Антимюллеровский фактор

Обложка


Цитировать

Полный текст

Аннотация

Антимюллеровский фактор - яичниковый гормон, который относится к группе трансформирующих факторов роста-b. АМФ продуцируется и мужской и женской гонадами - клетками Сертоли яичка и гранулезными клетками яичника. В процессе эмбриогенеза мужского организма АМФ вызывает регресс мюллеровых протоков, а тестостерон-дифференцировку вольфовых протоков. В женском организме в процессе эмбриогенеза отсутствие АМФ и тестостерона приводит к регрессу вольфовых протоков, но способствует дифференцировке мюллеровых протоков и развитию из них внутренних женских половых органов. АМФ продолжает продуцироваться гранулезными клетками на протяжении репродуктивного периода женщины.

Выяснено, что он ингибирует возобновление мейоза в овоцитах. Кроме того, АМФ влияет на стероидогенез, он снижает активность ароматазы, вызывая уменьшение продукции эстрадиола и повышение уровня андрогенов в фолликуле. АМФ угнетает митозы в гранулезных клетках и снижает число ЛГ-рецепторов на них. АМФ является антагонистом эпидермального фактора роста и может ингибировать стимулированный им тканевой активатор плазминогена, играющий важную роль в процессе разрыва фолликула при овуляции. Таким образом, АМФ обладает ингибирующим влиянием на все компоненты фолликула, включая рост гранулезных клеток, стероидогенез, созревание яйцеклетки и разрыв фолликула. Сделано предположение об определенной роли АМФ в патогенезе синдрома поликистозных яичников.

Полный текст

Антимюллеровский фактор (АМФ) - гормон, который вырабатывается в гонадах в процессе половой дифференцировки зародыша по мужскому типу и вызывает регресс мюллеровых протоков (предшественников женских внутренних половых органов).

Jost впервые выдвинул предположение наличие тестикулярного фактора, подавляющего развитие мюллеровых протоков в 1947 году [27]. Антимюллеровский фактор (антимюллеровский гормон) был идентифицирован, выделен и рекомбинантно синтезирован [5, 12, 25, 30].

Он относится к группе трансформирующих факторов роста b (transforming growing factor-b), участвующих в росте и дифференцировке клеток. Гликопротеины этого семейства синтезируются в виде неактивных димеров-предшественников и для активации подвергаются посттрансляционному процессингу - расщеплению и диссоциации субъединиц.

Ген АМФ у человека находится на коротком плече 19 хромосомы [8].

АМФ вырабатывается в гонадах обоих полов - клетками Сертоля яичек и гранулезными клетками яичника [12, 30].

Физиологические функции АМФ в мужском организме

Инволюция мюллеровых протоков. В процессе эмбриогенеза по мужскому типу АМФ вызывает инволюцию мюллеровых протоков у зародыша, в то время как тестостерон стимулирует дифференцировку вольфовых протоков. Уровень АМФ в сыворотке крови новорожденных мужского пола - около 30 нг/мл. Это несколько выше, чем у недоношенных детей. В первый год жизни этот показатель несколько увеличивается, достигая максимума около 50 нг/мл. Затем уровень АМФ постепенно снижается (после 51 летнего возраста) до базального уровня 2-5 нг/мл, который наблюдается в юношеском и взрослом возрасте [18].

Опущение яичек. Имеются данные о влиянии АМФ на опущение яичек в мужском организме. Выделяют 3 стадии опущения яичек в норме [21]:

  1. Перемещение гонад во время раннего эмбриогенеза, которое происходит у обоих полов.
  2. Трансабдоминальное перемещение яичек вследствие роста gubernaculum.
  3. Продвижение через паховый канал.

Считается, что в регуляции второй стадии участвует АМФ, а в третьей - андрогены. При развитии синдрома нечувствительности к андрогенам, когда действие АМФ не нарушено, опущение яичек у большинства пациентов происходит до пахового кольца [23]. В то же время при синдроме персистирующих мюллеровых протоков, когда отсутствует действие АМФ, а действие андрогенов не нарушено, - яички остаются в брюшной полости [17]. Механизм действия АМФ на gubernaculum (по видимости - мишень АМФ) точно не установлен.

Созревание легочной ткани. Синдром дыхательных расстройств у новорожденных вследствие недостаточной продукции сурфактанта чаще случается у мальчиков. Возможное объяснение этого факта заключается в том, что андрогены и АМФ подавляют синтез фосфатидинхолина - основного компонента сурфактанта, продуцируемого фибробластами легочной ткани [6].

Физиологические функции АМФ в женском организме

При развитии плода по женскому типу дифференцировка мюллеровых протоков происходит спонтанно, вследствие отсутствия АМФ, а инволюция вольфовых структур - вследствие отсутствия тестостерона. В норме в эмбриональном периоде АМФ не вырабатывается у плодов женского пола, и яичники до рождения девочки не подвергаются воздействию АМФ. В яичниках продукция АМФ начинается после рождения и увеличивается в период половой зрелости и у взрослых женщин [3, 37].

В течение первых лет жизни АМФ не определяется в сыворотке крови у девочек. Он начинает определяться, начиная приблизительно с 20-летнего возраста, и составляет около 2 нг/мл. Концентрация АМФ сыворотки крови в репродуктивном периоде сравнима с таковой у взрослых мужчин - 2-5 нг/мл. Такой же уровень АМФ определяется в фолликулярной жидкости, полученной во время ЭКО [28].

Выработка АМФ не ограничивается только эмбриональным периодом. Тот факт, что секреция АМФ у женщин продолжается на протяжении всего репродуктивного периода, дает повод предположить, что данный фактор роста выполняет определенные функции в репродуктивной системе женщины [28].

Известно, что АМФ синтезируется гранулезными клетками фолликулов у женщин репродуктивного и более старшего возраста. Однако роль, которую он выполняет в организме женщины, точно не установлена.

Механизм действия

АМФ. Молекулярный механизм действия АМФ до конца не изучен. Считается, что он связан с дефосфорилированием клеточных рецепторов [22]. Доказано, что АМФ блокирует вызываемое эпидермальным фактором роста (EGF) фосфорилирование тирозина клеточных мембран, а также аутофосфорилирование рецепторов EGF [7, 39]. АМФ является антагонистом эпидермального фактора роста (EGF).

Функции EGF:

  • EGF и TGFа (трансформирующий фактор роста-а) рассматриваются как основные внутрияичниковые стимуляторы деления фолликулярных клеток (в частности - митоза гранулезы) [24, 32, 33].
  • EGF стимулирует созревание (реинициацию мейоза) ооцитов [9, 14, 32].
  • EGF стимулирует выработку клетками гарнулезы активатора тканевого плазминогена (ТР), играющего важную роль в процессе овуляторного разрыва фолликула (tissue-type plasminogen activator) [16].

Все вышеперечисленные действия EGF в фолликулах могут блокироваться АМФ, тем более, если содержание последнего повышено [32].

Рецепторы АМФ гомологичны рецепторам активина и трансформирующего фактора роста (TGF)-b2 [29, 31]. Они были локализованы (методом in situ hybridization) на мезенхимальных клетках, окружающих мюллеровы протоки, а также на развивающихся ооцитах и клетках гранулезы в преантральных и антральных фолликулах [28].

АМФ был обнаружен в яичниках и фолликулярной жидкости и животных, и человека. Его синтез осуществляют клетки гранулезы [4, 26]. По данным Baar ends W.M. et al., [1] экспрессия РНК АМФ и рецепторов АМФ 2-го типа наблюдается в гранулезных клетках небольших преантральных фолликулов; интенсивность экспрессии достигает максимальной величины в больших преантральных фолликулах, а затем снижается и в небольших антральных фолликулах становится в 2,5-3 раза ниже, чем в больших преантральных. В последующем экспрессия РНК АМФ и рецепторов АМФ 2-го типа продолжает снижаться и практически исчезает в больших антральных фолликулах, в фолликулах, находящихся на конечной стадии созревания, и в желтых телах [19].

Таким образом, перед овуляцией, когда ооциты должны возобновлять мейотическое деление, окраска АМФ в предовуляторных фолликулах исчезает [20, 40]. В связи с этим было высказано предположение о влиянии АМФ на процесс созревания половых клеток. Такое предположение подтверждается данными о способности АМФ ингибировать реинициацию мейоза ооцитов [8, 36].

АМФ и реинициация мейоза ооцитов. Ооциты плода вступают в первое деление мейоза незадолго или сразу после родов, но деление останавливается в конце профазы I деления (стадия диплотены). Возобновление мейотического деления происходит за несколько часов до овуляции и вызывается предовуляторным пиком гонадотропинов (ЛГ).

Считается, что в фолликуле вырабатываются факторы, тормозящие реинициацию мейоза ооцита и поддерживающие это торможение до момента, когда преовуляторный пик ЛГ преодолевает их ингибирующее влияние. Так как ооцит не имеет ЛГ-рецепторов, действие ЛГ по “разблокированию” мейоза, по-видимому, передается на ооцит через другие клетки фолликула.

Различные факторы рассматриваются как возможные ингибиторы реинициации мейоза ооцита:

  • фактор, ингибирующий созревание (мейоз) ооцита (ФИС),
  • циклический аденозинмонофосфат (цАМФ),
  • стероиды,
  • пурины,
  • АМФ.

Наиболее изучена роль цАМФ в регуляции мейоза ооцитов [36]. Мейотическое деление ооцита регулируется внутриклеточным содержанием цАМФ. Ингибирующее количество цАМФ вырабатывается не самим ооцитом, а поступает из клеток гранулезы и кумулюсных клеток фолликула через межклеточные контакты. Вслед за предовуляторным пиком ЛГ в фолликулах нарушаются межклеточные контакты клеток гранулезы, кумулюсных клеток и ооцита. В результате происходит падение уровня цАМФ в ооците. Это делает возможным реинициацию мейоза ооцита и начало второго деления мейоза.

Механизм действия ФИС связан с цАМФ, синтезируемым кумулюсными клетками фолликула [38].

Способность АМФ ингибировать мейоз как изолированных ооцитов, так и в комплексах “ооцит-кумулюсные клетки”, а также результаты других исследований [36] говорят о том, что АМФ воздействует на ооцит не через другие клетки фолликула и не за счет цАМФ-зависимо го механизма. Как предполагается, механизм воздействия АМФ связан с угнетением тирозин киназы ооцита, ответственной за вступление ооцита в мейоз [22].

Нейтрализация действия АМФ на реинициацию мейоза ооцитов при помощи антиАМФ- антител и эпидермального фактора роста (EGF) подтверждает специфичность воздействия АМФ [38, 39].

Интересно, что АМФ препятствует реинициации мейоза ооцитов в фолликулах, которые не достигли финальной стадии роста [28]. В связи с этим заслуживают внимания данные M.Follat et al. [15], которые обнаружили повышение уровня АМФ в сыворотке крови и фолликулярной жидкости, полученной при ЭКО у пациенток с синдромом поликистозных яичников.

Воздействие на изолированные ооциты ФСГ, ЛГ, прогестерона, 17Ь-эстрадиола и тестостерона не повлияло на угнетение созревания ооцита, вызванного АМФ [36]. Это подтверждает то, что действие АМФ не связано с цАМФ и его продукцией кумулюсными клетками, и говорит о том, что гонадотропины in vitro не в состоянии преодолеть ингибирующее влияние АМФ.

АМФ и ЛГ-рецепторы гранулезы. Согласно экспериментальным данным АМФ обладает еще одним свойством, а именно: снижает количество ЛГ- рецепторов на гранулезных клетках [11].

АМФ и стероидогенез в яичниках. Отсутствие воздействия АМФ является необходимым для развития нормального стероидогенеза в яичниках. Воздействие АМФ на женский плод в раннем эмбриональном периоде вызывает агенезию мюллеровых структур и “изменение гормонального пола яичников” [2, 41, 42]. Согласно экспериментальным данным, при воздействии на яичники плода в эмбриональном периоде, АМФ угнетал репликацию оогоний и активность ароматазы гранулезных клеток [10, 41, 42], что приводило к изменению гормональной среды фолликула (“изменение гормонального пола яичника”) - снижение уровня эстрогенов и повышение уровня андрогенов.

В незрелой ткани яичников при культивации с АМФ наблюдается пониженная активность ароматазы, и как следствие - снижение синтеза эстрадиола и повышенная продукция тестостерона [41]. При изучении влияния АМФ на морфогенез гонад у мышей было обнаружено, что при воздействии высокой концентрации АМФ у особей женского пола наблюдалась вирилизация наружных гениталий, развитие слепого влагалища, отсутствие матки или яйцеводов; их гонады представляли собой тяжеподобные образования, похожие на семявыносящие протоки, содержащие незначительное количество половых клеток.

Ингибирование роста клеток. АМФ способен ингибировать рост клеток. Есть сведения об угнетении АМФ клеток ганулезы [35]. Экспериментально было показано, что рост клеток карциномы яичника ингибировался частично очищенным бычьим АМФ. Эта опухоль из поверхностного эпителия яичника - производного целомического эпителия - развивается преимущественно в постменопаузе, когда продукция АМФ резко снижается [13]. Также в эксперименте было показано, что АМФ действует на клетки А431 - клетки, выделенные из плоскоклеточной карциномы шейки матки и имеющие большое количество EGF-рецепторов. Действие АМФ в этом случае объясняют угнетением EGF- зависимой тирозин киназы [22].

Было высказано предположение о возможном воздействии АМФ на ткань мюллеровых структур в постнатальном периоде с целью предотвращения их злокачественной трансформации и в связи с этим об использовании АМФ в качестве лечебного антиопухолевого агента.

Заключение

Помимо общеизвестного влияния на дегенерацию мюллеровых протоков у мальчиков, АМФ имеет значение на определенных стадиях опущения яичек и, возможно, влияет на созревание сурфактанта.

Как показывают результаты исследований, АМФ в женском организме оказывает ингибирующее воздействие на все компоненты фолликула, влияя на процесс созревания ооцита, рост и развитие фолликула, механизм овуляции. И так, АМФ:

  • ингибирует реинициацию мейоза ооцитов; механизм этого воздействия не является цАМФ- зависимым. Экспериментальные данные [36] показали, что in vitro гонадотропины не смогли преодолеть это ингибирующее воздействие;
  • нарушает стероидогенез в фолликулах. За счет угнетения ароматазы гранулезных клеток в фолликулах значительно снижается уровень эстрадиола, а уровень тестостерона растет [10, 41, 42];
  • угнетает митоз клеток гранулезы [35];
  • снижает количество ЛГ- рецепторов на клетках гранулезы [11];
  • является антагонистом EGF и снижает выработку активатора тканевого тромбопластина, который играет важную роль в процессе овуляторного разрыва фолликула [16].

Следовательно гиперпродукция АМФ в женском организме может привести к нарушению половой дифференцировки зародыша и в последующем нарушить механизм роста и развития фолликула. С учетом данных M.Follat с соавт. [15] наиболее вероятно предположить, что АМФ имеет непосредственное отношение к патогенезу синдрома поликистозных яичников.

×

Об авторах

З. Н. Бебия

Санкт-Петербургская медицинская академия последипломного образования

Автор, ответственный за переписку.
Email: info@eco-vector.com
Россия, Санкт-Петербург

В. М. Орлов

Санкт-Петербургская медицинская академия последипломного образования

Email: info@eco-vector.com
Россия, Санкт-Петербург

Список литературы

  1. Baarends W.M., Uilenbroek J.T., Kramer P., Hoogerbrugge J.W. et al. АМН and АМН type 2 receptor mRNA expression in rat ovaries during postnatal development, the estrous cycle and gonadotropin-induced follicle growth // Endocrinology, 1995.-Vol.136.- Ns 11. - P.4951-4954.
  2. Behringer P.P., Cate P.L., Froelick G.J., Palmitter P.D., Brinster E. Abnormal sexual development in transgenic mice // Nature, 1990. - Vol. 345.- P. 167-170.
  3. Bezard J., Vigier B. ét al. Immunocytochemical study of АМН in sheep ovaries follicles during fetal and post-natal development//J. Peprod. Fert., 1987.- Vol.80.-P.509- 512.
  4. Cate P.L., Donahoe P.K., MacLaughlin D.T. MIS, Peptide growth factors and their receptors. Berlin, 1990.
  5. Cate P.L., Ninfa E.G. et al. Development of MIS as an anticancer drug // Cold Spring Harb. Symp. Quant. Biol., 1986.-Vol.51.- P.641-643.
  6. Catlin E.A., Manganaro T.F., Donahoe P.K. MIS depresses accumulation in vitro of disaturated phosphatidynecholine in fetal rat lung. //Am. J. Obstetr. Gynec., 1988.- Vol.159.-P.1299-1302.
  7. Catlin E.A., Uitvlugt N.D., Donahoe P.K. Mullerian inhibiting substance blocks EGF receptor phosphorylation in fetal rat lung membranes. // Metabolism, 1991. -Vol.40.-P.1178-1183.
  8. Cohen-Haguenauer O., Picard J.Y. et al. Mapping of the gene forAMFto the short arm of human chromosome
  9. 19. //Cytogenet. Cell. Genet., 1987.- Vol.44.-P. 2-4.
  10. Dekel N., Sherizlyl. EGF induces maturation of rat follicle-enclosed oocytes.//Endocrinology, 1985.- Vol. 116.-P.406-409.
  11. Di Clemente N., Ghaffari S. et al. A quantative and interspecific test for biological activity of АМН: the fetal ovary aromatase assay.// Development, 1992. - Vol. 114.- P. 721- 724.
  12. Di Clemente N., Goxe В., Pemy J.J. et al. Inhibitory effect of АМН upon the expression of aromatase and LH receptors by cultured granulosa cells of rat and porcine immature ovaries.// Endocrine, 1994.-Vol.2.-P.553-557.
  13. Donahoe P.K., Cate P.L., Epstein J. et al. MIS: gene structure and mechanism of action. //Pecent Prog. Horm. Res., 1987.-Vol.43.-P.431- 435.
  14. Donahoe P.K., Swann D.A. et al. Mullerian duct regression in the embryo correlated with cytotoxic activity against human ovarian cancer. //Science, 1979.-Vol.205.-P.913-916.
  15. Downs S.M. Specificity of EGF action on maturation of the murine oocyte and cumulus oophorus in vitro. //Biol. Reprod., 1989.-Vol.41.- P.371-376.
  16. Fallat M. et al. MIS in follicular fluid and serum: a comparison of patients with tubai factor infertility, PCOS and endometriosis. //Fert. Ster., 1997. - Vol. 67.- P. 5962-5964.
  17. Galaway A.B., Oikawa M., Ny T. et al. EGF stimulates tPA activity and mRNA levels in cultured granulosa cells: mediation by pathways independent of protein kinases A and C. //Endocrinology, 1989. -Vol. 115.- P. 126-129.
  18. Guerrier D., Tran D. et al. The persistent Mullerian duct syndrom: a molecular approach. // J. Clin. Endocrinol. Metab., 1989. -Vol.68.- P.46-47.
  19. Hadson P.L., Dougas J., Donahoe P. K. et al. An immunoassay to detect MIS in males and females during normal development. //J. Clin. Endocr. Metab., 1990.- Vol.70.-P. 16- 19.
  20. Hirobe S., He W-W. et al. MIS gene expression in the cycling rat ovary correlates with recruited or graafian follicle selection. //Biol. Reprod., 1994.- Vol.50.- P. 1238-1241.
  21. Hirobe S., He W-W. et al. Expression of MIS mRNA in granulosa and Sertoli cells coincides with it’s mitotic activity. // Endocrinol., 1992. - Vol.131.-P. 854-857.
  22. Hutson J.M., Donahoe P.K. Hormonal control of testicular descent. //Endocr. Rev., 1986.-Vol. P.-270-275.
  23. Hutson J.M., Fallat M.E., Kamagata S., Donahoe P.K. et al. Phosphorylation events during mullerian duct regression. //Science, 1984.- Vol.223.- P.-586-589.
  24. Hutson J.M. Testicular feminization: a model for testicular descent in mice and men. // J. Pediatr. Surg., 1986. -Vol.211.- P. 195-198.
  25. Jones K.L., Gospodarowicz D. Biological activity of a growth factor for ovarian cells. //Proc. Nat. Acad. Sei. USA., 1974.- Vol.71.- P.3372- 3375.
  26. Josso N. АМН: new prospectives fora sexist molecule. //Endocr. Rev., 1986. -Vol.7.- P.421-425.
  27. Josso N., Picard J.Y. АМН. // Physiol. Rev., 1986.- Vol.66. - P. 1038-1041.
  28. Jost A., Recherches sur la différenciation sexuelle de l’embryon de lapin. //Arch. Anat. Morphol. Exp., 1947.-Vol.36.-P.271-275.
  29. Lee Mary M., Donahoe P.K. MIS: a gonadal hormone with multiple functions.// Endocrine Reviews, 1993.-Vol. 14.- P. 152-155.
  30. Lin H.Y., Wang X.F. étal. Expression cloning of the TGF-b2 receptor, a functional transmembrane serine/threonine kinase. // Cell, 1992.-Vol.68.- P.1-4.
  31. MacLaughlin D.T., Epstein J., Donahoe P. Bioassay, purification, cloning and expression of MIS. // Methods Enzymol., 1991.- Vol. 198. - P.358-362.
  32. Mathews L.S., Vale W. W. Expression cloning of an activin receptor, a predicted transmembrane serine kinase. // Cell, 1991.- Vol. 65. - P.973-974.
  33. Mulheron G.W., Schomberg D.W. The intraovarian TGF system, from the Ovary EYAdashi, PCK Leung, 1993.
  34. Nakano R., Mizuno T. et al. Growth of ovarian follicles in rats in the absence of gonadotropins. //J. Reprod. Fert., 1975.- Vol.45. - P.545- 548.
  35. Rey R.A., C. Lhomme et al. АМН as serum marker of granulosa cell tumours of the ovary: comparative study with serum a-inhibin and estradiol. 1996.
  36. Speroff L., Glass R.H., Kase N. Clinical Gynecoligic Endocrinology and Infertility, 1994.
  37. Takahashi M., Koide S., Donahoe P.K. MIS as oocyte meiosis inhibitor. / /Molecular and Cellular Endocrinology, 1986.-Vol.47.- P.225- 227.
  38. Teng C.S. Qualification of MIS in developing chick gonads by a competitive enzyme-linked immunosorbent assay. //Dev. Biol., 1987. - Vol. 123.- P.255-258.
  39. Tsafriri A., Pomarantz S.H. Oocyte maturation inhibitor. //Clin. Endocr. Metab., 1986.- Vol. 15. - P. 157-159.
  40. Ueno S., Manganaro T.F., Donahoe P. K. Human recombinant MIS inhibition of rat oocyte meiosis is reversed by epidermal growth factor in vitro. // Endocrinology, 1988. - Vol.123.- P.1652-1654.
  41. Ueno S., Takahashi M., Manganaro T., Ragin R., Donahoe P.K. Cellular localization of MIS in the developing rat ovary. // Endocrin., 1989.-Vol. 124.-№2.- P. 1000-1002.
  42. Vigier B., Forest M.G., Eychenne et al. АМН produces endocrine sex reversal of fetal ovaries. // Proc. Nat. Acad. Sei. USA., 1989.- Vol.86.- P.3684-3687.
  43. Vigier B., Watrin F, Magre S., Tran D., Josso N. Purified bovine АМН induces a characteristic freemartin effect on fetal rat prospective ovaries exposed to it in vitro. // Development, 1987.- Vol. 100. - P.43-45.

Дополнительные файлы

Доп. файлы
Действие
1. JATS XML

© ООО «Эко-Вектор», 1999



СМИ зарегистрировано Федеральной службой по надзору в сфере связи, информационных технологий и массовых коммуникаций (Роскомнадзор).
Регистрационный номер и дата принятия решения о регистрации СМИ: серия ПИ № ФС 77 - 66759 от 08.08.2016 г. 
СМИ зарегистрировано Федеральной службой по надзору в сфере связи, информационных технологий и массовых коммуникаций (Роскомнадзор).
Регистрационный номер и дата принятия решения о регистрации СМИ: серия Эл № 77 - 6389
от 15.07.2002 г.