Антимюллеровский фактор
- Авторы: Бебия З.Н.1, Орлов В.М.1
-
Учреждения:
- Санкт-Петербургская медицинская академия последипломного образования
- Выпуск: Том 48, № 2 (1999)
- Страницы: 66-70
- Раздел: Научные обзоры
- Статья получена: 15.05.1999
- Статья одобрена: 16.11.2021
- Статья опубликована: 15.05.1999
- URL: https://journals.eco-vector.com/jowd/article/view/88153
- DOI: https://doi.org/10.17816/JOWD88153
- ID: 88153
Цитировать
Полный текст
Аннотация
Антимюллеровский фактор - яичниковый гормон, который относится к группе трансформирующих факторов роста-b. АМФ продуцируется и мужской и женской гонадами - клетками Сертоли яичка и гранулезными клетками яичника. В процессе эмбриогенеза мужского организма АМФ вызывает регресс мюллеровых протоков, а тестостерон-дифференцировку вольфовых протоков. В женском организме в процессе эмбриогенеза отсутствие АМФ и тестостерона приводит к регрессу вольфовых протоков, но способствует дифференцировке мюллеровых протоков и развитию из них внутренних женских половых органов. АМФ продолжает продуцироваться гранулезными клетками на протяжении репродуктивного периода женщины.
Выяснено, что он ингибирует возобновление мейоза в овоцитах. Кроме того, АМФ влияет на стероидогенез, он снижает активность ароматазы, вызывая уменьшение продукции эстрадиола и повышение уровня андрогенов в фолликуле. АМФ угнетает митозы в гранулезных клетках и снижает число ЛГ-рецепторов на них. АМФ является антагонистом эпидермального фактора роста и может ингибировать стимулированный им тканевой активатор плазминогена, играющий важную роль в процессе разрыва фолликула при овуляции. Таким образом, АМФ обладает ингибирующим влиянием на все компоненты фолликула, включая рост гранулезных клеток, стероидогенез, созревание яйцеклетки и разрыв фолликула. Сделано предположение об определенной роли АМФ в патогенезе синдрома поликистозных яичников.
Ключевые слова
Полный текст
Антимюллеровский фактор (АМФ) - гормон, который вырабатывается в гонадах в процессе половой дифференцировки зародыша по мужскому типу и вызывает регресс мюллеровых протоков (предшественников женских внутренних половых органов).
Jost впервые выдвинул предположение наличие тестикулярного фактора, подавляющего развитие мюллеровых протоков в 1947 году [27]. Антимюллеровский фактор (антимюллеровский гормон) был идентифицирован, выделен и рекомбинантно синтезирован [5, 12, 25, 30].
Он относится к группе трансформирующих факторов роста b (transforming growing factor-b), участвующих в росте и дифференцировке клеток. Гликопротеины этого семейства синтезируются в виде неактивных димеров-предшественников и для активации подвергаются посттрансляционному процессингу - расщеплению и диссоциации субъединиц.
Ген АМФ у человека находится на коротком плече 19 хромосомы [8].
АМФ вырабатывается в гонадах обоих полов - клетками Сертоля яичек и гранулезными клетками яичника [12, 30].
Физиологические функции АМФ в мужском организме
Инволюция мюллеровых протоков. В процессе эмбриогенеза по мужскому типу АМФ вызывает инволюцию мюллеровых протоков у зародыша, в то время как тестостерон стимулирует дифференцировку вольфовых протоков. Уровень АМФ в сыворотке крови новорожденных мужского пола - около 30 нг/мл. Это несколько выше, чем у недоношенных детей. В первый год жизни этот показатель несколько увеличивается, достигая максимума около 50 нг/мл. Затем уровень АМФ постепенно снижается (после 51 летнего возраста) до базального уровня 2-5 нг/мл, который наблюдается в юношеском и взрослом возрасте [18].
Опущение яичек. Имеются данные о влиянии АМФ на опущение яичек в мужском организме. Выделяют 3 стадии опущения яичек в норме [21]:
- Перемещение гонад во время раннего эмбриогенеза, которое происходит у обоих полов.
- Трансабдоминальное перемещение яичек вследствие роста gubernaculum.
- Продвижение через паховый канал.
Считается, что в регуляции второй стадии участвует АМФ, а в третьей - андрогены. При развитии синдрома нечувствительности к андрогенам, когда действие АМФ не нарушено, опущение яичек у большинства пациентов происходит до пахового кольца [23]. В то же время при синдроме персистирующих мюллеровых протоков, когда отсутствует действие АМФ, а действие андрогенов не нарушено, - яички остаются в брюшной полости [17]. Механизм действия АМФ на gubernaculum (по видимости - мишень АМФ) точно не установлен.
Созревание легочной ткани. Синдром дыхательных расстройств у новорожденных вследствие недостаточной продукции сурфактанта чаще случается у мальчиков. Возможное объяснение этого факта заключается в том, что андрогены и АМФ подавляют синтез фосфатидинхолина - основного компонента сурфактанта, продуцируемого фибробластами легочной ткани [6].
Физиологические функции АМФ в женском организме
При развитии плода по женскому типу дифференцировка мюллеровых протоков происходит спонтанно, вследствие отсутствия АМФ, а инволюция вольфовых структур - вследствие отсутствия тестостерона. В норме в эмбриональном периоде АМФ не вырабатывается у плодов женского пола, и яичники до рождения девочки не подвергаются воздействию АМФ. В яичниках продукция АМФ начинается после рождения и увеличивается в период половой зрелости и у взрослых женщин [3, 37].
В течение первых лет жизни АМФ не определяется в сыворотке крови у девочек. Он начинает определяться, начиная приблизительно с 20-летнего возраста, и составляет около 2 нг/мл. Концентрация АМФ сыворотки крови в репродуктивном периоде сравнима с таковой у взрослых мужчин - 2-5 нг/мл. Такой же уровень АМФ определяется в фолликулярной жидкости, полученной во время ЭКО [28].
Выработка АМФ не ограничивается только эмбриональным периодом. Тот факт, что секреция АМФ у женщин продолжается на протяжении всего репродуктивного периода, дает повод предположить, что данный фактор роста выполняет определенные функции в репродуктивной системе женщины [28].
Известно, что АМФ синтезируется гранулезными клетками фолликулов у женщин репродуктивного и более старшего возраста. Однако роль, которую он выполняет в организме женщины, точно не установлена.
Механизм действия
АМФ. Молекулярный механизм действия АМФ до конца не изучен. Считается, что он связан с дефосфорилированием клеточных рецепторов [22]. Доказано, что АМФ блокирует вызываемое эпидермальным фактором роста (EGF) фосфорилирование тирозина клеточных мембран, а также аутофосфорилирование рецепторов EGF [7, 39]. АМФ является антагонистом эпидермального фактора роста (EGF).
Функции EGF:
- EGF и TGFа (трансформирующий фактор роста-а) рассматриваются как основные внутрияичниковые стимуляторы деления фолликулярных клеток (в частности - митоза гранулезы) [24, 32, 33].
- EGF стимулирует созревание (реинициацию мейоза) ооцитов [9, 14, 32].
- EGF стимулирует выработку клетками гарнулезы активатора тканевого плазминогена (ТР), играющего важную роль в процессе овуляторного разрыва фолликула (tissue-type plasminogen activator) [16].
Все вышеперечисленные действия EGF в фолликулах могут блокироваться АМФ, тем более, если содержание последнего повышено [32].
Рецепторы АМФ гомологичны рецепторам активина и трансформирующего фактора роста (TGF)-b2 [29, 31]. Они были локализованы (методом in situ hybridization) на мезенхимальных клетках, окружающих мюллеровы протоки, а также на развивающихся ооцитах и клетках гранулезы в преантральных и антральных фолликулах [28].
АМФ был обнаружен в яичниках и фолликулярной жидкости и животных, и человека. Его синтез осуществляют клетки гранулезы [4, 26]. По данным Baar ends W.M. et al., [1] экспрессия РНК АМФ и рецепторов АМФ 2-го типа наблюдается в гранулезных клетках небольших преантральных фолликулов; интенсивность экспрессии достигает максимальной величины в больших преантральных фолликулах, а затем снижается и в небольших антральных фолликулах становится в 2,5-3 раза ниже, чем в больших преантральных. В последующем экспрессия РНК АМФ и рецепторов АМФ 2-го типа продолжает снижаться и практически исчезает в больших антральных фолликулах, в фолликулах, находящихся на конечной стадии созревания, и в желтых телах [19].
Таким образом, перед овуляцией, когда ооциты должны возобновлять мейотическое деление, окраска АМФ в предовуляторных фолликулах исчезает [20, 40]. В связи с этим было высказано предположение о влиянии АМФ на процесс созревания половых клеток. Такое предположение подтверждается данными о способности АМФ ингибировать реинициацию мейоза ооцитов [8, 36].
АМФ и реинициация мейоза ооцитов. Ооциты плода вступают в первое деление мейоза незадолго или сразу после родов, но деление останавливается в конце профазы I деления (стадия диплотены). Возобновление мейотического деления происходит за несколько часов до овуляции и вызывается предовуляторным пиком гонадотропинов (ЛГ).
Считается, что в фолликуле вырабатываются факторы, тормозящие реинициацию мейоза ооцита и поддерживающие это торможение до момента, когда преовуляторный пик ЛГ преодолевает их ингибирующее влияние. Так как ооцит не имеет ЛГ-рецепторов, действие ЛГ по “разблокированию” мейоза, по-видимому, передается на ооцит через другие клетки фолликула.
Различные факторы рассматриваются как возможные ингибиторы реинициации мейоза ооцита:
- фактор, ингибирующий созревание (мейоз) ооцита (ФИС),
- циклический аденозинмонофосфат (цАМФ),
- стероиды,
- пурины,
- АМФ.
Наиболее изучена роль цАМФ в регуляции мейоза ооцитов [36]. Мейотическое деление ооцита регулируется внутриклеточным содержанием цАМФ. Ингибирующее количество цАМФ вырабатывается не самим ооцитом, а поступает из клеток гранулезы и кумулюсных клеток фолликула через межклеточные контакты. Вслед за предовуляторным пиком ЛГ в фолликулах нарушаются межклеточные контакты клеток гранулезы, кумулюсных клеток и ооцита. В результате происходит падение уровня цАМФ в ооците. Это делает возможным реинициацию мейоза ооцита и начало второго деления мейоза.
Механизм действия ФИС связан с цАМФ, синтезируемым кумулюсными клетками фолликула [38].
Способность АМФ ингибировать мейоз как изолированных ооцитов, так и в комплексах “ооцит-кумулюсные клетки”, а также результаты других исследований [36] говорят о том, что АМФ воздействует на ооцит не через другие клетки фолликула и не за счет цАМФ-зависимо го механизма. Как предполагается, механизм воздействия АМФ связан с угнетением тирозин киназы ооцита, ответственной за вступление ооцита в мейоз [22].
Нейтрализация действия АМФ на реинициацию мейоза ооцитов при помощи антиАМФ- антител и эпидермального фактора роста (EGF) подтверждает специфичность воздействия АМФ [38, 39].
Интересно, что АМФ препятствует реинициации мейоза ооцитов в фолликулах, которые не достигли финальной стадии роста [28]. В связи с этим заслуживают внимания данные M.Follat et al. [15], которые обнаружили повышение уровня АМФ в сыворотке крови и фолликулярной жидкости, полученной при ЭКО у пациенток с синдромом поликистозных яичников.
Воздействие на изолированные ооциты ФСГ, ЛГ, прогестерона, 17Ь-эстрадиола и тестостерона не повлияло на угнетение созревания ооцита, вызванного АМФ [36]. Это подтверждает то, что действие АМФ не связано с цАМФ и его продукцией кумулюсными клетками, и говорит о том, что гонадотропины in vitro не в состоянии преодолеть ингибирующее влияние АМФ.
АМФ и ЛГ-рецепторы гранулезы. Согласно экспериментальным данным АМФ обладает еще одним свойством, а именно: снижает количество ЛГ- рецепторов на гранулезных клетках [11].
АМФ и стероидогенез в яичниках. Отсутствие воздействия АМФ является необходимым для развития нормального стероидогенеза в яичниках. Воздействие АМФ на женский плод в раннем эмбриональном периоде вызывает агенезию мюллеровых структур и “изменение гормонального пола яичников” [2, 41, 42]. Согласно экспериментальным данным, при воздействии на яичники плода в эмбриональном периоде, АМФ угнетал репликацию оогоний и активность ароматазы гранулезных клеток [10, 41, 42], что приводило к изменению гормональной среды фолликула (“изменение гормонального пола яичника”) - снижение уровня эстрогенов и повышение уровня андрогенов.
В незрелой ткани яичников при культивации с АМФ наблюдается пониженная активность ароматазы, и как следствие - снижение синтеза эстрадиола и повышенная продукция тестостерона [41]. При изучении влияния АМФ на морфогенез гонад у мышей было обнаружено, что при воздействии высокой концентрации АМФ у особей женского пола наблюдалась вирилизация наружных гениталий, развитие слепого влагалища, отсутствие матки или яйцеводов; их гонады представляли собой тяжеподобные образования, похожие на семявыносящие протоки, содержащие незначительное количество половых клеток.
Ингибирование роста клеток. АМФ способен ингибировать рост клеток. Есть сведения об угнетении АМФ клеток ганулезы [35]. Экспериментально было показано, что рост клеток карциномы яичника ингибировался частично очищенным бычьим АМФ. Эта опухоль из поверхностного эпителия яичника - производного целомического эпителия - развивается преимущественно в постменопаузе, когда продукция АМФ резко снижается [13]. Также в эксперименте было показано, что АМФ действует на клетки А431 - клетки, выделенные из плоскоклеточной карциномы шейки матки и имеющие большое количество EGF-рецепторов. Действие АМФ в этом случае объясняют угнетением EGF- зависимой тирозин киназы [22].
Было высказано предположение о возможном воздействии АМФ на ткань мюллеровых структур в постнатальном периоде с целью предотвращения их злокачественной трансформации и в связи с этим об использовании АМФ в качестве лечебного антиопухолевого агента.
Заключение
Помимо общеизвестного влияния на дегенерацию мюллеровых протоков у мальчиков, АМФ имеет значение на определенных стадиях опущения яичек и, возможно, влияет на созревание сурфактанта.
Как показывают результаты исследований, АМФ в женском организме оказывает ингибирующее воздействие на все компоненты фолликула, влияя на процесс созревания ооцита, рост и развитие фолликула, механизм овуляции. И так, АМФ:
- ингибирует реинициацию мейоза ооцитов; механизм этого воздействия не является цАМФ- зависимым. Экспериментальные данные [36] показали, что in vitro гонадотропины не смогли преодолеть это ингибирующее воздействие;
- нарушает стероидогенез в фолликулах. За счет угнетения ароматазы гранулезных клеток в фолликулах значительно снижается уровень эстрадиола, а уровень тестостерона растет [10, 41, 42];
- угнетает митоз клеток гранулезы [35];
- снижает количество ЛГ- рецепторов на клетках гранулезы [11];
- является антагонистом EGF и снижает выработку активатора тканевого тромбопластина, который играет важную роль в процессе овуляторного разрыва фолликула [16].
Следовательно гиперпродукция АМФ в женском организме может привести к нарушению половой дифференцировки зародыша и в последующем нарушить механизм роста и развития фолликула. С учетом данных M.Follat с соавт. [15] наиболее вероятно предположить, что АМФ имеет непосредственное отношение к патогенезу синдрома поликистозных яичников.
Об авторах
З. Н. Бебия
Санкт-Петербургская медицинская академия последипломного образования
Автор, ответственный за переписку.
Email: info@eco-vector.com
Россия, Санкт-Петербург
В. М. Орлов
Санкт-Петербургская медицинская академия последипломного образования
Email: info@eco-vector.com
Россия, Санкт-Петербург
Список литературы
- Baarends W.M., Uilenbroek J.T., Kramer P., Hoogerbrugge J.W. et al. АМН and АМН type 2 receptor mRNA expression in rat ovaries during postnatal development, the estrous cycle and gonadotropin-induced follicle growth // Endocrinology, 1995.-Vol.136.- Ns 11. - P.4951-4954.
- Behringer P.P., Cate P.L., Froelick G.J., Palmitter P.D., Brinster E. Abnormal sexual development in transgenic mice // Nature, 1990. - Vol. 345.- P. 167-170.
- Bezard J., Vigier B. ét al. Immunocytochemical study of АМН in sheep ovaries follicles during fetal and post-natal development//J. Peprod. Fert., 1987.- Vol.80.-P.509- 512.
- Cate P.L., Donahoe P.K., MacLaughlin D.T. MIS, Peptide growth factors and their receptors. Berlin, 1990.
- Cate P.L., Ninfa E.G. et al. Development of MIS as an anticancer drug // Cold Spring Harb. Symp. Quant. Biol., 1986.-Vol.51.- P.641-643.
- Catlin E.A., Manganaro T.F., Donahoe P.K. MIS depresses accumulation in vitro of disaturated phosphatidynecholine in fetal rat lung. //Am. J. Obstetr. Gynec., 1988.- Vol.159.-P.1299-1302.
- Catlin E.A., Uitvlugt N.D., Donahoe P.K. Mullerian inhibiting substance blocks EGF receptor phosphorylation in fetal rat lung membranes. // Metabolism, 1991. -Vol.40.-P.1178-1183.
- Cohen-Haguenauer O., Picard J.Y. et al. Mapping of the gene forAMFto the short arm of human chromosome
- 19. //Cytogenet. Cell. Genet., 1987.- Vol.44.-P. 2-4.
- Dekel N., Sherizlyl. EGF induces maturation of rat follicle-enclosed oocytes.//Endocrinology, 1985.- Vol. 116.-P.406-409.
- Di Clemente N., Ghaffari S. et al. A quantative and interspecific test for biological activity of АМН: the fetal ovary aromatase assay.// Development, 1992. - Vol. 114.- P. 721- 724.
- Di Clemente N., Goxe В., Pemy J.J. et al. Inhibitory effect of АМН upon the expression of aromatase and LH receptors by cultured granulosa cells of rat and porcine immature ovaries.// Endocrine, 1994.-Vol.2.-P.553-557.
- Donahoe P.K., Cate P.L., Epstein J. et al. MIS: gene structure and mechanism of action. //Pecent Prog. Horm. Res., 1987.-Vol.43.-P.431- 435.
- Donahoe P.K., Swann D.A. et al. Mullerian duct regression in the embryo correlated with cytotoxic activity against human ovarian cancer. //Science, 1979.-Vol.205.-P.913-916.
- Downs S.M. Specificity of EGF action on maturation of the murine oocyte and cumulus oophorus in vitro. //Biol. Reprod., 1989.-Vol.41.- P.371-376.
- Fallat M. et al. MIS in follicular fluid and serum: a comparison of patients with tubai factor infertility, PCOS and endometriosis. //Fert. Ster., 1997. - Vol. 67.- P. 5962-5964.
- Galaway A.B., Oikawa M., Ny T. et al. EGF stimulates tPA activity and mRNA levels in cultured granulosa cells: mediation by pathways independent of protein kinases A and C. //Endocrinology, 1989. -Vol. 115.- P. 126-129.
- Guerrier D., Tran D. et al. The persistent Mullerian duct syndrom: a molecular approach. // J. Clin. Endocrinol. Metab., 1989. -Vol.68.- P.46-47.
- Hadson P.L., Dougas J., Donahoe P. K. et al. An immunoassay to detect MIS in males and females during normal development. //J. Clin. Endocr. Metab., 1990.- Vol.70.-P. 16- 19.
- Hirobe S., He W-W. et al. MIS gene expression in the cycling rat ovary correlates with recruited or graafian follicle selection. //Biol. Reprod., 1994.- Vol.50.- P. 1238-1241.
- Hirobe S., He W-W. et al. Expression of MIS mRNA in granulosa and Sertoli cells coincides with it’s mitotic activity. // Endocrinol., 1992. - Vol.131.-P. 854-857.
- Hutson J.M., Donahoe P.K. Hormonal control of testicular descent. //Endocr. Rev., 1986.-Vol. P.-270-275.
- Hutson J.M., Fallat M.E., Kamagata S., Donahoe P.K. et al. Phosphorylation events during mullerian duct regression. //Science, 1984.- Vol.223.- P.-586-589.
- Hutson J.M. Testicular feminization: a model for testicular descent in mice and men. // J. Pediatr. Surg., 1986. -Vol.211.- P. 195-198.
- Jones K.L., Gospodarowicz D. Biological activity of a growth factor for ovarian cells. //Proc. Nat. Acad. Sei. USA., 1974.- Vol.71.- P.3372- 3375.
- Josso N. АМН: new prospectives fora sexist molecule. //Endocr. Rev., 1986. -Vol.7.- P.421-425.
- Josso N., Picard J.Y. АМН. // Physiol. Rev., 1986.- Vol.66. - P. 1038-1041.
- Jost A., Recherches sur la différenciation sexuelle de l’embryon de lapin. //Arch. Anat. Morphol. Exp., 1947.-Vol.36.-P.271-275.
- Lee Mary M., Donahoe P.K. MIS: a gonadal hormone with multiple functions.// Endocrine Reviews, 1993.-Vol. 14.- P. 152-155.
- Lin H.Y., Wang X.F. étal. Expression cloning of the TGF-b2 receptor, a functional transmembrane serine/threonine kinase. // Cell, 1992.-Vol.68.- P.1-4.
- MacLaughlin D.T., Epstein J., Donahoe P. Bioassay, purification, cloning and expression of MIS. // Methods Enzymol., 1991.- Vol. 198. - P.358-362.
- Mathews L.S., Vale W. W. Expression cloning of an activin receptor, a predicted transmembrane serine kinase. // Cell, 1991.- Vol. 65. - P.973-974.
- Mulheron G.W., Schomberg D.W. The intraovarian TGF system, from the Ovary EYAdashi, PCK Leung, 1993.
- Nakano R., Mizuno T. et al. Growth of ovarian follicles in rats in the absence of gonadotropins. //J. Reprod. Fert., 1975.- Vol.45. - P.545- 548.
- Rey R.A., C. Lhomme et al. АМН as serum marker of granulosa cell tumours of the ovary: comparative study with serum a-inhibin and estradiol. 1996.
- Speroff L., Glass R.H., Kase N. Clinical Gynecoligic Endocrinology and Infertility, 1994.
- Takahashi M., Koide S., Donahoe P.K. MIS as oocyte meiosis inhibitor. / /Molecular and Cellular Endocrinology, 1986.-Vol.47.- P.225- 227.
- Teng C.S. Qualification of MIS in developing chick gonads by a competitive enzyme-linked immunosorbent assay. //Dev. Biol., 1987. - Vol. 123.- P.255-258.
- Tsafriri A., Pomarantz S.H. Oocyte maturation inhibitor. //Clin. Endocr. Metab., 1986.- Vol. 15. - P. 157-159.
- Ueno S., Manganaro T.F., Donahoe P. K. Human recombinant MIS inhibition of rat oocyte meiosis is reversed by epidermal growth factor in vitro. // Endocrinology, 1988. - Vol.123.- P.1652-1654.
- Ueno S., Takahashi M., Manganaro T., Ragin R., Donahoe P.K. Cellular localization of MIS in the developing rat ovary. // Endocrin., 1989.-Vol. 124.-№2.- P. 1000-1002.
- Vigier B., Forest M.G., Eychenne et al. АМН produces endocrine sex reversal of fetal ovaries. // Proc. Nat. Acad. Sei. USA., 1989.- Vol.86.- P.3684-3687.
- Vigier B., Watrin F, Magre S., Tran D., Josso N. Purified bovine АМН induces a characteristic freemartin effect on fetal rat prospective ovaries exposed to it in vitro. // Development, 1987.- Vol. 100. - P.43-45.
Дополнительные файлы
