Современные представления о механизмах инициации и регуляции родовой деятельности

Обложка


Цитировать

Полный текст

Открытый доступ Открытый доступ
Доступ закрыт Доступ предоставлен
Доступ закрыт Доступ платный или только для подписчиков

Аннотация

Обоснование. Механизмы инициации и регуляции родовой деятельности до сих пор недостаточно изучены. В настоящее время существует значительное число теорий, объясняющих механизм наступления и регуляции родов, многие из которых представляют только исторический интерес. Между тем осознание истинных причин и механизмов регуляции родовой деятельности позволит осуществлять профилактику не только преждевременных и запоздалых родов, но и аномалий родовой деятельности.

Цель — изучить современные представления о механизмах инициации и регуляции родовой деятельности.

Материалы и методы. Проведен детальный систематический анализ современной отечественной и зарубежной литературы, посвященной механизмам инициации и регуляции родовой деятельности. В исследовании использовали данные, размещенные на таких электронных ресурсах, как e-LIBRARY, Scopus, PubMed, MEDLINE, ScienceDirect и Cochrane Library (с января 2015 до декабря 2021 г.).

Заключение. Наиболее значимую роль в инициации и регуляции родовой деятельности, по мнению большинства современных авторов, играют эпигенетические механизмы, которые отражают процесс реализации генетически закодированной информации в ответ на действие значительного числа экзогенных и эндогенных сигналов, сочетание которых может варьировать от пациентки к пациентке.

Полный текст

Доступ закрыт

Об авторах

Виктор Андреевич Мудров

Читинская государственная медицинская академия

Автор, ответственный за переписку.
Email: mudrov_viktor@mail.ru
ORCID iD: 0000-0002-5961-5400
Scopus Author ID: 57204736023

канд. мед. наук, доцент

Россия, Чита

Список литературы

  1. ООО «Российское общество акушеров-гинекологов» (РОАГ), Ассоциация анестезиологов-реаниматологов (ААР), Ассоциация акушерских анестезиологов-реаниматологов (АААР). Роды одноплодные, самопроизвольное родоразрешение в затылочном предлежании (нормальные роды). Клинические рекомендации. 2021. [дата обращения 11.01.2022]. Доступ по ссылке: http://www.consultant.ru/document/cons_doc_LAW_388617/
  2. Акушерство: учебник / под ред. В.Е. Радзинского, А.М. Фукса. М.: ГЭОТАР-Медиа, 2016.
  3. Здравоохранение в России. 2019: статистический сборник. Москва: Росстат, 2019. [дата обращения 11.01.2022]. Доступ по ссылке: https://rosstat.gov.ru/storage/mediabank/Zdravoohran-2019.pdf
  4. Баскетт Т.Ф., Калдер Э.А., Сабаратнам Арулкумаран. Оперативное акушерство Манро Керра. М.: Рид Элсивер, 2015.
  5. Айламазян Э.К., Тарасова М.А., Баранов В.С. и др. Акушерство: учебник. 10-е изд. М.: ГЭОТАР-Медиа, 2019.
  6. Стрижаков А.Н., Игнатко И.В., Давыдов А.И. Акушерство: учебник. М.: ГЭОТАР-Медиа, 2020.
  7. Ушакова Г.А., Петрич Л.Н. Современные представления о механизмах развития родовой деятельности. Обзор // Мать и Дитя в Кузбассе. 2016. Т. 65. № 2. С. 4–10.
  8. Mendelson C.R., Gao L., Montalbano A.P. Multifactorial regulation of myometrial contractility during pregnancy and parturitio // Front. Endocrinol. 2019. Vol. 10. P. 714. doi: 10.3389/fendo.2019.00714
  9. Renthal N.E., Williams K.C., Montalbano A.P. et al. Molecular regulation of parturition: A myometrial perspective // Cold Spring Harb. Perspect. Med. 2015. Vol. 11. No. 5. P. a023069. doi: 10.1101/cshperspect.a023069
  10. Ilicic M., Zakar T., Paul J.W. The regulation of uterine function during parturition: an update and recent advances // Reprod. Sci. 2020. Vol. 27. No. 1. P. 3–28. doi: 10.1007/s43032-019-00001-y
  11. Sivarajasingam S.P., Imami N., Johnson M.R. Myometrial cytokines and their role in the onset of labour // J. Endocrinol. 2016. Vol. 231. No. 3. P. R101–R119. doi: 10.1530/JOE-16-0157
  12. Ando K., Hedou J.J., Feyaerts D. et al. A peripheral immune signature of labor induction // Front. Immunol. 2021. Vol. 12. P. 725989. doi: 10.3389/fimmu.2021.725989
  13. Leimert K.B., Xu W., Princ M.M. et al. Inflammatory amplification: A central tenet of uterine transition for labor // Front. Cell Infect. Microbiol. 2021. Vol. 11. P. 660983. doi: 10.3389/fcimb.2021.660983
  14. Lim R., Lappas M. Role of IRG1 in regulating pro-inflammatory and pro-labor Mediators in human myometrium // Reprod. Sci. 2020. Vol. 27. No. 1. P. 61–74. doi: 10.1007/s43032-019-00133-1
  15. Reinl E.L., Zhao P., Wu W. et al. Na+-Leak channel, non-selective (NALCN) regulates myometrial excitability and facilitates successful parturition // Cell Physiol. Biochem. 2018. Vol. 48. No. 2. P. 503–515. doi: 10.1159/000491805
  16. Ferreira J.J., Amazu C., Puga-Molina L.C. et al. SLO2.1/NALCN a sodium signaling complex that regulates uterine activity // iScience. 2021. Vol. 24. No. 11. P. 103210. doi: 10.1016/j.isci.2021.103210
  17. Cappelletti M., Doll J.R., Stankiewicz T.E. et al. Maternal regulation of inflammatory cues is required for induction of preterm birth // JCI Insight. 2020. Vol. 5. No. 22. P. e138812. doi: 10.1172/jci.insight.138812
  18. Beck S., Buhimschi I.A., Summerfield T.L. et al. Toll-like receptor 9, maternal cell-free DNA and myometrial cell response to CpG oligodeoxynucleotide stimulation // Am. J. Reprod. Immunol. 2019. Vol. 81. No. 4. P. e13100. doi: 10.1111/aji.13100
  19. Gomez-Lopez N., Garcia-Flores V., Chin P.Y. et al. Macrophages exert homeostatic actions in pregnancy to protect against preterm birth and fetal inflammatory injury // JCI Insight. 2021. Vol. 6. No. 19. P. e146089. doi: 10.1172/jci.insight.146089
  20. Shynlova O., Nadeem L., Zhang J. et al. Myometrial activation: Novel concepts underlying labor // Placenta. 2020. Vol. 92. P. 28–36. doi: 10.1016/j.placenta.2020.02.005
  21. Marinello W., Feng L., Allen T.K. Progestins inhibit interleukin-1β-Induced matrix metalloproteinase 1 and interleukin 8 expression via the glucocorticoid receptor in primary human amnion mesenchymal cells // Front. Physiol. 2020. Vol. 11. P. 900. doi: 10.3389/fphys.2020.00900
  22. Lozovyy V., Richardson L., Saade G., Menon R. Progesterone receptor membrane components: key regulators of fetal membrane integrity // Biol. Reprod. 2021. Vol. 104. No. 2. P. 445–456. doi: 10.1093/biolre/ioaa192
  23. Nadeem L., Balendran R., Dorogin A. et al. Pro-inflammatory signals induce 20α-HSD expression in myometrial cells: A key mechanism for local progesterone withdrawal // J. Cell Mol. Med. 2021. Vol. 25. No. 14. P. 6773–6785. doi: 10.1111/jcmm.16681
  24. Marshall S.A., Senadheera S.N., Parry L.J., Girling J.E. The role of relaxin in normal and abnormal uterine function during the menstrual cycle and early pregnancy // Reprod. Sci. 2017. Vol. 24. No. 3. P. 342–354. doi: 10.1177/1933719116657189
  25. Nowak M., Gram A., Boos A. et al. Functional implications of the utero-placental relaxin (RLN) system in the dog throughout pregnancy and at term // Reproduction. 2017. Vol. 154. No. 4. P. 415–431. doi: 10.1530/REP-17-0135
  26. Menon R., Behnia F., Polettini J., Richardson LS. Novel pathways of inflammation in human fetal membranes associated with preterm birth and preterm pre-labor rupture of the membranes // Semin. Immunopathol. 2020. Vol. 42. No. 4. P. 431–450. doi: 10.1007/s00281-020-00808-x
  27. Augustine R.A., Seymour A.J., Campbell R.E. et al. Integrative neuro-humoral regulation of oxytocin neuron activity in pregnancy and lactation // J. Neuroendocrinol. 2018. doi: 10.1111/jne.12569
  28. Seymour A.J., Scott V., Augustine R.A. et al. Development of an excitatory kisspeptin projection to the oxytocin system in late pregnancy // J. Physiol. 2017. Vol. 595. No. 3. P. 825–838. doi: 10.1113/JP273051
  29. Tsujimoto M., Aoki K., Goto Y., Ohnishi A. Molecular and functional diversity of the oxytocinase subfamily of M1 aminopeptidases // J. Biochem. 2021. Vol. 169. No. 4. P. 409–420. doi: 10.1093/jb/mvab009
  30. Uvnas-Moberg K., Ekstrom-Bergstrom A., Berg M. et al. Maternal plasma levels of oxytocin during physiological childbirth – a systematic review with implications for uterine contractions and central actions of oxytocin // BMC Pregnancy Childbirth. 2019. Vol. 19. No. 1. P. 285. doi: 10.1186/s12884-019-2365-9
  31. Armstrong W.E. Kisspeptin: a new peptidergic system regulating oxytocin neurons and their reproductive plasticity in the hypothalamo-neurohypophysial system // J. Physiol. 2017. Vol. 595. No. 3. P. 611–612. doi: 10.1113/JP273364
  32. Wray S., Prendergast C. The myometrium: From excitation to contractions and labour // Adv. Exp. Med. Biol. 2019. Vol. 1124. P. 233–263. doi: 10.1007/978-981-13-5895-1_10
  33. Бологов М.А., Пенжоян Г.А. Влияние стресса на развитие аномалий родовой деятельности // Кубанский научный медицинский вестник. 2018. Т. 25. № 1. С. 46–53. doi: 10.25207/1608-6228-2018-25-1-46-53
  34. Michalik A., Wojcicka L., Zdun-Ryzewska A. et al. Polish adaptation of the pregnancy-related anxiety questionnaire-revised 2 for all pregnant women // Healthcare (Basel). 2021. Vol. 9. No. 7. P. 917. doi: 10.3390/healthcare9070917
  35. Sheen K., Slade P. Examining the content and moderators of women’s fears for giving birth: A meta-synthesis // J. Clin. Nurs. 2018. Vol. 27. No. 13–14. P. 2523–2535. doi: 10.1111/jocn.14219
  36. ООО «Российское общество акушеров-гинекологов» (РОАГ), Ассоциация акушерских анестезиологов-реаниматологов (АААР). Преждевременные роды. Клинические рекомендации. 2020. [дата обращения 11.01.2022]. Доступ по ссылке: https://www.dzhmao.ru/spez/klin_recom/akushGinekol/2020/prehd_rody.pdf
  37. Goldsztejn U., Nehorai A. A myofibre model for the study of uterine excitation-contraction dynamics // Sci. Rep. 2020. Vol. 10. No. 1. P. 16221. doi: 10.1038/s41598-020-72562-x
  38. He L., Lee G.T., Zhou H. et al. Expression, regulation, and function of the calmodulin accessory protein PCP4/PEP-19 in myometrium // Reprod. Sci. 2019. Vol. 26. No. 12. P. 1650–1660. doi: 10.1177/1933719119828072
  39. Philip M., Snow R.J., Gatta P.A.D. et al. Creatine metabolism in the uterus: potential implications for reproductive biology // Amino Acids. 2020. Vol. 52. No. 9. P. 1275–1283. doi: 10.1007/s00726-020-02896-3
  40. Madaan A., Nadeau-Vallee M., Rivera J.C. et al. Lactate produced during labor modulates uterine inflammation via GPR81 (HCA1) // Am. J. Obstet. Gynecol. 2017. Vol. 216. No. 1. P. 60.e1–60.e17. doi: 10.1016/j.ajog.2016.09.072
  41. Manoharan I., Prasad P.D., Thangaraju M., Manicassamy S. Lactate-dependent regulation of immune responses by dendritic cells and macrophages // Front. Immunol. 2021. Vol. 12. P. 691134. doi: 10.3389/fimmu.2021.691134
  42. Chen L., Wang L., Luo Y. et al. Integrated proteotranscriptomics of human myometrium in labor landscape reveals the increased molecular associated with inflammation under hypoxia stress // Front. Immunol. 2021. Vol. 12. P. 722816. doi: 10.3389/fimmu.2021.722816
  43. Rabotti C., Mischi M. Propagation of electrical activity in uterine muscle during pregnancy: a review // Acta Physiol. 2015. Vol. 213. No. 2. P. 406–416. doi: 10.1111/apha.12424
  44. Lutton E.J., Lammers W.J.E.P., James S. et al. Identification of uterine pacemaker regions at the myometrial-placental interface in the rat // J. Physiol. 2018. Vol. 596. No. 14. P. 2841–2852. doi: 10.1113/JP275688
  45. Kagami K., Ono M., Iizuka T. et al. A novel third mesh-like myometrial layer connects the longitudinal and circular muscle fibers-A potential stratum to coordinate uterine contractions // Sci. Rep. 2020. Vol. 10. No. 1. P. 8274. doi: 10.1038/s41598-020-65299-0
  46. Kuijsters N.P.M., Sammali F., Ye X. et al. Propagation of spontaneous electrical activity in the ex vivo human uterus // Pflügers Arch. 2020. Vol. 472. No. 8. P. 1065–1078. doi: 10.1007/s00424-020-02426-w
  47. Massenavette L., Paul W., Corriveau S. et al. Phorbol 12,13-dibutyrate-induced protein kinase C activation triggers sustained contracture in human myometrium in vitro // Am. J. Obstet. Gynecol. 2017. Vol. 217. No. 3. P. 358.e1–358.e9. doi: 10.1016/j.ajog.2017.04.041
  48. Lavie A., Shinar S., Hiersch L. et al. Uterine electrical activity, oxytocin and labor: translating electrical into mechanical // Arch. Gynecol Obstet. 2018. Vol. 297. No. 6. P. 1405–1413. doi: 10.1007/s00404-018-4721-9
  49. Lim R., Lappas M. GIT2 deficiency attenuates inflammation-induced expression of pro-labor mediators in human amnion and myometrial cells // Biol. Reprod. 2019. Vol. 100. No. 6. P. 1617–1629. doi: 10.1093/biolre/ioz041
  50. Lappas M. Copper metabolism domain-containing 1 represses the mediators involved in the terminal effector pathways of human labour and delivery // Mol. Hum. Reprod. 2016. Vol. 22. No. 4. P. 299–310. doi: 10.1093/molehr/gav075
  51. Gao L., Wang G., Liu W.N. et al. Reciprocal feedback between miR-181a and E2/ERα in byometrium enhances inflammation leading to labor // J. Clin. Endocrinol. Metab. 2016. Vol. 101. No. 10. P. 3646–3656. doi: 10.1210/jc.2016-2078

Дополнительные файлы

Доп. файлы
Действие
1. JATS XML
Скачать

© ООО «Эко-Вектор», 2022


СМИ зарегистрировано Федеральной службой по надзору в сфере связи, информационных технологий и массовых коммуникаций (Роскомнадзор).
Регистрационный номер и дата принятия решения о регистрации СМИ: серия ПИ № ФС 77 - 66759 от 08.08.2016 г. 
СМИ зарегистрировано Федеральной службой по надзору в сфере связи, информационных технологий и массовых коммуникаций (Роскомнадзор).
Регистрационный номер и дата принятия решения о регистрации СМИ: серия Эл № 77 - 6389 от 15.07.2002 г.


Данный сайт использует cookie-файлы

Продолжая использовать наш сайт, вы даете согласие на обработку файлов cookie, которые обеспечивают правильную работу сайта.

О куки-файлах