子痫前期的病因病机及危险因素的现代认识研究

封面


如何引用文章

全文:

开放存取 开放存取
受限制的访问 ##reader.subscriptionAccessGranted##
受限制的访问 订阅或者付费存取

详细

2—8%的妊娠合并子痫前期。根据文献,子痫前期与产妇和围产期发病率和死亡率的增加有关,也预示着慢性疾病在遥远的未来的发展,这是一个重要的医学和社会问题。尤其值得关注的是子痫前期的发病机制和危险因素的分子机制,目前对其研究和认识尚不充分,这就要求对这一可怕的妊娠并发症进行进一步的研究。本文介绍子痫前期的病因、发病机制及危险因素的现代认识。

全文:

现代概念认为,子痫前期(PE)临床表现为动脉高压(≥140/90 mmHg),蛋白尿(≥0.3 g/天), 并伴有水肿和各种器官和系统的破坏[1]。这些症状可能发生在怀孕期间(20周后)和产后期间长达28

2—8%的妊娠合并子痫前期,是全球孕产妇死亡的主要原因之一[2]。根据俄罗斯联邦卫生部卫生监测、分析和战略发展司2018年《统计汇编》公布的数据,俄罗斯中度子痫前期妇女发病率为27.4‰,重度子痫前期妇女发病率为8.4‰[3]。

早发子痫前期(妊娠34周前)对母亲和胎儿的预后都是最不利的。有子痫前期病史的女性在未来很可能发生慢性动脉血压、2型糖尿病、肾功能衰竭、冠心病、各种形式的心律失常等高危人群[4]。尽管现代医学取得了成就,治疗子痫前期的唯一有效方法是分娩,无论妊娠期如何,这对围产期发病率和死亡率结构有重要影响,其主要原因是早产、慢性缺氧和胎儿发育迟缓[5]。

子痫前期的形成机制在国内外得到了广泛的研究,关于该并发症的发生发展有30多种假说,其中胎盘障碍在其中起着关键作用[6]。目前,Redman于1991年提出的子痫前期发展的两阶段模型已被普遍接受。在子痫前期的第一阶段,异常的胎盘在妊娠早期发生,导致播散性内皮功能障碍,并在第二阶段形成母体综合征[7]。一般认为早期和晚期子痫前期的形成机制不同。因此88%的子痫前期的晚期发展主要是由于母亲的原因 (代谢综合征、高血压、慢性肾脏疾病等),并伴有胎盘功能障碍。只有一小部分在怀孕34周后出现子痫前期的妇女有螺旋动脉不完全重塑的迹象[8]。在所有子痫前期病例中,有12%的病例出现早发,并与广泛的胎盘病变和母亲和胎儿发生并发症的高风险有关。子痫前期早期形成的一个触发因素是妊娠初期胎盘异常[9]。

在妊娠的生理过程中,着床时,合胞滋养细胞被引入子宫内膜,为胚胎提供组织营养,直到血液营养类型建立。然后,血管内滋养细胞逆行侵入子宫血管,取代血管内皮内膜[10]。这些变化导致螺旋动脉肌壁的凋亡,从而形成低血管内压力的血管床,这有助于在整个妊娠期间维持足够的胎盘灌注。在子痫前期,这些过程是异常的,最终导致滋养层侵袭不完全和子宫胎盘血流量的形成异常[11]。

胚胎和胎盘的早期发育是在生理氧含量低(1—2%)的条件下发生的,这可能是防止胎儿氧化损伤和正常的滋养细胞功能所必需[12]。 低氧水平刺激缺氧诱导因子(HIF-1a和HIF-2a和转化生长因子β(TGF-β)的表达增加,这也抑制了滋养细胞向侵袭型的转变。子宫胎盘血流量的加强从妊娠第10周开始,伴随着氧分压显著升高, HIF-1a/HIF-2a和TGF-β表达降低,滋养细胞由增殖型向侵袭型的重组,保证了子宫血管的正常转化。妊娠10周后持续缺氧,滋养层分化过程异常, 导致螺旋动脉浸润不够深,不典型转化[13]。 缺氧介导的HIF-1a/HIF-2a和TGF-β持续过表达是化解侵袭过程的机制之一。R.E. Albers等人(2019)发现HIF-1a的延长表达导致小鼠的高血压、伴有蛋白尿的肾脏肾小球内皮病变和胎儿生长受限[14]。HIF-2α/HIF-3α作为血管内皮生长因子(VEGF)和胎盘生长因子(PIGF)的抑制剂,通过激活可溶性fms样酪氨酸激酶-1(sFlt-1)的信号通路,也对胎盘的形成产生负面影响[15]。

其致病作用不仅在于缺氧,而且还在于系统地反复发生缺血和再灌注,而缺血和再灌注伴随着活性氧的增加,从而为氧化应激的发展创造了一个良好的环境[16]。胎盘的氧化损伤诱导细胞凋亡,释放各种抗血管生成因子,促炎细胞因子和血管活性化合物到母亲的血液中,导致内皮细胞大量全身性功能障碍,并伴有炎症和血管收缩[17]。 氧化应激也可增强线粒体功能障碍。V.R. Vaka等人(2018)研究了子痫前期线粒体功能障碍及其与内皮功能障碍、全身血管痉挛、炎症和氧化应激的关系。他们得出的结论是,在子痫前期,线粒体代谢加速,伴随着钙离子含量的增加,磷酸化过程的破坏和活性氧形成的增加,其在DNA和RNA损伤、细胞死亡和内皮功能障碍的发生中起重要作用[18]自由基激活脂质过氧化和花生四烯酸代谢环加氧酶途径产物的合成过程因此,T.N. Pogorelova等人(2019年)发现在子痫前期女性中,胎盘组织中的血栓烷B2和花 生四烯酸含量比对照组女性增加了30%以上,而血管扩张剂前列环素的浓度下降了20%[19]。 花生四烯酸代谢产物参与炎症过程的发展,也影响血小板的粘附和聚集,从而导致血管内凝血病、血栓形成、胎盘梗死和功能不充分的子宫胎盘血流量更大的功能恶化[20]。此外,氧化应激通过刺激促炎细胞因子(如肿瘤坏死因子a和白细胞介(IL)-6)的产生,以及减少抗炎细胞因子(IL-10)的合成来增强炎症反应,从而导致细胞损伤[21]。同时,随着氧化应激的发展,胎盘抗氧化机制的工作受到抑制,表现为子痫前期中超氧化物歧化酶、过氧化氢酶和谷胱甘肽过氧化物酶的表达减少[22]。

内皮功能障碍是母体综合征子痫前期发病机制中的一个中心环节。内皮细胞的异常是血管活性介质失衡发展的基础,这将导致血管收缩剂产量的增加[23, 24]。循环血管生成因子失衡间接影响内皮功能障碍的形成和子痫前期的临床表现,形成恶性循环。可溶性fms样酪氨酸激酶1(sFlt 1)是一种内源性抗血管生成因子(内皮抑素),是一种有效的VEGF拮抗剂,在子痫前期显著升高。VEGF不仅在血管生成中起重要作用,而且在维持内皮细胞的正常功能和控制内皮窗(肾小球内皮细胞的特征)的形成方面起重要作用[25]SFlt 1(体外)的表达增加诱导肾小球内皮增生伴小窗消失,组织学上类似于子痫前期的肾脏损害。更严重的子痫前期,包括HELLP综合征,也与sFlt 1和可溶性内胆素(也是一种抗血管生成因子)水平的同时升高有关[26]

基质金属蛋白酶(MMP)在子痫前期内皮功能障碍的形成中具有重要作用。MMP-2、 MMP-9、MMP-3、MMP-13与血管着床、滋养层浸润和重塑过程直接相关。它们参与内皮素和肾上腺髓质素的降解,这有助于螺旋动脉的血管扩张[27]。各种MMP组表达的降低,结合内源性MMP抑制剂合成的增加,诱导内皮损伤,增加血管反应性,从而导致明显的血管收缩[28]。

有关肾素-血管紧张素-醛固酮系统参与子痫前期发病机制的数据已经获得[29]。 F. Herse等人(2013)发现内皮功能障碍、内皮素-1产生增加和血管紧张素II型1受体自身抗体(AT2R1)表达的激活之间存在联系。与生理上的妊娠相反,内皮细胞对血管紧张素II的敏感性较低, 子痫前期孕妇对血管紧张素II的敏感性增加,这是由遗传、免疫或外源性因子介导的[30]。子痫前期妇女对血管紧张素II敏感性增加的潜在机制之一是AT2R1自身抗体的表达,这是对胎盘缺血和全身炎症反应的反应。AT2R1自身抗体刺激胎盘抗血管生成因子(sFlt 1和sENG)的产生,诱导滋养细胞中纤溶酶原激活物抑制剂PAI-1的合成,间接影响凝血止血的激活[31]

母亲身体的免疫不适应也有助于子痫前期的发展。胎儿是一种半异基因移植物(因为50%的父系抗原在胎盘和胎儿组织中表达),由于妊娠过程中整个免疫机制的复杂作用而没有排斥反应,其中天然细胞毒性细胞(NK细胞)发挥了关键作用[32]。 在妊娠早期,子宫内膜70%以上的中性粒细胞是CD56hi和CD57lo(UNK)表型的子宫NK细胞,确保囊胚的成功着床,以后它们通过分泌细胞因子和血管生成介质参与血管重塑,其数量在妊娠晚期显著减少[33]。以滋养层细胞表面为代表的HLA-G与uNK细胞的KIR受体(抑制剂)相互作用,降低天然杀伤细胞的细胞毒性,限制其在胎盘的迁移,保护胎儿免受来自母亲身体的不良免疫反应。因此,胎盘中HLA-G和KIR受体表达的缺陷可能与妊娠并发症的风险增加有关,这是基于子宫胎盘循环的异常[34]。 根据S.A. Robertson等人(2018),T淋巴细胞占妊娠早期蜕膜免疫细胞的10—20%,在着床和胎盘过程中发挥重要作用[35]。调节T淋巴细胞占(Treg)和效应T淋巴细胞占(Teff)之间的不平衡(偏向Teff)也可能是子痫前期发生的潜在免疫机制之一[36]Teff通过释放促炎细胞因子和激活滋养细胞的抗原依赖性细胞毒性对胎盘发育产生负面影响。蜕膜Treg分泌IL-10和TGF-b,表达CD25和PD-L1, 它们是效应T淋巴细胞的抑制剂并中和其作用,还具有强大的抗炎、免疫和血管调节特性[37]。

子痫前期发病机制的一个组成部分是补体系统的失调,这通常与控制补体激活调节因子生物合成的基因突变有关:H因子、膜辅因子(MCP)、I因子、组分C3等。补体系统的溶解导致组织结构、内皮细胞、血细胞和血小板的内源性损伤,随后形成微血栓,内皮功能障碍的发展和对胎儿耐受的系统性异常[38]。

子痫前期动脉性高血压的病理生理学的主要组成部分是内皮细胞产生的参与血管张力调节的生物活性物质的不平衡。胎盘缺血刺激释放引起全身血管内皮增生的介质,从而导致血管扩张剂[前列环素,一氧化氮(NO),内皮依赖性超极化因子]合成的减少。同时内皮素-1和血栓素A2的产生增加,具有强大的血管收缩作用。异常导致外周血管阻力增加,血压相应升高[39]。子痫前期女性对血管紧张素II和去甲肾上腺素的敏感性增加,这可以通过AT2R1的激活来解释。胎盘缺血诱导AT2R1和缓激肽B2受体的异源二聚体化和AT2R1受体自身抗体的产生也导致血管紧张素II的升压作用增加[40]。 免疫机制也有助于子痫前期高血压的发展。CD4+T淋巴细胞(Th1/Th2)、Tregs和Teff两个亚群之间的不平衡和IL-17的过度分泌导致AT2R1受体的血管活性介质和自身抗体的产生增加,从而加重内皮功能障碍,这也会导致子痫前期血压升高[41]。

目前已经进行了大量的研究,其中包含了约130可能的子痫前期危险因素的信息,涵盖了大量的伴随疾病、生物标志物、环境因素和遗传决定因素[42, 43]。因此,在S. Rana等人(2019)将研究的子痫前期发生的危险因素按相对风险(RR)的大小进行排序,并分为以下几类:高危因素(RR>2.5) 主要包括子痫前期病史,如糖尿病、多胎妊娠、孕前体重指数(BMI)>30 kg/cm2、抗磷脂综合征;第二组危险因素(RR 1.8—2.5)包括系统性红斑狼疮、死胎、不孕症和胎盘早剥史、辅助生殖技术的使用、 慢性肾脏疾病、母亲妊娠年龄>35岁、候选基因(FLT1基因rs4769613、PLEKHG1基因rs9478812等)多态性;最后一组不太显著的危险因素(RR<1.8) 包括子痫前期家族史和胎儿13对染色体三体(Patau综合征)[44]。

根据现代数据,慢性动脉血压在所有孕妇中占1—5%,其中先兆子痫的发生率可达75%。 A. Syngelaki等人(2018)发现,妊娠前慢性动脉高血压与子痫前期高风险相关(RR 5.76; 95% CI 4.93—6.73),死产(RR 2.38; 95% CI 1.51—3.75)、胎龄婴儿出生(RR 2.06; 95% CI 1.79—2.39)[45]。此外,D. Nzelu等人(2018)指出,在患有慢性动脉血压的孕妇中,尽管从妊娠前三个月开始通过药物纠正了高血压,并且血压控制数字保持在140/90 mmHg以下,患子痫前期和出生发育延迟2倍以上的儿童的风险仍然存在。这与进行性内皮功能障碍、小动脉重塑和肌壁增厚、血管收缩和对血管扩张剂敏感性降低有关[46]

子痫前期最常见的可改变危险因素是超重 (BMI≥25 kg/m2)超过10%的孕妇为肥胖。X.J. He等人进行的19项队列研究的荟萃分析中发现,肥胖和超重与子痫前期风险增加有关(RR 2.48;95% CI 2.05—2.90)[47]。体重指数每增加1 kg/m2,患子痫前期的风险在统计学上显著增加15%。超重妇女在怀孕时,发生这种妊娠并发症的可能性增加30%[48]。O.B. Kalinina等人(2012)表明BMI增加与子痫前期早发相关:体重正常的患者,临床表现为子痫前期30.25±0.38, 妊娠26.00±2.35周BMI≥35 kg/m2p<0.001)。 BMI与血压(收缩压、舒张压、平均、脉搏)也有直接相关性[49]。

遗传性血栓形成可导致胎盘血管血栓形成,这与胎盘相关妊娠并发症的风险增加有关[50]。G. Mello等人(2005)发现FV Leiden、MTHFR C677T、Pt G20210A等至少一种突变的存在与更严重的子痫前期病程相关(RR 4.9;95% CI 3.5—6.9)[51]。MTHFR基因突变(15—40%)、纤溶酶原激活物抑制剂1型(5—8%)、 Leiden突变(3—6%)和凝血酶原II(1—4%)认为子痫前期止血成分发展中最重要的先天性缺陷。发现当高同型半胱氨酸血症和FV Leiden突变结合时,血栓并发症的风险增加10—20倍[52]。文献资料显示亚甲基四氢叶酸还原酶C677T基因突变是妊娠期高血压和子痫前期的独立危险因素[53]。

糖尿病和胰岛素抵抗对子痫前期形成的作用是不可否认的。根据文献资料,25—40%的1型糖尿病孕妇和20—24%的2型糖尿病孕妇诊断为子痫前期[54]。S. Lisenkova等人(2013)发现,妊娠前发生的糖尿病是子痫前期两种早期表现的一个危险因素(长达34周,RR 1.87;95% CI 1.60—2.81) 和晚期发展(RR 2.46;95% CI 2.32— 2.61)。这与全身性糖尿病血管病变的发展和糖尿病与既存的慢性动脉高血压的频繁结合有关[55]。在K. Bramham(2017)指出,与未患糖尿病肾病的孕妇(9—17%)相比,患有糖尿病肾病的孕妇(35—66%)发生子痫前期的风险更高[56]。此外,胰岛素抵抗常与子痫前期的其他危险因素(肥胖、慢性动脉血压、代谢综合征等)相关,与子痫前期的发生发展有共同的机制,这可以通过不同的生物标志物(PAI-1、瘦素、细胞间黏附分子等)在这两种病理条件中相同的表达违反得到证实[57]。

负担过重的产科和妇科先兆子痫病史是发展这种妊娠并发症的最重要的危险因素。M. Lewandowski等人(2020)揭示,有子痫前期病史的女性在妊娠期间发生高血压疾病的风险显著增加(RR 27.54;95% CI5.8—130.8;子痫前期p<0.001,RR 22.90;95% CI 7.3—72.4;妊娠期高血压p<0.001)[48]。子痫前期的临床症状在以前和现在怀孕的同一时期的表现之间已经建立了直接的关系。早期发病的子痫前期患者发生相应形式子痫前期的风险增加25.2倍(95% CI 21.8—29.1), 因此,34周后出现这种病理症状的患者发生晚期子痫前期的风险增加10.3倍(95% CI 9.85—10.9)。 作者认为这是由于遗传因素对早期子痫前期的发展具有主要影响,而环境因素对晚期子痫前期的形成具有最重要的作用[58]。

现有文献提供了民族和种族与流行病学和子痫前期病程的关系数据。因此,A.B. Caughey等人(2005)发现,与白人女性相比,非裔美国女性患子痫前期的风险明显更高(RR 1.41; 95% CI 1.25—1.62),在亚洲人群中更低(RR 0.79;95% CI 0.72—0.88)[59]。此外,与欧洲人相比,黑人妇女因子痫前期并发症而导致的产妇死亡率明显更高(每10万例分娩121.8,95% CI 69.7—212.9和24.1例,95% CI 14.6—39.8p<0.01)[60]。父亲的种族也会影响患子痫前期的风险,与同种族的父母相比,不同种族的夫妇患这种妊娠并发症的风险显著增加(RR 1.13;95% CI 1.02—1.26)[61]。

遗传易感性在子痫前期的形成中起重要作用。根据各种资料显示,有一级亲属(母亲、姐妹)家族史的女性在妊娠期间出现高血压病,并伴有蛋白尿,会使子痫前期风险增加24—163%[62]。 N.C. Serrano等人(2020)进行的一项研究表明,近亲有子痫前期病史的女性发生妊娠并发症的风险显著增加[姐妹子痫前期的风险增加2.43倍(95% CI 2.02—2.93),母亲为3.38倍(95% CI 2.89—3.96),母亲和姐妹为4.17倍(95% CI 2.60—6.69)][63]。母亲(RR 1.41, 95% CI 1.04—1.90)、姐妹(RR 2.48, 95% CI 1.31—4.69)或所有女性亲属(RR 3.65, 95% CI 1.65—8.09)有慢性动脉高血压病史者,子痫前期风险增加2倍以上[64],如果有两名家族成员有心血管疾病(包括脑梗死)或以上家族史,则发生该并发症的几率会增加3倍以上(RR 3.2, 95% CI 1.4—7.7)[65]。

因此,通过对国内外文献的研究,我们可以得出以下结论:第一,尽管有大量的研究,但对子痫前期发病的分子机制尚未达成共识。其次,胎盘障碍、母亲身体的免疫适应不良、内皮功能障碍、血管生成失衡等是妊娠并发症发展的关键因素,但它们在早期和晚期子痫前期形成中的意义有显著差异。第三,已有130多种不同的子痫前期发展危险因素子痫前期家族史、糖尿病、慢性动脉高血压、遗传性血栓形成等),但现有数据往往不明确,且根据研究人群的不同而不同。因此,现有的矛盾和缺乏共识的参与某些生物学过程的发展子痫前期,要求进一步研究这一妊娠并发症。

附加信息

资金来源。这项研究没有财政支持或赞助。

利益冲突。作者声明,没有明显的和潜在的利益冲突相关的发表这篇文章。

所有作者都对文章的研究和准备做出了重大贡献,在发表前阅读并批准了最终版本。

×

作者简介

Maria Abramova

Belgorod National Research University

编辑信件的主要联系方式.
Email: abramova_myu@bsu.edu.ru
ORCID iD: 0000-0002-1406-2515
Scopus 作者 ID: 57212494118

MD

俄罗斯联邦, Belgorod

Mikhail Churnosov

Belgorod National Research University

Email: churnosov@bsu.edu.ru
ORCID iD: 0000-0003-1254-6134
Scopus 作者 ID: 6601948788

MD, Dr. Sci. (Med.), Professor

俄罗斯联邦, Belgorod

参考

  1. Reshetnikov EA. rs34845949 polymorphism of the SASH1 gene is associated with the risk of preeclampsia. Research Results in Biomedicine. 2021;7(1):44−55. (In Russ.). doi: 10.18413/2658-6533-2020-7-1-0-4
  2. WHO Guidelines Approved by the Guidelines Review Committee. WHO recommendations for prevention and treatment of pre-eclampsia and eclampsia. World Health Organization; 2011. [cited 23 Aug 2021]. Available from: https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/23741776/
  3. Osnovnye pokazateli zdorov’ja materi i rebenka, dejatel’nost’ sluzhby ohrany detstva i rodovspomozhenija v Rossijskoj Federacii. Statisticheskij sbornik 2018. Moscow; 2019. [cited 23.08.2021]. Available from: https://minzdrav.gov.ru/ministry/61/22/stranitsa-979/statisticheskie-i-informatsionnye-materialy/statisticheskiy-sbornik-2018-god. (In Russ.)
  4. Garovic VD, White WM, Vaughan L, et al. Incidence and long-term outcomes of hypertensive disorders of pregnancy. J Am Coll Cardiol. 2020;75(18):2323−2334. doi: 10.1016/j.jacc.2020.03.028
  5. Ivanov II., Cheripk MV, Kosolapova NV, et al. Preeklampsiya beremennyh: osobennosti patogeneza, taktiki vedeniya. Tavricheskij mediko-biologicheskij vestnik. 2012;15(2):273−286. (In Russ.)
  6. Golovchenko O, Abramova M, Ponomarenko I, et al. Functionally significant polymorphisms of ESR1and PGR and risk of intrauterine growth restriction in population of central Russia. European Journal of Obstetrics and Gynecology and Reproductive Biology. 2020; 253:52−57. doi: 10.1016/j.ejogrb.2020.07.045
  7. Pankiewicz K, Fijałkowska A, Issat T, et al. Insight into the key points of preeclampsia pathophysiology: Uterine artery remodeling and the role of MicroRNAs. Int J Mol Sci. 2021;22(6):3132. doi: 10.3390/ijms22063132
  8. Hodzhaeva ZS, Holin AM, Vihljaeva EM. Rannjaja i pozdnjaja prejeklampsija: paradigmy patobiologii i klinicheskaja praktika. Obstetrics and Gynecology. 2013;(10):4−11. (In Russ.)
  9. Ogge G, Chaiworapongsa T, Romero R, et al. Placental lesions associated with maternal underperfusion are more frequent in early-onset than in late-onset preeclampsia. J Perinat Med. 2011;39(6):641−652. doi: 10.1515/jpm.2011.098
  10. Ajlamazjan JeK, Stepanova OI, Sel’kov SA, Sokolov DI. Kletki immunnoj sistemy materi i kletki trofoblasta: “Konstruktivnoe sotrudnichestvo” radi dostizhenija sovmestnoj celi. Vestnik Rossijskoj akademii medicinskih nauk. 2013;68(11):12−21. (In Russ.)
  11. Moser G, Windsperger K, Pollheimer J, et al. Human trophoblast invasion: new and unexpected routes and functions. Histochem Cell Biol. 2018;150(4):361−370. doi: 10.1007/s00418-018-1699-0
  12. Highet AR, Khoda SM, Buckberry S, et al. Hypoxia induced HIF-1/HIF-2 activity alters trophoblast transcriptional regulation and promotes invasion. Eur J Cell Biol. 2015;94(12):589−602. doi: 10.1016/j.ejcb.2015.10.004
  13. Prossler J, Chen Q, Chamley L, James JL. The relationship between TGF, low oxygen and the outgrowth of extravillous trophoblasts from anchoring villi during the first trimester of pregnancy. Cytokine. 2014;68(1):9−15. doi: 10.1016/j.cyto.2014.03.001
  14. Albers RE, Kaufman MR, Natale BV, et al. Trophoblast-specific expression of hif-1 results in preeclampsia-like symptoms and fetal growth restriction. Sci Rep. 2019;9(1):2742. doi: 10.1038/s41598-019-39426-5
  15. Qu H, Yu Q, Jia B, et al. HIF-3 affects preeclampsia development by regulating EVT growth via activation of the Flt-1/JAK/STAT signaling pathway in hypoxia. Mol Med Rep. 2021;23(1):1. doi: 10.3892/mmr.2020.11701
  16. Jena MK, Sharma NR, Petitt M, et al. Pathogenesis of preeclampsia and therapeutic approaches targeting the placenta. Biomolecules. 2020;10(6):953. doi: 10.3390/biom10060953
  17. Yagel S, Cohen SM, Goldman-Wohl D. An integrated model of preeclampsia: a multifaceted syndrome of the maternal cardiovascular-placental-fetal array. American journal of obstetrics and gynecology. 2020;S0002-9378(20)31197−31202. doi: 10.1016/j.ajog.2020.10.023
  18. Vaka VR, McMaster KM, Cunningham MW Jr., et al. Role of mitochondrial dysfunction and reactive oxygen species in mediating hypertension in the reduced uterine perfusion pressure rat model of preeclampsia. Hypertension. 2018;72(3):703−711. doi: 10.1161/hypertensionaha.118.11290
  19. Pogorelova TN, Krukier II, Gunko VO, et al. The imbalance of vasoactive components and arachidonic acid in the placenta and amniotic fluid in preeclampsia. Biomedicinskaja himija. 2019;65(3):245−250. (In Russ.). doi: 10.18097/PBMC20196503245
  20. Taysi S, Tascan AS, Ugur MG, Demir M. Radicals, oxidative/nitrosative stress and preeclampsia. Mini Rev Med Chem. 2019;19(3):178−193. doi: 10.2174/1389557518666181015151350
  21. Tenório MB, Ferreira RC, Moura FA, et al. Cross-talk between oxidative stress and inflammation in preeclampsia. Oxid Med Cell Longev. 2019;2019:8238727. doi: 10.1155/2019/8238727
  22. Tal R, Shaish A, Barshack I, et al. Effects of hypoxia-inducible factor-1alpha overexpression in pregnant mice: possible implications for preeclampsia and intrauterine growth restriction. Am J Pathol. 2010;177:2950–2962. doi: 10.2353/ajpath.2010.090800
  23. Wang A, Rana S, Karumanchi SA. Preeclampsia: the role of angiogenic factors in its pathogenesis. Physiology (Bethesda). 2009;24:147−158. doi: 10.1152/physiol.00043.2008
  24. Reshetnikov E, Ponomarenko I, Golovchenko O, et al. The VNTR polymorphism of the endothelial nitric oxide synthase gene and blood pressure in women at the end of pregnancy. Taiwanese Journal of Obstetrics and Gynecology. 2019;58(3):390−395. doi: 10.1016/j.tjog.2018.11.035
  25. Steinberg G, Khankin EV, Karumanchi SA. Angiogenic factors and preeclampsia. Thromb Res. 2009;123(Suppl 2):S93−99. doi: 10.1016/S0049-3848(09)70020-9
  26. Iskakova SS, Zharmahanova GM, Dvoracka M. Harakteristika proangiogennyh faktorov i ih patogeneticheskaja rol’. Nauka i zdravoohranenie. 2013;(6):8−12. (In Russ.)
  27. Strizhakov AN, Timokhina EV, Ibragimova SM, et al. A novel approach to the differential prognosis of early and late preeclampsia. Akusherstvo, ginekologija i reprodukcija. 2018;12(2):55−61. (In Russ.). doi: 10.17749/2313-7347.2018.12.2.055-061
  28. Chen J, Khalil RA. Matrix metalloproteinases in normal pregnancy and preeclampsia. Prog Mol Biol Transl Sci. 2017;148:87−165. doi: 10.1016/bs.pmbts.2017.04.001
  29. Reshetnikov EA, Akulova LY, Dobrodomova IS, et al. The insertion-deletion polymorphism of the ACE gene is associated with increased blood pressure in women at the end of pregnancy. J Renin Angiotensin Aldosterone Syst. 2015;16(3):623−632. doi: 10.1177/1470320313501217
  30. Herse F, LaMarca B. Angiotensin II type 1 receptor autoantibody (AT1-AA)-mediated pregnancy hypertension. Am J Reprod Immunol. 2013;69:413–418. doi: 10.1111/aji.12072
  31. Cunningham MW, Williams JM Jr, Amaral L, et al. Agonistic autoantibodies to the angiotensin II type 1 receptor enhance angiotensin II-induced renal vascular sensitivity and reduce renal function during pregnancy. Hypertension. 2016;68(5):1308–1313. doi: 10.1161/HYPERTENSIONAHA.116.07971
  32. Aneman I, Pienaar D, Suvakov S, et al. Mechanisms of key innate immune cells in early- and late-onset preeclampsia. Front Immunol. 2020;11:1864. doi: 10.3389/fimmu.2020. 01864
  33. Yang X, Yang Y, Yuan Y, et al. The roles of uterine natural killer (NK) cells and KIR/HLA-C combination in the development of preeclampsia: A systematic review. BioMed research international. 2020;2020:4808072. doi: 10.1155/2020/4808072
  34. Phipps EA, Thadhani R, Benzing T, et al. Pre-eclampsia: pathogenesis, novel diagnostics and therapies. Nat Rev Nephrol. 2019;15:275–289. doi: 10.1038/s41581-019-0119-6
  35. Kudryavtsev IV, Borisov AG, Vasilyeva EV, et al. Phenotypic characterisation of peripheral blood cytotoxic T lymphocytes: regulatory and effector molecules. Medicinskaja immunologija. 2018;20(2):227−240. (In Russ.). doi: 10.15789/1563-0625-2018-2-227-240
  36. Robertson SA, Care AS, Moldenhauer LM. Regulatory T cells in embryo implantation and the immune response to pregnancy. J Clin Invest. 2018;128(10):4224−4235. doi: 10.1172/JCI122182
  37. Frejdlin IS. Reguljatornye T-kletki: proishozhdenie i funkcii. Medicinskaja immunologija. 2005;7(4):347−354. (In Russ.)
  38. Teirilä L, Heikkinen-Eloranta J, Kotimaa J, et al. Regulation of the complement system and immunological tolerance in pregnancy. Semin immunol. 2019;45:101337. doi: 10.1016/j.smim.2019.101337
  39. Ives CW, Sinkey R, Rajapreyar I, et al. Preeclampsia-pathophysiology and clinical presentations: JACC State-of-the-Art review. J Am Coll Cardiol. 2020;76(14):1690−1702. doi: 10.1016/j.jacc.2020.08.014
  40. Verdonk K, Visser W, Van Den Meiracker AH, Danser AH. The renin-angiotensin-aldosterone system in pre-eclampsia: the delicate balance between good and bad. Clin Sci (Lond). 2014;126(8):537−544. doi: 10.1042/CS20130455
  41. LaMarca B, Cornelius DC, Harmon AC, et al. Identifying immune mechanisms mediating the hypertension during preeclampsia. Am J Physiol Regul Integr Comp Physiol. 2016;311(1):R1−9. doi: 10.1152/ajpregu.00052.2016
  42. Giannakou K, Evangelou E, Papatheodorou SI. Genetic and non-genetic risk factors for pre-eclampsia: umbrella review of systematic reviews and meta-analyses of observational studies. Ultrasound Obstet Gynecol. 2018;51(6):720−730. doi: 10.1002/uog.18959
  43. Golovchenko OV, Abramova MYu, Ponomarenko IV, Churnosov MI. Polymorphic loci of the ESR1 gene are associated with the risk of developing preeclampsia with fetal growth retardation. Akusherstvo, Ginekologija i Reprodukcija. 2020;14(6):583–591. (In Russ.). doi: 10.17749/2313-7347/ob.gyn.rep.2020.187
  44. Rana S, Lemoine E, Granger JP, Karumanchi SA. Preeclampsia: pathophysiology, challenges, and perspectives. Circ Res. 2019;124(7):1094−1112. doi: 10.1161/CIRCRESAHA.118.313276
  45. Panaitescu AM, Syngelaki A, Prodan N, et al. Chronic hypertension and adverse pregnancy outcome: a cohort study. Ultrasound Obstet Gynecol. 2017;50(2):228−235. doi: 10.1002/uog.17493
  46. Nzelu D, Dumitrascu-Biris D, Nicolaides KH, Kametas NA. Chronic hypertension: first-trimester blood pressure control and likelihood of severe hypertension, preeclampsia, and small for gestational age. Am J Obstet Gynecol. 2018;218(3):337.e1−337.e7. doi: 10.1016/j.ajog.2017.12.235
  47. He XJ, Dai RX, Hu CL. Maternal prepregnancy overweight and obesity and the risk of preeclampsia: A meta-analysis of cohort studies. Obes Res Clin Pract. 2020;14(1):27−33. doi: 10.1016/j.orcp.2020.01.004
  48. Lewandowska M, Więckowska B, Sajdak S, Lubiński J. Pre-pregnancy obesity vs. other risk factors in probability models of preeclampsia and gestational hypertension. Nutrients. 2020;12(9):2681. doi: 10.3390/nu12092681
  49. Kalinkina OB, Spiridonova NV. Osobennosti techenija gestoza u zhenshhin s izbytochnoj massoj tela i ozhireniem. Fundamental’nye issledovanija. 2012;10(2):247−249. (In Russ.)
  50. Brosens I, Pijnenborg R, Vercruysse L, Romero R. The “Great Obstetrical Syndromes” are associated with disorders of deep placentation. Am J Obstet Gynecol. 2011;204(3):193−201. doi: 10.1016/j.ajog.2010.08.009
  51. Mello G, Parretti E, Marozio L, et al. Thrombophilia is significantly associated with severe preeclampsia: results of a large-scale, case-controlled study. Hypertension. 2005;46(6):1270−1274. doi: 10.1161/01.HYP.0000188979.74172.4d
  52. Belinina AA, Mozgovaya EV, Remneva OV. Spectrum of genetic thrombophilia in pregnant women with varying severity of preeclampsia. Bjulleten’ medicinskoj nauki. 2020;1(17):29−33. (In Russ.)
  53. Mitriuc D, Popuşoi O, Catrinici R, Friptu V. The obstetric complications in women with hereditary thrombophilia. Med Pharm Rep. 2019;92(2):106−110. doi: 10.15386/cjmed-1097
  54. Kapustin RV, Tsybuk EM. Predictors for preeclampsia in pregnant women with diabetes mellitus. Obstetrics and Gynecology. 2020;(12):54−61. (In Russ.). doi: 10.18565/aig.2020.12.54-61
  55. Lisonkova S, Joseph KS. Incidence of preeclampsia: risk factors and outcomes associated with early- versus late-onset disease. Am J Obstet Gynecol. 2013;209(6):544.e1−544.e12. doi: 10.1016/j.ajog.2013.08.019
  56. Bramham K. Diabetic nephropathy and pregnancy. Semin Nephrol. 2017;37(4):362−369. doi: 10.1016/j.semnephrol.2017.05.008
  57. Hauth JC, Clifton RG, Roberts JM, et al. Maternal insulin resistance and preeclampsia. Am J Obstet Gynecol. 2011;204(4):327.e1−6. doi: 10.1016/j.ajog.2011.02.024
  58. Boyd HA, Tahir H, Wohlfahrt J, Melbye M. Associations of personal and family preeclampsia history with the risk of early-, intermediate- and late-onset preeclampsia. Am J Epidemiol. 2013;178(11):1611−1619. doi: 10.1093/aje/kwt189
  59. Caughey AB, Stotland NE, Washington AE, Escobar GJ. Maternal ethnicity, paternal ethnicity, and parental ethnic discordance: predictors of preeclampsia. Obstet Gynecol. 2005;106(1):156−161. doi: 10.1097/01.AOG.0000164478.91731.06
  60. Gyamfi-Bannerman C, Pandita A, Miller EC, et al. Preeclampsia outcomes at delivery and race. J Matern Fetal Neonatal Med. 2020;33(21):3619−3626. doi: 10.1080/14767058.2019.1581522
  61. Zhang N, TanJ, Yang H, Khalil RA. Comparative risks and predictors of preeclamptic pregnancy in the Eastern, Western and developing world. Biochem Pharmacol. 2020;182:114247. doi: 10.1016/j.bcp.2020.114247
  62. Yong HEJ, Murthi P, Brennecke SP, Moses EK. Genetic approaches in preeclampsia. Methods Mol Biol. 2018;1710:53−72. doi: 10.1007/978-1-4939-7498-6_5
  63. Serrano NC, Quintero-Lesmes DC, Dudbridge F, et al. Family history of pre-eclampsia and cardiovascular disease as risk factors for pre-eclampsia: the GenPE case-control study. Hypertens Pregnancy. 2020;39(1):56−63. doi: 10.1080/10641955.2019.1704003
  64. Bezerra PC, Leão MD, Queiroz JW, et al. Family history of hypertension as an important risk factor for the development of severe preeclampsia. Acta Obstet Gynecol Scand. 2010;89(5):612−617. doi: 10.3109/00016341003623720
  65. Ness RB, Markovic N, Bass D, et al. Family history of hypertension, heart disease, and stroke among women who develop hypertension in pregnancy. Obstet Gynecol. 2003;102(6):1366−1371. doi: 10.1016/j.obstetgynecol.2003.08.011

补充文件

附件文件
动作
1. JATS XML

版权所有 © Eсо-Vector, 2021



СМИ зарегистрировано Федеральной службой по надзору в сфере связи, информационных технологий и массовых коммуникаций (Роскомнадзор).
Регистрационный номер и дата принятия решения о регистрации СМИ: серия ПИ № ФС 77 - 66759 от 08.08.2016 г. 
СМИ зарегистрировано Федеральной службой по надзору в сфере связи, информационных технологий и массовых коммуникаций (Роскомнадзор).
Регистрационный номер и дата принятия решения о регистрации СМИ: серия Эл № 77 - 6389
от 15.07.2002 г.



##common.cookie##