Роль биопленок бактерий в формировании природных очагов возбудителей опасных инфекционных заболеваний

Обложка

Цитировать

Полный текст

Открытый доступ Открытый доступ
Доступ закрыт Доступ предоставлен
Доступ закрыт Только для подписчиков

Аннотация

В статье представлены современные литературные данные о формировании природных очагов холеры, чумы, туляремии и легионеллеза. Показана возможность образования возбудителями этих инфекций биопленок, в составе которых эти микроорганизмы могут длительное время поддерживать свою жизнеспособность в окружающей среде. Так, холерные вибрионы, попадая из организма больного человека в открытые водоемы, частично погибают, а оставшиеся живыми адгезируются на водных растениях и животных, формируя биопленки. Вибрионы бурно размножаются на зоо- и фитопланктоне, инфицируя воду, рыбу и других водных животных. Активное состояние природных очагов чумы поддерживается наличием в них диких грызунов и блох. Возбудитель чумы способен формировать биопленку в организме блохи и, вероятно, на некоторых беспозвоночных, обитающих в почве. Два подвида туляремийного микроба в природных очагах образуют биопленки на водных амебах, хитине ракообразных. Комары становятся переносчиком возбудителя туляремии, заражаясь им еще в стадии личинки в открытых водоемах. Биопленки могут стать фактором распространения легионеллеза при их формировании в устройствах кондиционирования воздуха, в системах горячего водоснабжения и градирнях.

Об авторах

В. В. Кацалуха

ФГБУ «Государственный научно-исследовательский испытательный институт военной медицины» МО РФ

Email: mn-4853@mail.ru

доктор медицинских наук, полковник медицинской службы в отставке

Россия, Санкт-Петербург

В. М. Добрынин

ФГБУ «Государственный научно-исследовательский испытательный институт военной медицины» МО РФ

Email: mn-4853@mail.ru

доктор медицинских наук, полковник медицинской службы в отставке

Россия, Санкт-Петербург

М. Ю. Никитин

ФГБУ «Государственный научно-исследовательский испытательный институт военной медицины» МО РФ

Автор, ответственный за переписку.
Email: mn-4853@mail.ru

доктор биологических наук, полковник в отставке

Россия, Санкт-Петербург

Список литературы

  1. Андрусенко И.Т., Ломов Ю.М., Телесманич Н.Р. и др. Гидробионтный фактор в эпидемиологии холеры // Здоровье насел. и среда обит. – 2009. – № 3 (192). – С. 10–14.
  2. Базанова, Л.П., Токмакова Е.Г., Воронова Г.А. Образование биопленки возбудителем чумы разных подвидов из природных очагов Центральной Азии в организме блохи Хenopsylla cheopis // Мед. паразитол. и паразитар. болезни. – 2020. – № 3. – С. 32–38.
  3. Видяева Н.А., Ерошенко Г.А., Шавина Н.Ю. и др. Формирование биопленки штаммами Yersinia pestis основного и неосновных подвидов и Yersinia pseudotuberculosis на модели Caenorhabditis elegans // Пробл. особо опасн. инф. – 2009. – № 1 (99). – С. 31–34.
  4. Водопьянов С.О., Титова С.В., Водопьянов А.С. и др. Пластисфера как возможный фактор глобального распространения Vibrio cholerae (материал для подготовки лекции) // Инф. болезни: новости, мнения, обучение. – 2018. – Т. 7, № 3. – С. 109–113.
  5. Груздева О.А. Научно-методические основы профилактики легионеллеза в гостиничных комплексах // Эпидемиол. и вакцинопрофил. – 2014. – № 2. – С. 49–53.
  6. Клюева С.Н., Щуковская Т.Н., Бугоркова С.А. и др. Оценка стимулирующего влияния биогенного амина серотонина на капсулоподобное вещество Francisella tularensis // Журн. микробиол., эпидемиол. и иммунобиол. – 2016. – № 4. – С. 9–16.
  7. Кошель Е.И. Образование биопленки штаммами Yersinia pestis разных подвидов и их взаимодействие с членами почвенных биоценозов: Автореф. дис. ... канд биол. наук. – Саратов, 2014. – 24 с.
  8. Куликалова Е.С., Урбанович Л.Я., Саппо С.Г. и др. Биопленка холерного вибриона: получение, характеристика и роль в резервации возбудителя в водной окружающей среде // Журн. микробиол., эпидемиол. и иммунобиол. – 2015. – № 1. – С. 3–11.
  9. Меньшикова Е.А., Курбатова Е. М., Титова С. В. Экологические особенности персистенции холерных вибрионов: ретроспективный анализ и современное состояние проблемы // Журн. микробиол., эпидемиол. и иммунобиол. – 2020. – № 2. – С. 165–173.
  10. Наумова К.В., Мазепа А.В., Сынгеева А.К., Куликалова Е.С. Исследование способности штаммов Francisella tularensis к образованию биопленки // Сан. врач. – 2021. – № 8. – С. 69–74.
  11. Плотников Ф.В. Комплексное лечение пациентов с гнойными ранами в зависимости от способности микроорганизмов-возбудителей формировать биопленку // Новости хирургии. – 2014. – Т. 22, № 5. – С. 575–581.
  12. Садретдинова О.В., Груздева О.А., Карпова Т.И. и др. Контаминация Legionella pneumophila систем горячего водоснабжения зданий общественного назначения, в том числе лечебно-профилактических учреждений // Клинич. микробиол. и антимикр. химиотерапия. – 2011. – № 2. – С. 163–167.
  13. Тартаковский И.С., Груздева О.А., Карпова Т.И. и др. Анализ эффективности различных методических подходов, направленных на элиминацию планктонных клеток и биопленок легионелл в потенциально опасных водных системах // Журн. микробиол., эпидемиол. и иммунобиол. – 2018. – № 4. – С. 119–124.
  14. Татаренко О.А., Алексеева Л.П., Телесманич Н.Р. и др. Влияние некоторых факторов на формирование биопленки токсигенными и атоксигенными холерными вибрионами Эль-Тор // Эпидемиол. и инф. болезни. – 2012. – Т. 17, № 5. – С. 36–40.
  15. Титова С.В., Алексеева Л.П., Андрусенко И.Т. Роль биопленок в выживаемости и сохранении вирулентности холерных вибрионов в окружающей среде и организме человека // Журн. микробиол., эпидемиол. и иммунобиол. – 2016. – № 3. – С. 88–97.
  16. Титова С.В., Монахова Е.В., Алексеева Л.П., Писанов Р.В. Молекулярно-генетические основы биопленкообразования как составляющей персистенции Vibrio cholerae в водоёмах Российской Федерации // Экологич. генетика. – 2018. – Т. 16, № 4. – С. 23–32.
  17. Augustine N., Goel A.K., Sivakumar K.S. et al. Resveratrol – a potential inhibitor of biofilm formation in Vibrio cholerae // Phytomedicine. –2014 .– Vol. 21, N 3. – P. 286–289.
  18. Durham-Colleran M.W., Verhoeven A.B, Van Hoek M L. Francisella novicida forms in vitro biofilms mediated by an orphan responseregulator // Microbial. Ecol. – 2010. – Vol. 59, N 3. – P. 457–465.
  19. Faruque S.M., Biswas K., Udden S.M. Trans-missibility of cholera: in vivo formed biofilms and their relationship to infectivity and persistence in the environment // Hrjc. Nat. Acad. Sci. USA. – 2006. – Vol. 193, N 16. – P. 6350–6358.
  20. Felek S., Lawrenz M., Krukonis E. The Yersinia pestis autotransporter YapC mediates host cell binding, autoaggregation and biofilm formation // Microbiology. – 2008. – Vol. 154. – P. 1802–1812.
  21. Hinnebusch J., Erickson D. Yersinia pestis biofilm in the flea vector and its role in the transmission of plague // Curr. Top. Microbiol. Immunol. – 2008. – Vol. 322. – P. 229–248.
  22. Joshua G., Karlyshev A., Smith M. et al. Caenorhabditis elegans model of Yersinia infection: biofilm formation on a biotic surface // Microbiology. – 2003. – Vol. 149. – P. 3221–3229.
  23. Khweek A., Fetherston J., Perry R. Analysis of HmsH and its role in plague biofilm formation // Microbiology. – 2010. – Vol. 156. – P. 1424–1438.
  24. Lundstrom J.O., Andersson A.C., Backman S. et al. Transstadial transmission of Francisella tularensis holarctica in mosquitoes, Sweden // Emerg. Infect. Dis. – 2011. – Vol. 17, N 5. – P. 794–799.
  25. Mahajan UV., Gravgaard J., Turnbull M., Jacobs D.B. Larval exposure to Francisella tularensis LVS affects fitness of the mosquito Culex quinquefasciatus // FEMS Microbiol. Ecol. – 2011. – Vol. 78. – P. 520–530.
  26. Margolis J.J., El-Etr S., Joubert L.M. еt al. Contributions of Francisella tularensis subsp. novicida chitinases and secretion system to biofilm formation on chitin // Appl. Environ. Microbiol. – 2010. – Vol. 76, N 2. – P. 596–608.
  27. Tan L., Darby C. A movable surface: formation of Yersinia sp. biofilms on motile Caenorhabditis elegans // J. Bacteriol. – 2004. – Vol. 186. – P. 5087–5092.
  28. Van Hoek M.L. Biofilms. An advancement in our understanding of Francisella species // Virulence. – 2013. – Vol. 4, N 8. – P. 833–846.
  29. Wortham B., Oliveira M., Fetherston J. et al. Polyamines are required for the expression of key Hms proteins important for Yersinia pestis biofilm formation // Environ. Microbiol. – 2010. – Vol. 12, N 7. – P. 2034–2047.

Дополнительные файлы

Доп. файлы
Действие
1. JATS XML
Скачать

© Кацалуха В.В., Добрынин В.М., Никитин М.Ю., 2023


СМИ зарегистрировано Федеральной службой по надзору в сфере связи, информационных технологий и массовых коммуникаций (Роскомнадзор).
Регистрационный номер и дата принятия решения о регистрации СМИ: № 01975 от 30.12.1992.

Данный сайт использует cookie-файлы

Продолжая использовать наш сайт, вы даете согласие на обработку файлов cookie, которые обеспечивают правильную работу сайта.

О куки-файлах