, отмечены редкие события, например, такие, как аномальное образование и исчезновение пронуклеусов, многоядерность бластомеров, обратное дробление, «прямое дробление» на три бластомера, которые можно визуализировать только с применением технологии TIME-LAPSE, но не при традиционной визуальной оценке морфологии эмбриона. Уделено внимание использованию искусственного интеллекта совместно с технологией TIME-LAPSE для объективной оценки и ранжирования эмбрионов согласно их морфокинетическим характеристикам. В заключение представлены данные о влиянии технологии на результативность программ экстракорпорального оплодотворения. Более того, приведены такие неочевидные преимущества данной системы, как возможность обучения и передачи видеоданных между участниками протокола экстракорпорального оплодотворения.

Полный текст

Доступ закрыт

Об авторах

Мария Алексеевна Ищук

Научно-исследовательский институт акушерства, гинекологии и репродуктологии им. Д.О. Отта

Автор, ответственный за переписку.
Email: mashamazilina@gmail.com
ORCID iD: 0000-0002-4443-4287
SPIN-код: 1237-6373
Россия, Санкт-Петербург

Елена Александровна Лесик

Научно-исследовательский институт акушерства, гинекологии и репродуктологии им. Д.О. Отта

Email: lesike@yandex.ru
ORCID iD: 0000-0003-1611-6318
SPIN-код: 6102-4690

канд. биол. наук

Россия, Санкт-Петербург

Янина Максимовна Сагурова

Научно-исследовательский институт акушерства, гинекологии и репродуктологии им. Д.О. Отта

Email: yanina.sagurova96@mail.ru
ORCID iD: 0000-0003-4947-8171
SPIN-код: 8908-7033
Россия, Санкт-Петербург

Евгения Михайловна Комарова

Научно-исследовательский институт акушерства, гинекологии и репродуктологии им. Д.О. Отта

Email: evgmkomarova@gmail.com
ORCID iD: 0000-0002-9988-9879
SPIN-код: 1056-7821

канд. биол. наук

Россия, Санкт-Петербург

Список литературы

  1. Dayan N., Joseph K.S., Fell D.B., et al. Infertility treatment and risk of severe maternal morbidity: A propensity score-matched cohort study // Can. Med. Assoc J. 2019. Vol. 191. No. 5. P. 118–127. doi: 10.1503/cmaj.181124.
  2. Kulkarni A.D., Jamieson D.J., Jones H.W., et al. Fertility treatments and multiple births in the United States // N. Engl. J. Med. 2013. Vol. 369. No. 23. P. 2218–2225. doi: 10.1056/NEJMoa1301467
  3. Machtinger R., Racowsky C. Morphological systems of human embryo assessment and clinical evidence // Reprod. Biomed. Online. 2013. Vol. 26. No. 3. P. 210–221. doi: 10.1016/j.rbmo.2012.10.021
  4. Gardner D.K., Schoolcraft W.B. In vitro culture of human blastocyst // Towards Reproductive Certainty: Infertility and Genetics Beyond / ed. by R. Jansen, D. Mortimer. Carnforth: Parthenon Press, 1999. P. 377–388.
  5. Gardner D.K., Lane M., Stevens J., et al. Blastocyst score affects implantation and pregnancy outcome: Towards a single blastocyst transfer // Fertil. Steril. 2000. Vol. 73. No. 6. P. 1155–1158. doi: 10.1016/s0015-0282(00)00518-5
  6. Gardner D.K., Schoolcraft W.B. Culture and transfer of human blastocysts // Curr. Opin. Obstet. Gynecol. 1999. Vol. 11. No. 3. P. 307–311. doi: 10.1097/00001703-199906000-00013
  7. Payne D., Flaherty S.P., Barry M.F., et al. Preliminary observations on polar body extrusion and pronuclear formation in human oocytes using time-lapse video cinematography // Hum. Reprod. 1997. Vol. 12. No. 3. P. 532–541. doi: 10.1093/humrep/12.3.532
  8. Mio Y., Maeda K. Time-lapse cinematography of dynamic changes occurring during in vitro development of human embryos // Am. J. Obstet. Gynecol. 2008. Vol. 199. No. 6. P. 660.e1–660.e5. doi: 10.1016/j.ajog.2008.07.023.
  9. Alpha Scientists in Reproductive Medicine and ESHRE Special Interest Group of Embryology. The Istanbul consensus workshop on embryo assessment: proceedings of an expert meeting // Hum. Reprod. 2011. Vol. 26. No. 6. P. 1270–1283. doi: 10.1093/humrep/der037
  10. ESHRE Guideline Group on Good Practice in IVF Labs, De los Santos M., Apter S., Coticchio G., et al. Revised guidelines for good practice in IVF laboratories (2015) // Hum. Reprod. 2016. Vol. 31. No. 4. P. 685–686. doi: 10.1093/humrep/dew016
  11. Lim A.S., Goh V.H., Su C.L., et al. Microscopic assessment of pronuclear embryos is not definitive // Hum. Genet. 2000. Vol. 107. No. 1. P. 62–68. doi: 10.1007/s004390000335.
  12. Manor D., Kol S., Lewit N., et al. Undocumented embryos: do not trash them, FISH them // Hum. Reprod. 1996. Vol. 11. No. 11. P. 2502–2506. doi: 10.1093/oxfordjournals.humrep.a019148
  13. Li M., Lin S., Chen Y., et al. Value of transferring embryos that show no evidence of fertilization at the time of fertilization assessment // Fertil. Steril. 2015. Vol. 104. No. 3. P. 607–611. doi: 10.1016/j.fertnstert.2015.05.016
  14. Yao G., Xu J., Xin Z., et al. Developmental potential of clinically discarded human embryos and associated chromosomal analysis // Sci. Rep. 2016. Vol. 5. No. 6. doi: 10.1038/srep23995.
  15. Yin B.L., Hao H.Y., Zhang Y.N., et al. Good quality blastocyst from non-/mono-pronuclear zygote may be used for transfer during IVF // Syst. Biol. Reprod. Med. 2016. Vol. 62. No. 2. P. 139–145. doi: 10.3109/19396368.2015.1137993
  16. Rosenbusch B. The chromosomal constitution of embryos arising from monopronuclear oocytes in programmes of assisted reproduction // Int. J. Reprod. Med. 2014. Vol. 2014. doi: 10.1155/2014/418198
  17. Destouni A., Dimitriadou E., Masset H., et al. Genome-wide haplotyping embryos developing from 0PN and 1PN zygotes increases transferrable embryos in PGT-M // Hum. Reprod. 2018. Vol. 33. No. 12. P. 2302–2311. doi: 10.1093/humrep/dey325
  18. Liu Y., Chapple V., Roberts P., et al. Prevalence, consequence, and significance of reverse cleavage by human embryos viewed with the use of the Embryoscope time-lapse video system // Fertil. Steril. 2014. Vol. 102. No. 5. P. 1295–1300. doi: 10.1016/j.fertnstert.2014.07.1235
  19. Desch L., Bruno C., Luu M., et al. Embryo multinucleation at the two-cell stage is an independent predictor of intracytoplasmic sperm injection outcomes // Fertil. Steril. 2017. Vol. 107. No. 1. P. 97–103. doi: 10.1016/j.fertnstert.2016.09.022
  20. Zhan Q., Ye Z., Clarke R., et al. Direct unequal cleavages: embryo developmental competence, genetic constitution and clinical outcome // PloS One. 2016. Vol. 11. No. 12. doi: 10.1371/journal.pone.0166398
  21. Ozbek I.Y., Mumusoglu S., Polat M., et al. Comparison of single euploid blastocyst transfer cycle outcome derived from embryos with normal or abnormal cleavage patterns // Reprod. Biomed. Online. 2021. Vol. 42. No. 5. P. 892–900. doi: 10.1016/j.rbmo.2021.02.005
  22. Márquez-Hinojosa S., Noriega-Hoces L., Guzmán L. Time-lapse embryo culture: a better understanding of embryo development and clinical application // JBRA Assist. Reprod. 2022. Vol. 26. No. 3. P. 432–443. doi: 10.5935/1518-0557.20210107
  23. Amir H., Barbash-Hazan S., Kalma Y., et al. Time-lapse imaging reveals delayed development of embryos carrying unbalanced chromosomal translocations // J. Assist. Reprod. Genet. 2019. Vol. 36. No. 2. P. 315–324. doi: 10.1007/s10815-018-1361-8
  24. Huang B., Tan W., Li Z., et al. An artificial intelligence model ( euploid prediction algorithm) can predict embryo ploidy status based on time-lapse data // Reprod. Biol. Endocrinol. 2021. Vol. 19. No. 1. P. 185. doi: 10.1186/s12958-021-00864-4
  25. Muñoz M., Cruz M., Humaidan P., et al. The type of GnRH analogue used during controlled ovarian stimulation influences early embryo developmental kinetics: a time-lapse study // Eur. J. Obstet. Gynecol. Reprod. Biol. 2013. Vol. 168. No. 2. P. 167–172. doi: 10.1016/j.ejogrb.2012.12.038
  26. Kirkegaard K., Hindkjaer J.J., Ingerslev H.J. Hatching of in vitro fertilized human embryos is influenced by fertilization method // Fertil. Steril. 2013. Vol. 100. No. 5. P. 1277–1282. doi: 10.1016/j.fertnstert.2013.07.005
  27. Cruz M., Garrido N., Gadea B., et al. Oocyte insemination techniques are related to alterations of embryo developmental timing in an oocyte donation model // Reprod. Biomed. Online. 2013. Vol. 27. No. 4. P. 367–375. doi: 10.1016/j.rbmo.2013.06.017
  28. Ciray H.N., Aksoy T., Goktas C., et al. Time-lapse evaluation of human embryo development in single versus sequential culture media – a sibling oocyte study // J. Assist. Reprod. Genet. 2012. Vol. 29. No. 9. P. 891–900. doi: 10.1007/s10815-012-9818-7.
  29. Hardarson T., Bungum M., Conaghan J., et al. Noninferiority, randomized, controlled trial comparing embryo development using media developed for sequential or undisturbed culture in a time-lapse setup // Fertil. Steril. 2015. Vol. 104. No. 6. P. 1452–1459. doi: 10.1016/j.fertnstert.2015.08.037.
  30. Kirkegaard K., Hindkjaer J. J., Ingerslev H. J. Effect of oxygen concentration on human embryo development evaluated by time-lapse monitoring // Fertil. Steril. 2013. Vol. 99. No. 3. P. 738–744. doi: 10.1016/j.fertnstert.2012.11.028
  31. Reignier A., Lefebvre T., Loubersac S., et al. Time-lapse technology improves total cumulative live birth rate and shortens time to live birth as compared to conventional incubation system in couples undergoing ICSI // J. Assist. Reprod. Genet. 2021. Vol. 38. No. 4. P. 917–923. doi: 10.1007/s10815-021-02099-z
  32. Zhang X.D., Zhang Q., Han W., et al. Comparison of embryo implantation potential between time-lapse incubators and standard incubators: a randomized controlled study // Reprod. Biomed. Online. 2022. Vol. 45. No. 5. P. 858–866. doi: 10.1016/j.rbmo.2022.06.017

Дополнительные файлы

Доп. файлы
Действие
1. JATS XML
Скачать
2. Табл_Рис. 1

Скачать (10KB)
Метаданные
3. Табл_Рис. 2

Скачать (15KB)
Метаданные
4. Табл_Рис. 3

Скачать (14KB)
Метаданные
5. Табл_Рис. 4

Скачать (12KB)
Метаданные
6. Табл_Рис. 5

Скачать (15KB)
Метаданные
7. Табл_Рис. 6

Скачать (11KB)
Метаданные
8. Табл_Рис. 7

Скачать (12KB)
Метаданные
9. Табл_Рис. 8

Скачать (12KB)
Метаданные
10. Табл_Рис. 9

Скачать (13KB)
Метаданные
11. Табл_Рис. 10

Скачать (15KB)
Метаданные
12. Табл_Рис. 11

Скачать (13KB)
Метаданные
13. Табл_Рис. 12

Скачать (15KB)
Метаданные
14. Табл_Рис. 13

Скачать (16KB)
Метаданные
15. Табл_Рис. 14

Скачать (12KB)
Метаданные
16. Табл_Рис. 15

Скачать (15KB)
Метаданные
17. Табл_Рис. 16

Скачать (16KB)
Метаданные
18. Табл_Рис. 17

Скачать (15KB)
Метаданные
19. Табл_Рис. 18

Скачать (15KB)
Метаданные
20. Табл_Рис. 19

Скачать (15KB)
Метаданные

© Эко-Вектор, 2023

Ссылка на описание лицензии: https://eco-vector.com/for_authors.php#07
СМИ зарегистрировано Федеральной службой по надзору в сфере связи, информационных технологий и массовых коммуникаций (Роскомнадзор).
Регистрационный номер и дата принятия решения о регистрации СМИ: серия ПИ № ФС 77 - 66759 от 08.08.2016 г. 
СМИ зарегистрировано Федеральной службой по надзору в сфере связи, информационных технологий и массовых коммуникаций (Роскомнадзор).
Регистрационный номер и дата принятия решения о регистрации СМИ: серия Эл № 77 - 6389 от 15.07.2002 г.


Данный сайт использует cookie-файлы

Продолжая использовать наш сайт, вы даете согласие на обработку файлов cookie, которые обеспечивают правильную работу сайта.

О куки-файлах