体外研究孕激素对糖蛋白- P活性的影响

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研究现实性。糖蛋白- P(Pgp,ABCB1)是一种参与药物药代动力学和肿瘤细胞化疗耐药发展的转运蛋白。

目的:目的:研究黄体酮对体外培养的人小肠上皮细胞模型中Pgp活性的影响。

材料与方法:对Caco-2细胞系进行了研究。在特殊的Transwell体系中,通过非索非那定转运评价Pgp的活性。高效液相色谱法测定非索非那定的浓度。采用免疫酶测定法测定Pgp的含量。我们进行了四个系列的实验:对照组细胞在不添加任何物质的清洁运输介质中孵育;预孵育3天,10 mcmol / L浓度利福平对Pgp活性及合成的影响(诱导控制);孕酮在1、10和100 mol / L预潜伏30分钟时对Pgp活性的影响;孕酮在1、10、100 mcmol / L预潜伏3天后对Pgp活性及合成的影响。

结果:黄体酮与细胞潜伏30 分钟时,浓度为1和10的黄体酮对Pgp的活性没有显著影响,但浓度为100的黄体酮会降低转运蛋白的活性。

将Caco-2细胞与黄体酮浓度分别为1,10和100微米的水杨酸潜伏3天后,Pgp的活性没有变化。与对照指标相比,孕酮在潜伏3天后,浓度为100微米的孕酮可显著提高肠上皮细胞Pgp的合成,提高114.3%,但在剩余的使用浓度(1和10微米)中效果不显著。

结论:体外实验中,在Caco-2细胞系细胞中,孕激素浓度为100微米时,对Pgp活性有直接抑制作用,但在潜伏3天后,孕酮增加了转运蛋白的合成,使其抑制活性减弱。

全文:

糖蛋白-P(Pgp,ABCB1)是细胞磷脂膜中表达的一种转运蛋白。Pgp保护器官和组织不受作为其基质的排外微量元素的伤害,将它们从细胞中清除到细胞外空间和体液中。例如,当表达的肿瘤细胞,这形式的发展他们的抵抗化疗,肠肠上皮细胞的抑制物质的吸收,在肝细胞和肾小管的上皮细胞,它消除了物质的胆汁和尿液,分别的内皮细胞血流结缔组织屏障障碍阻止了物质的器官[1]。

结果表明,某些物质能够影响Pgp的功能。诱导剂(利福平)增加转运蛋白的活性,而抑制剂(维拉帕米,奎尼丁)降低[2]。

性激素对Pgp功能的调节作用已被证实[3, 4]。在研究孕酮对Pgp活性和合成的影响时,得到了相互矛盾的结果。

在含有大量孕酮受体的人卵巢癌细胞株(NCI-ADR-RES)上,我们发现孕酮浓度为10-7 M潜伏8小时后,MDR1基因表达增加。孕酮对低孕酮受体的人胎盘癌细胞株(JAR)的影响并没有增加MDR1基因的表达。此外,孕酮的使用2472小时(浓度大于10-8 M)剂量依赖性增加了NCI-ADR-RESJAR细胞中Pgp蛋白的表达。转运蛋白表达的增加伴随着其活性的增加,这可以通过细胞积累的Pgp底物-沙奎那韦和紫杉醇来评估[5]

的由L-MDR1细胞系转染猪肾行LLC-PK1人类凋亡基因和多柔比星-抵抗力单核细胞的小鼠白血病细胞系增加表达mdr1a / 1 bP388/dx),发现孕酮降低Pgp活动集133±3.2微米 L-MDR1细胞系和浓度为30.2±9.8微米P388/dx细胞系[6]

文献分析表明,对药物药代动力学主要器官(肠肾上皮、肝细胞、组织 血流结缔组织屏障内皮细胞)细胞系的研究几乎未开展。

早前,我们在家兔体内实验中发现,黄体酮可增加肠肠细胞中Pgp的活性和合成[4]。

本研究旨在探讨孕酮对体外培养的人小肠上皮细胞模型中Pgp活性的影响。

材料与方法

对人结肠癌细胞株Caco-2进行了体外研究,该细胞株来自圣彼得堡俄罗斯科学院联邦预算机构科学中心。

Caco-2细胞系培养在37°C和5%的二氧化碳杜尔贝科修改针的介质(DMEM)含有葡萄糖(4500 毫克 /公升)(Sigma-Aldrich,德国)、谷酰胺(4毫米)(Sigma-Aldrich,德国),15%牛血清(Sigma-Aldrich,德国),100  单位/毫升的青霉素(Sigma-Aldrich,德国)和100年微克 /毫升的链霉素。当达到70-90%合流时,加入胰酶-乙二胺四乙酸溶液(0.25%胰酶和0.2%乙二胺四乙酸,Sigma-Aldrich,德国)从瓶中取出细胞,并将其置于Transwell系统中以评估Pgp活性,或置于6孔板中以确定孕酮对转运蛋白合成的影响。培养21天,细胞自然分化为类似肠上皮的细胞[7]。

Transwell系统由顶腔(a)和基底外侧腔(b)组成。顶端腔的底部是半透膜,细胞密度为105/平方厘米(33.000个细胞/细胞)。本研究使用了带有半透膜的12孔板(12 mm Transwell® with 0.4 µm Pore Polycarbonate Membrane Insert,Sterile,Corning,美国)。当跨皮电阻达到500兆欧*平方厘米以上时,进行输运实验。同一Transwell系统输运实验间隔至少为7天。

Pgp的功能通过其标记底物非索非那定(Sigma-Aldrich,德国)在Transwell系统中的转运来评估。为此,用转运培养基Hanks溶液(Sigma-Aldrich,德国)代替营养培养基,缓冲25mm Hepes pH 7.4(Sigma-Aldrich,德国),含1%二甲亚砜(PanEco,俄罗斯)。接下来,盐酸非索非那定是添加到顶端商会在150年最终浓度微米[7],而1,2,3小时,传输介质(50微升)样本来自基底外侧室确定的内容标记底物(a-b运输,由于被动扩散对Pgp功能)。

然后,在其他Transwell系统中,非索非那定从基底外侧腔室到根尖的转运被评估(由于被动扩散和转运蛋白的b-a转运)。为此,在基底外侧腔室中加入浓度为150 微米的非索非那定,在1、2、3小时后,从根尖腔中提取运输介质样本(50微升),以确定标记物底物的浓度。

根据公式计算非索非那定从a室到b室和从b室到a室的转运情况[8]:

Rarr为表观渗透系数(apparent permeability coefficient),dQ/dt为培养时间内受体腔内底物浓度的变化,A为Transwell体系中培养细胞的半透井膜面积;C0是供腔内底物的初始浓度。

然后确定表观渗透率系数的比值为ba与ab。

这个参数,作为积分,显示了Pgp转运蛋白对标记物底物非索非那定通过胆脂膜转移的总贡献。

采用高效液相色谱-紫外分光光度法测定转运介质中非索非那定的含量用Stayer色谱仪上(俄罗斯),根据我们开发的方法[2]。将得到的含非索非那定的输运介质样品(50 微升)用150微升的流动相稀释,将得到的溶液100微升引入色谱仪。

为了评估黄体酮在体外对Pgp活性的影响,无论非索非那定的转运方向如何,黄体酮都被添加到两个腔体(根尖和基底外侧)。

为了研究孕酮对Pgp合成的影响,我们在6孔板上加入胰蛋白酶-乙二胺四乙酸溶液(0.25%胰蛋白酶和0.2%乙二胺四乙酸,Sigma-Aldrich,德国)从孔中取出细胞。得到的细胞经三次冻融循环裂解。用Human Permeability glycoprotein ELISA kit(Blue gene,中国)测定裂解液中Pgp的含量用免疫酶测定。样品蛋白含量采用Bradford法(Pierce Coomassie Plus (Bradford)Assay Kit,ThermoFisher,USA)分析。

在研究过程中,我们进行了以下一系列实验:

1)对照-细胞在不添加任何物质的清洁运输培养基中孵育;

2)预潜伏3天,10微摩尔/升浓度利福平对Pgp活性及合成的影响-诱导控制;

3)孕酮在1、10、100微摩尔/升预潜伏30分钟时对Pgp活性的影响;

4)孕酮在1、10、100 mol / L预潜伏3天后对Pgp活性及合成的影响。

使用Stat Soft Statistica 13.0程序(美国,专利JPZ811I52 1319AR25ACD-W)和Microsoft Excel对结果进行处理16.24(ID02984-001-000001)。为评估差异的统计学意义,采用方差分析(ANOVA),两两比较采用Newman-Keuls检验。p<0.05为差异有统计学意义。

结果与讨论

实验结果如表1和图1所示。

在10个利福平培养Caco-2细胞3天后,Pgp活性增加,表现为Papp ab下降31.7%(p <0.05), Papp ba与Papp ab比值增加93.2%(p <0.05)。

与Caco-2细胞潜伏30分钟后,孕酮浓度分别为1和10微米,对Pgp的活性没有显著影响。与此同时,在100个蛋白浓度下,Papp ba和Papp ab的比值下降了26.2%(p <0.05),表明转运蛋白活性下降。

将Caco-2细胞与孕酮在1、10和100的浓度下潜伏3天,与对照组相比,研究参数Papp ba、Papp ab及其比值无显著变化。

在接下来的一系列实验中,我们研究孕酮和利福平对Caco-2细胞中Pgp转运蛋白合成的影响。

利福平浓度10微米潜伏后3天在肠上皮细胞引起Pgp的数量增加了52.7%(p < 0.05),证实了实验的正确性,因为利福平是一个经典的转运蛋白的诱导物,增加其活动由于增加合成[2]。

与对照指标相比,孕激素在潜伏3天后,浓度为100微米的孕激素可使肠上皮细胞Pgp的合成增加114.3%(p = 0.018,但对其他浓度(1微米和10微米)无显著影响(图1)。

表1。孕酮对非索非那定通过Caco-2细胞脂膜转运的影响(MSD10-6 公分/秒)

 

Papp ba

Papp ab

Papp ba/ Papp ab

检查,n=5

2.32±0.66

0.82±0.15

2.79±0.36

利福平10微米,3天,n=3

2.9±0.31

0.56±0.09*

5.39±1.24*

孕酮1微米,30分钟,n=3

1.96±0.18

0.72±0.17

2.83±0.76

孕酮10微米,30分钟,n=3

2.4±0.24

0.89±0.25

2.93±1.23

孕酮100微米,30分钟,n=3

2.03±0.42

0.99±0.19

2.06±0.17*

孕酮1微米,30天,n=3

1.95±0.46

0.63±0.31

3.36±0.83

孕酮10微米,30天,n=3

2.13±0.18

0.71±0.15

3.1±0.71

孕酮100微米,30天,n=3

2.32±0.42

0.76±0.66

3.1±0.84

注:* —p<0.05—与对照指标比较差异有统计学意义

图 1孕酮(MSD,纳克/ 毫克蛋白)对Caco-2细胞系细胞中Pgp含量的影响 注:1—对照(n=7), 2—利福平10微米3天(n=4), 3—孕酮1微米3天 (n=3),4—孕酮10微米3天(n=3),5—孕酮100微米3天(n=3)

结果表明,孕酮是Pgp的直接抑制剂,即与Pgp的分子直接相互作用可以抑制其活性,这一点在实验中得到了证实,即孕酮与Caco-2细胞在浓度为100微米的条件下孵育30分钟。

与此同时,孕酮延长潜伏(3天)可增加细胞培养中转运蛋白的合成。同时,Pgp的活性与对照指数并无明显差异,这显然是由于激素对激素Pgp的直接抑制,弥补了转运体的合成。

孕酮对Pgp活性的直接抑制作用,同时增加转运蛋白的合成能力可能是导致文献中所述结果矛盾的基础。

在孕酮的作用下,Pgp合成增加的机制可能与编码转运蛋白的MDR1基因表达的影响有关,这些基因与特定的孕酮受体或转录因子相互作用,孕烷- x受体(PXR)或构成性雄甾烷受体(CAR)[5, 9]。

Caco-2细胞系中的孕酮受体尚未被描述,尽管在人类肠道中已经发现了它们的表达[10]。

因此,孕酮作用下活化Pgp合成的机制需要进一步研究和细化。

结论

体外实验中,在Caco-2细胞系细胞中,孕激素浓度为100微米时,对Pgp活性有直接抑制作用,但在潜伏3天后,孕酮增加了转运蛋白的合成,使其抑制活性减弱。显然,孕酮对肠上皮细胞Pgp活性的直接抑制作用伴随着对其合成的代偿性激活。

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作者简介

Pelageya Erokhina

Ryazan State Medical University

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Yulia Abalenikhina

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PhD in Biological Sciences, Assistant Professor of the Department of Biological Chemistry

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Alexey Shchulkin

Ryazan State Medical University

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Researcher ID: N-9143-2016

MD, PhD, Assistant Professor of the Department of Pharmacology with a Course of Pharmacy of Continuing Professional Education Faculty

俄罗斯联邦, Ryazan

Ivan Chernykh

Ryazan State Medical University

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PhD in Biological Sciences, Head of the Department of Pharmaceutical Chemistry

俄罗斯联邦, Ryazan

Natalia Popova

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Alexandr Slepnev

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俄罗斯联邦, Ryazan

Elena Yakusheva

Ryazan State Medical University

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SPIN 代码: 2865-3080
Researcher ID: T-6343-2017

MD, PhD, Professor, Head of the Department of Pharmacology with a Course of Pharmacy of Continuing Professional Education Faculty

俄罗斯联邦, Ryazan

参考

  1. Yakusheva EN, Shulkin AV, Popova NM, et al. Structure, functions, of P-glycoprotein and its role in rational pharmacotherapy. Reviews on Clinical Pharmacology and Drug Therapy. 2014;(2):3-11. (In Russ).
  2. Yakusheva EN, Chernykh IV, Shulkin AV, et al. Methods of identification of drugs as P-glycoprotein substrates. I.P. Pavlov Russian Medical Biological Herald. 2015;(3):49-53. (In Russ).
  3. Gatsanoga MV, Chernykh IV, Shchulkin AV, et al. The method of assessment of drugs belonging to the substrates of P-glycoprotein on female rabbits. Nauka Molodykh (Eruditio Juvenium). 2016;(3):5-10. (In Russ).
  4. Shchulkin AV, Chernykh IV, Yakusheva EN, et al. Influence of progesterone on P-glycoprotein functional activity in experiment. Khimiko-Farmatsevticheskii Zhurnal. 2018;52(7):3-8. (In Russ). doi: 10.30906/0023-1134-2018-52-7-3-8
  5. Coles LD, Lee IJ, Voulalas PJ, et al. Estradiol and progesterone-mediated regulation of P-gp in P-gp overexpressing cells (NCI-ADR-RES) and placental cells (JAR). Molecular Pharmaceutics. 2009;6(6): 1816-25. doi: 10.1021/mp900077q
  6. Fröhlich M, Albermann N, Sauer A, et al. In vitro and ex vivo evidence for modulation of P-glycoprotein activity by progestins. Biochemical Pharmacology. 2004;68(12):2409-16. doi: 10.1016/j.bcp.2004.08.026
  7. Petri N, Tannergren C, Rungstad D, et al. Transport characteristics of fexofenadine in the Caco-2 cell model. Pharmaceutical Research. 2004;21(8):1398-404. doi: 10.1023/b:pham.0000036913.90332.b1
  8. Elsby R, Surry DD., Smith VN, et al. Validation and application of Caco-2 assays for the in vitro evaluation of development candidate drugs as substrates or inhibitors of P-glycoprotein to support regulatory submissions. Xenobiotica. 2008;38(7-8):1140-64. doi: 10.1080/00498250802050880
  9. Kliewer SA, Moore JT, Wade L. An orphan nuclear receptor activated by pregnanes defines a novel steroid signaling pathway. Cell. 1998;92(1):73-82. doi: 10.1016/s0092-8674(00)80900-9
  10. Watanabe K, Jinriki T, Sato J Effects of progesterone and norethisterone on cephalexin transport and peptide transporter PEPT1 expression in human intestinal cell line Caco-2. Biological & Pharmaceutical Bulletin. 2006;29(1):90-5. doi: 10.1248/bpb.29.90

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