Heterotrophic nanoflagellates in the pelagic zone and sediments of the eastern Laptev sea

Cover Page

Cite item

Full Text

Abstract

For the first time, the species composition of heterotrophic nanoflagellates, their quantitative characteristics, as well as the abundance and biomass of their main food objects: bacteria and picophytoplankton, were determined in the water column and sediments of the Laptev Sea. On a meridional transect from the Lena delta to the deep-sea zone in early autumn an increase in the number and biomass of planktonic flagellates was recorded in the area of the internal shelf, which is impacted by Lena's freshwater input. The pattern of vertical distribution of planktonic flagellates differed in the different parts of the sea, but everywhere their greatest number was confined to either the surface or the near-bottom water layers. Quantitative parameters of planktonic flagellates positively correlated with the temperature, bacterial abundance and biomass and negatively correlated with the water salinity. The abundance and biomass of heterotrophic flagellates in the surface sediments was 3–4 orders of magnitude higher than in the water column and exceeded those of planktonic flagellates in the shallow sites under 1 m2. A total of 28 species and forms of heterotrophic flagellates have been identified. Representatives of two taxonomic groups: Kinetoplastea and Stramenopiles, which were the most tolerance to the salinity, dominated in the community. The species richness of the flagellates decreased with the water depth and was minimal in the less saline coastal waters and increased in the deep-see area.

Full Text

ВВЕДЕНИЕ

Свободноживущие гетеротрофные нанофлагелляты (жгутиконосцы) повсеместно распространены в морских и пресноводных экосистемах, включая субарктические [10, 22] и арктические [11, 30, 35, 36]. Эти микроорганизмы, имеющие наименьшие размеры и наивысшие темпы размножения среди простейших, являются постоянными компонентами микробных трофических сетей, главными потребителями пикопланктона (бактерий, цианобактерий, водорослей и архей), выедаются инфузориями и беспозвоночными животными и активно участвуют в рециклинге биогенных элементов [12, 24, 26, 27]. В определенные сезоны гетеротрофные нанофлагелляты могут потреблять всю продукцию бактериопланктона [21]. Традиционно гетеротрофные жгутиконосцы считались единой группой, однако данные, полученные в последние годы с помощью молекулярно-генетических методов, показывают, что они представляют собой эволюционно разнородное сообщество жгутиковых организмов, представленных почти во всех ветвях домена Eukaryota, использующих фаготрофное или осмотрофное питание и выполняющих сходную роль в трофических сетях водных экосистем [17, 21, 37].

Море Лаптевых занимает центральное положение в системе морей Российской Арктики. Находясь в свободном водообмене с Северным Ледовитым океаном, на значительном удалении от Атлантического и Тихого океанов, море Лаптевых лишено их отепляющего воздействия. Поверхность моря покрыта льдом в течение большей части года. Только в августе-сентябре море частично освобождается ото льда. Эта мелководная экосистема испытывает большое влияние речного стока, прежде всего стока р. Лены.

В последние десятилетия морская экосистема моря Лаптевых является объектом комплексных научных исследований, в частности, таких как многолетняя программа российско-германского сотрудничества «Система моря Лаптевых» [9]. Однако микроорганизмы, в т. ч. гетеротрофные жгутиконосцы, редко являлись объектом этих исследований. До проведения наших работ имелись лишь единичные сведения о количественном распределении в море Лаптевых планктонных гетеротрофных нанофлагеллят, бактерий и вирусов [5]. Данные о видовом составе гетеротрофных жгутиконосцев отсутствовали. Вместе с тем, как было показано ранее, эти организмы являются постоянным и важным компонентом планктона, бентоса, а также льда арктических морей (Белого, Баренцева, Карского, Бофорта) [4, 7, 11, 13, 25, 30, 38].

Поэтому целью данной работы являлось изучение видового разнообразия, пространственного распределения и роли гетеротрофных жгутиконосцев в водной толще и донных отложениях восточной части моря Лаптевых от дельты Лены до глубоководной зоны.

МАТЕРИАЛЫ И МЕТОДЫ ИССЛЕДОВАНИЯ

Исследования проводили 8–14 сентября 2015 г. в восточной части моря Лаптевых в ходе 63-го рейса НИС “Академик Мстислав Келдыш”. На меридиональном разрезе от приустьевого района р. Лены до глубоководной зоны между 72°00′ и 78°37′ с. ш. было сделано 9 станций, и еще одна станция располагалась на внешнем шельфе в стороне от разреза на участке струйных выделений метана (ст. 5231, метановый полигон “Сипы”, глубина 71 м). Карта-схема расположения станций отбора проб и их подробная характеристика приведены в [1, 8]. В период исследований соленость воды возрастала, а температура снижалась по мере удаления от берега и с нарастанием глубины. Значения этих параметров изменялись от 3.0 до 34.2 psu и от -1.73 до 8.32°С соответственно.

Пробы воды с разных горизонтов отбирали с помощью комплекса Rosette, оборудованного СТD-зондом и пятилитровыми батометрами Нискина. Выбор горизонтов отбора проб проводили на основании предварительного зондирования температуры, солености и флуоресценции. Для отбора придонной воды и верхнего 2-см слоя донных отложений использовали трубки Неймисто.

Воду и грунты для микроскопических исследований сразу после отбора фиксировали 25% глутаровым диальдегидом до конечной концентрации в пробе 1%, хранили в темноте при температуре 4°С и обрабатывали в лаборатории ИБВВ в течение месяца. Численность и размеры гетеротрофных нанофлагеллят учитывали методом эпифлуоресцентной микроскопии на черных ядерных фильтрах производства Объединенного института ядерных исследований (г. Дубна, Россия) с диаметром пор 0.5 мкм и использованием флуорохрома примулин [16]. Фильтры просматривали под микроскопом РПО11 (Россия) при увеличении 1000 раз и освещении УФ-лучами. Линейные размеры жгутиконосцев измеряли с помощью линейного окулярного микрометра. На каждом фильтре считали и измеряли не менее 50 организмов. Их объемы рассчитывали с использованием формул объемов шара, цилиндра или эллипсоида. Для перевода биомассы нанофлагеллят в единицы углерода применяли коэффициент, равный 220 фг C/мкм 3 [15]. Допускали, что 1 гетеротрофный жгутиконосец за 1 ч осветляет объем воды, равный 10 5 объема его клетки [20].

Количество и размеры пикофитопланктона определяли методом эпифлуоресцентной микроскопии по его автофлуоресценции на черных ядерных фильтрах с диаметром пор 0.2 мкм [29]. Фильтры просматривали под эпифлуоресцентным микроскопом РПО11 (Россия) при увеличении 1000 раз и освещении голубыми лучами. Линейные размеры пикофототрофов измеряли с помощью линейного окулярного микрометра, их объемы вычисляли по формулам шара или эллипсоида. На каждом фильтре считали и измеряли не менее 100 клеток. Допускали, что коэффициент для перевода биомассы пикофитопланктона в единицы углерода равен 200 фг C/мкм 3 [43].

Общую численность и размеры бактерий определяли методом эпифлуоресцентной микроскопии с использованием флуорохрома DAPI [32] и микроскопа Olympus BX51 (Япония), соединенного с цифровой камерой и компьютером. На каждом фильтре считали не менее 400 и измеряли не менее 100 клеток в 20 случайно выбранных полях зрения. Сырую биомассу бактерий получали путем умножения их численности на средний объем клеток (V, мкм 3). Содержание углерода в бактериальных клетках (С, фг С/кл) рассчитывали с использованием уравнения: С=120×V 0.72 [31].

Продукцию бактерий в эвфотическом слое воды рассчитывали как произведение их биомассы и удельной скорости роста. Удельную скорость роста бактерий (µ, ч-1) находили по формуле: µ=n×ln2/τ, где n — доля делящихся клеток в бактериопланктоне, τ — продолжительность деления (время от начала деления клеток до их расхождения) [3, 6]. Принимали, что в слоях воды с температурой выше 0°С продолжительность деления бактериальной клетки составляла 1.6 ч, а с температурой воды ниже 0°С — 8 ч [5].

Для определения численности и размеров бентосных жгутиконосцев и бактерий фиксированные пробы донных осадков в лаборатории разбавляли профильтрованным через мембранный фильтр с диаметром пор 0.2 мкм 3% раствором концентрата морской соли, добавляли в качестве детергента пирофосфат натрия до конечной концентрации 1 мМ и подвергали действию ультразвука [23].

Видовой состав гетеротрофных жгутиконосцев изучали с помощью фазово-контрастной микроскопии нефиксированных проб воды и донных отложений. Обнаруженных в этих пробах жгутиконосцев диагностировали по морфологическим признакам и особенностям их движения [2, 25, 41]. Выделение трофических групп жгутиконосцев и дифференцирование видов по типу питания проводили на основании собственных наблюдений и литературных данных [33, 39]. Бета-разнообразие (β) сообществ гетеротрофных нанофлагеллят рассчитывали по формуле Р. Уиттекера: β = (S/α) — 1, где S — количество видов, α — среднее количество видов в сообществах [11].

При установлении взаимосвязей между количественными характеристиками жгутиконосцев и биотическими и абиотическими параметрами окружающей среды использовали ранговый коэффициент корреляции Спирмена для уровня значимости 0.05.

РЕЗУЛЬТАТЫ

В водной толще восточной части моря Лаптевых идентифицировано 25 видов и форм гетеротрофных жгутиконосцев из 9 таксонов, а также неопределенного систематического положения. Это Kinetoplastea Honigberg, 1963 (Neobodo curvifilis (Griessmann, 1913) Moreira, López-Garcia and Vickerman, 2004, N. designis (Skuja, 1948) Moreira, López-Garcia and Vickerman, 2004, Bodo saltans Ehrenberg, 1832, Cryptaulax elegans Larsen and Patterson, 1990, Procryptobia sorokini (Zhukov, 1975) Frolov, Karpov and Mylnikov, 2001, Phyllomitus sp. и Rhynchomonas nasuta (Stokes, 1888) Klebs, 1892); Choanomonada Kent, 1880 (Monosiga marina Paasche, 1961, Diaphenoeca grandis Ellis, 1930, D. sphaerica Thomsen, 1982 и Salpingoeca sp.); Chrysophyceae Pascher, 1914 (Paraphysomonas imperforata Lucas, 1967, P. vestita (Stokes, 1885) De Saedeleer, 1929 и Paraphysomonas sp.); Cercomonadida (Poche, 1913), emend. Vickerman, 1983, emend. Mylnikov, 1986 (Bodomorpha minuta Hollande, 1942, Helkesimastix faccicola Woodcock et Lapage, 1914 и Cercomonas sp.); Bicosoecida Grassé, 1926, emend. Karpov, 1998 (Cafeteria roenbergensis Fenchel and Patterson, 1988); Euglenida Bütschli, 1884 (Petalomonas pusilla Skuja, 1948); Colpodellida Cavalier-Smith, 1993, emend. Adl et al., 2005 (Colpodella sp.); Cryptophyceae Pascher, 1913, emend. Schoenichen, 1925 (Goniomonas amphinema Larsen and Patterson, 1990); Histionidae Flavin and Nerad, 1993 (Reclinomonas americana Flavin and Nerad, 1993) и Eukaryota incertae sedis (Amastigomonas debruynei De Saedeleer, 1931, Ancyromonas sigmoides Kent, 1880 и Kathablepharis remigera (Vørs 1992) Clay and Kugrens, 2000).

Наибольшим видовым богатством отличались кинетопластиды (7 видов). Остальные таксономические группы насчитывали в своем составе от 1 до 4 видов. Наиболее часто (более чем в 30% проб) встречались Bodo saltans, Paraphysomonas imperforata, Paraphysomonas sp. и Procryptobia sorokini. 13 видов жгутиконосцев, что составляет более половины видового списка, были найдены лишь на одной станции, что свидетельствует о высокой неоднородности фауны гетеротрофных нанофлагеллят моря Лаптевых.

Максимальное число видов гетеротрофных жгутиконосцев (10) обнаружено на глубоководной ст. 5227, минимальное (6) — на прибрежной ст. 5217. На всех исследуемых участках наибольшее видовое богатство регистрировалось в поверхностном слое воды и снижалось с глубиной. Виды Bodomorpha minuta, Monosiga marina, Kathablepharis remigera и Rhynchomonas nasuta были обнаружены только в более теплых и менее соленых водах, а виды Goniomonas amphinema, Helkesimastix faccicola и Reclinomonas americana — только в более холодных и соленых водах.

Представленность в сообществе крупных таксономических групп гетеротрофных жгутиконосцев изменялась на станциях меридионального разреза (рис. 1). Наиболее разнообразной их фауна (5–7 крупных таксонов) была в глубоководном районе моря (станции 5228, 5227 и 5225). У фронтального раздела на северной периферии опресненной прибрежной области (ст. 5220) обнаружены только страменопилы и кинетопластиды, которые регистрировались на всех станциях.

 

Рис. 1. Таксономическая структура сообществ планктонных гетеротрофных жгутиконосцев на станциях меридионального разреза в море Лаптевых.

 

Сообщества гетеротрофных жгутиконосцев моря Лаптевых характеризовались невысоким уровнем α-разнообразия: в пробах воды было обнаружено от 1 до 9 (в среднем 2.5) видов. В то же время в каждой отдельно взятой пробе встречалась лишь небольшая часть общего числа видов гетеротрофных нанофлагеллят, что свидетельствует о высоком β-разнообразии их сообществ. Наименьшим β-разнообразием (наибольшей гетерогенностью) отличались сообщества планктонных гетеротрофных жгутиконосцев прибрежных участков, испытывающих сильное влияние пресного стока Лены (станции 5216 и 5217). По мере удаления от берега β-разнообразие увеличивалось, и наибольшим β-разнообразием характеризовались сообщества глубоководных районов моря (станции 5225, 5227 и 5228).

Большинство идентифицированных в море Лаптевых гетеротрофных жгутиконосцев относится к бактериотрофам, основным пищевым ресурсом которых служат бактерии и пиководоросли. Среди них 6 видов являются седиментаторами — это в основном прикрепленные колониальные и одиночные организмы, у которых пищевые частицы (гетеротрофные бактерии, пикоцианобактерии, пиководоросли, крупные вирусные частицы) подгоняются токами воды, вызываемыми биением жгутиков, и 12 видов — «собиратели», которые характеризуются активным поиском и захватом пищи. Также обнаружено 4 вида эврифагов (Paraphysomonas imperforata, P. vestita, Paraphysomonas sp. и Goniomonas amphinema), потребляющих как пико-, так и нанопланктон, и 3 вида облигатных хищников (Colpodella sp., Kathablepharis remigera и Phyllomitus sp.), способных питаться другими жгутиконосцами.

Трофическая структура сообщества гетеротрофных жгутиконосцев в разных районах моря была различной. На самой южной ст. 5216, расположенной в наиболее опресненной прибрежной области, отсутствовали седиментаторы. Необходимо сказать, что все обнаруженные в море Лаптевых виды, относящиеся к этой трофической группе, являются чисто морскими. Седиментаторы доминировали только на ст. 5223, расположенной на внешнем шельфе. Собиратели с активным поиском и захватом пищи преобладали на внутреннем и срединном шельфе (станции 5216, 5220 и 5215_2), а также в глубоководном районе (станции 5227 и 5225). На ст. 5217, расположенной на внутреннем шельфе, в равных долях представлены три трофические группы: седиментаторы, собиратели и эврифаги. На ст. 5228, находящейся на внешнем шельфе, по числу видов доминировали жгутиконосцы с активным поиском пищи и эврифаги. Хищные виды встречались только на четырех станциях: на прибрежной ст. 5216 обнаружен Kathablepharis remigera, который часто встречается в пресных водоемах, на ст. 5223, расположенной на внешнем шельфе, — Phyllomitus sp., а на глубоководных станциях 5227 и 5225 — Phyllomitus sp. и Colpodella sp., причем последний вид отмечен в морских экосистемах впервые.

В донных отложениях моря Лаптевых идентифицировано 7 видов гетеротрофных жгутиконосцев: Lagenoeca sp., Goniomonas amphinema, Goniomonas sp., Cafeteria roenbergensis, Actinomonas mirabilis, Colpodella sp. и Metromonas grandis. Три из них (Lagenoeca sp., Actinomonas mirabilis и Metromonas grandis) не обнаружены в планктоне.

Численность и биомасса планктонных гетеротрофных нанофлагеллят на меридиональном разрезе в восточной части моря Лаптевых колебались в широких пределах: коэффициенты вариации (CV) этих параметров составили 130 и 158% соответственно. Эти простейшие обнаружены в большинстве проб воды, за исключением подповерхностного и придонного слоев на станциях 5223 и 5228, расположенных на среднем шельфе, и глубоководной ст. 5225. Их максимальная численность (1474 кл/мл) зарегистрирована в придонном слое воды на внешнем шельфе в районе струйных выделений метана (на ст. 5231) (табл. 1), максимальная биомасса (108 мг/м 3, или 23.8 мг С/м 3) — также в придонном горизонте, но в области срединного шельфа (ст. 5215_2). Высокие количественные показатели гетеротрофных нанофлагеллят обнаружены на внутреннем (станции 5216 и 5217) и срединном (станции 5220 и 5215_2) шельфе. Их вертикальное распределение существенно различалось между станциями, однако на каждой из них их максимальное количество было приурочено либо к более теплому и менее соленому поверхностному слою, либо к холодному и соленому придонному горизонту. Выявлены положительные связи численности, биомассы и числа видов гетеротрофных нанофлагеллят с температурой воды: r=0.457, 0.549 и 0.659 соответственно, и отрицательные — с соленостью: r=-0.447, -0.603 и -0.623 соответственно.

 

Таблица 1. Численность (N, 103 кл/мл) и биомасса (В, мг С/м3) планктонных гетеротрофных нанофлагеллят (HNF), гетеротрофных бактерий (BAC) и автотрофного пикопланктона (APP)

№ ст.

Параметр

HNF

BAC

APP

5216

N

0.249–0.663*

0.456±0.293

1420–3092

2256±1182

30.1–74.1

52.1±31.2

В

2.9–6.3

4.6±2.4

29.0–60.5

39.2±14.4

6.0–16.5

11.3±7.4

5217

N

0.066–0.172

0.119±0.075

767–1653

1210±627

17.048.0

32.5±21.9

В

0.7–2.4

1.6±1.2

19.5–40,6.1

30.1±14.9

3.5–10.3

6.9±4.8

5220

N

0.064–0.712

0.340±0.273

1106–3050

1675±921

10.7–106.4

50.1±50.0

В

0.9–17.1

6.5±7.3

14.9–38.0

26.0±9.5

2.6–22.6

11.5±10.1

5215-2

N

0.092–1.009

0.413±0.417

739–3032

1693±1067

5.5–103.3

40.8±54.3

В

1.5–23.8

9.0±10.2

12.3–40.2

23.3±12.8

0.6–9.2

3.8±4.7

5223

N

0–0.581

0.224±0.281

379–1478

867±544

8.6–43.2

23.0±18.0

В

0–11.0

4.3±5.3

6.3–19.0

12.0±6.3

1.5–5.3

3.2±1.9

5228

N

0.039–0.481

0.146±0.188

155–2280

678±903

3.5–7.0

5.3±1.8

В

0.2–4.7

1.4±1.9

2.7–15.8

7.0±5.4

0.8–2.2

1.4±0.7

5226

N

0.071–0.332

0.179±0.104

135–572

276±148

3.1–9.2

6.0±3.1

В

0.4–3.0

1.4±1.0

2.2–9.1

4.3±2.4

0.7–1.7

1.2±0.5

5227

N

0.019–0.175

0.094±0.068

181–624

353±181

3.5–7.9

5.5±2.2

В

0.2–2.8

1.2±1.1

2.4–12.6

6.2±3.9

1.2–2.2

1.8±0.5

5225

N

0.033–0.107

0.066±0.031

196–711

400±225

3.5–7.9

5.5±2.2

В

0.2–1.4

0.8±0.6

2.7–13.8

7.4±5.0

0.2–0.5

0.3±0.2

5231

N

0.048–1.474

0.282±0.527

145–794

439±222

3.6–12.5

6.7±3.7

В

0.4–14.3

2.5±4.8

2.6–15.8

7.9±4.3

0.5–1.0

0.7±0.2

* Здесь и в табл. 3 над чертой — пределы колебаний параметра, под чертой — среднее значение ± стандартное отклонение.

 

Численность и биомасса автотрофного пикопланктона в поверхностных и подповерхностных слоях водной толщи моря Лаптевых изменялись в пределах (3.1–106.4) (в среднем 19.5± 27.4)×10 3 кл/мл и 0.20–22.60 (в среднем 3.50± 5.06) мг С/м 3 соответственно (табл. 1). Количественные показатели пикофитопланктона достигали наибольших значений в фотическом слое воды и постепенно уменьшались с глубиной. Его максимальные численность и биомасса зарегистрированы на срединном шельфе на северной границе опресненной речным стоком прибрежной области, где наблюдалось резкое возрастание солености воды (ст. 5220). Численность и биомасса пикофитопланктона, так же как таковые гетеротрофных нанофлагеллят, положительно коррелировали с температурой (r=0.562 и 0.631 соответственно) и отрицательно — с соленостью воды (r=-0.659 и -0.745 соответственно).

Общая численность гетеротрофного бактериопланктона колебалась в широких пределах. Она была максимальной (3.09×10 6 кл/мл) в наиболее опресненной прибрежной области (ст. 5216), минимальной (0.14×10 6 кл/мл) — в глубоководном районе (ст. 5226) и составляла в среднем (0.80±0.80)×10 6 кл/мл (табл. 1). Средний объем бактериальных клеток в пробах воды изменялся от 0.023 до 0.115 (в среднем 0.065±0.017) мкм 3. Это существенно меньше размеров автотрофного пикопланктона, объем клеток которого составлял в среднем 0.933±0.405 мкм 3. Биомасса бактериопланктона находилась в пределах 2.2–49.4 (в среднем 12.7±11.7) мг С/м 3. Максимальные и минимальные значения численности и биомассы бактерий зарегистрированы в одних и тех же пробах воды. Коэффициенты вариации численности и биомассы бактериопланктона оказались равными 99.8 и 92.4% соответственно. Между количественными показателями планктонных гетеротрофных жгутиконосцев и бактерий установлены положительные зависимости: численность жгутиконосцев коррелировала с численностью и биомассой бактерий (r=0.540 и 0.398 соответственно), биомасса жгутиконосцев — с численностью и биомассой бактерий (r=0.747 и 0.526 соответственно). Кроме того, коррелировали друг с другом численности и биомассы автотрофного и гетеротрофного компонентов пикопланктона: r=0.683 и 0.756 соответственно.

В эвфотической зоне воды делящиеся бактерии составляли 1.5–4.0% их общей численности. Удельная скорость роста бактериопланктона находилась в пределах 0.004–0.015 ч-1. Его продукция изменялась от 14.2–16.2 мг С/(м 3×сут) в поверхностных горизонтах воды в области внутреннего и срединного шельфа до 0.4– 0.8 мг С/(м 3×сут) на глубинах 20–26 м в области внешнего шельфа. Средняя для эвфотической зоны продукция бактериопланктона снижалась на порядок в направлении от прибрежных участков, прилегающих к дельте р. Лена, до глубоководных районов, составляя на внутреннем шельфе, срединном шельфе, внешнем шельфе и глубоководном участке 10, 4.7±1.4, 1.2 и 1.7±0.6 мг С/(м 3×сут) соответственно.

Как уже отмечалось, в придонных горизонтах воды моря Лаптевых наблюдалось увеличение количественных показателей гетеротрофных нанофлагеллят и бактерий, причем эти показатели были наиболее высокими в узком пограничном с донными отложениями слое, отбираемом с помощью трубки Неймисто (рис. 2). По-видимому, это связано с поступлением микроорганизмов, органических субстратов и соединений биогенных элементов из донных отложений. Средние численность и биомасса гетеротрофных нанофлагеллят в узком наддонном слое воды составляли 851±400 кл/мл и 14.2±7.1 мг С/м 3 соответственно, бактерий — (2.07±1.04)×10 6 кл/мл и 25.4±13.0 мг С/м 3 соответственно. В воде на расстоянии 1–3 м над дном эти показатели оказались в 2.6–10.7 раз ниже.

 

Рис. 2. Численность (N) и биомасса (B) гетеротрофных нанофлагеллят ((а) и (б) соответственно) и бактерий ((в) и (г) соответственно) в придонных слоях воды: 1–3 м над дном (1) и в 20-см пограничном с донными отложениями слое (2).

 

Количественные показатели гетеротрофных нанофлагеллят и бактерий в донных осадках были на 3–4 порядка выше, чем в водной толще (табл. 2). Средние значения численности и биомассы бентосных гетеротрофных жгутиконосцев оказались равными (3.07±1.80)×10 6 кл/мл и 0.016±0.011 мг С/мл соответственно, бактерий — (3.08±1.05)×10 9 кл/мл и 0.091±0.034 мг С/мл соответственно. Биомасса гетеротрофных нанофлагеллят составляла 13.5–29.8% биомассы бактериобентоса.

 

Таблица 2. Численность, средний объем клетки и биомасса гетеротрофных нанофлагеллят (соответственно NHNF, VHNF и ВHNF) и бактерий (соответственно NВAC, VВAC и ВВAC) в донных отложениях

Параметр

№ ст.

5220

5215_2

5223

5228

5231

NHNF, 106 кл/мл

5.54

1.26

2.60

1.68

4.27

VHNF, мкм3

28

25

21

24

20

ВHNF, мг/мл

0.155

0.031

0.052

0.040

0.085

ВHNF, мг С/мл

0.034

0.006

0.011

0.009

0.018

NВAC, 109 кл/мл

4.45

1.80

2.37

3.05

3.71

VВAC, мкм3

0.083

0.090

0.136

0.070

0.123

ВВAC, мг/мл

0.369

0.162

0.322

0.214

0.456

ВВAC, мг С/мл

0.089

0.038

0.068

0.054

0.098

 

ОБСУЖДЕНИЕ

Микробные сообщества арктических морей, состоящие из бактерий, архей и простейших, существуют в условиях экстремально низкой температуры и освещенности, дефицита субстратов и биогенных элементов, и характеризуются резкими сезонными колебаниями количественных, структурных и функциональных показателей. Их развитие в значительной степени определяется весенней и летней первичной продукцией планктона. Гетеротрофные нанофлагелляты являются постоянным и важным компонентом микробных трофических сетей арктических морей. Как показали проведенные ранее исследования, значительную часть их сообщества занимают широко распространенные таксоны, населяющие морские, пресноводные и почвенные экосистемы во всех регионах земного шара, численность которых обычно составляет 10–20% и более общей численности нанофлагеллят [14, 28, 37].

Большинство видов, обнаруженных в ранне-осенний период сукцессии экосистемы моря Лаптевых, имеют широкие рамки географического распространения и встречаются в т. ч. в арктических и субарктических морях [10, 11, 38, 42]. Сообщество гетеротрофных жгутиконосцев моря Лаптевых сходно с таковыми других северных морей как по видовому составу, так и по таксономической структуре. В нем преобладали кинетопластиды и страменопилы, которые проявляли наибольшую толерантность по отношению к солености и были обнаружены во всех исследованных районах моря. Наиболее часто встречались Goniomonas amphinema и представители р. Paraphysomonas. Общее видовое богатство снижалось с глубиной водной толщи и возрастало по направлению к открытым районам моря: минимальное видовое разнообразие отмечалось в опресненной части, прилегающей к дельте Лены, максимальное — в глубоководной мористой области. В опресненных прибрежных водах фауна жгутиконосцев отличалась большей гетерогенностью по сравнению с морскими водами.

Результаты аналогичных исследований в Белом море свидетельствуют о большей сложности сообществ гетеротрофных нанофлагеллят, населяющих морские и распресненные участки моря по сравнению с солоноватоводными [10]. В сублиторали и батиали Карского моря были идентифицированы 33 вида и формы гетеротрофных жгутиконосцев с преобладанием кинетопластид, страменопил, апузомонад и хоанофлагеллят, из которых 21 вид обнаружен в наилке с наддонной водой, а остальные — в верхнем слое грунта [11]. Как и в Карском море, сообщества гетеротрофных жгутиконосцев моря Лаптевых характеризуются высокими значениями бета-разнообразия и низкими — альфа-разнообразия, что свидетельствует об их потенциально высоком видовом богатстве.

Кластерный анализ выявил в сообществе планктонных гетеротрофных жгутиконосцев моря Лаптевых два четко отличающихся по видовому составу комплекса (рис. 3). В первый из них объединились станции, расположенные на внутреннем и срединном шельфе и в разной степени испытывающие влияние пресноводного стока Лены. Наибольшее сходство наблюдалось между станциями, находящимися на срединном шельфе (станции 5215_2 и 5220). В этом кластере наиболее отличное от других сообщество гетеротрофных нанофлагеллят сформировалось в опресненной прибрежной области (ст. 5216), где кроме морских видов обнаружены виды, обитающие в пресных водоемах. Во второй кластер объединились станции, расположенные на внешнем шельфе и в глубоководном районе.

 

Рис. 3. Дендрограмма биоценотического сходства сообществ гетеротрофных жгутиконосцев (метод полной связи, Эвклидовы расстояния).

 

Высокие значения биомассы гетеротрофных нанофлагеллят зарегистрированы в областях внутреннего и срединного шельфа, низкие — в области внешнего шельфа. При этом в пределах внутреннего и срединного шельфа и глубоководного района средние для столба воды значения биомассы на станциях различались в 1.4–2.9 раза (табл. 3). Отношение биомассы гетеротрофных нанофлагеллят к суммарной биомассе их потенциальных пищевых объектов (гетеротрофного бактериопланктона и автотрофного пикопланктона) изменялось от 4.3 на мелководной ст. 5217 до 48.2% на глубоководной ст. 5226. По-видимому, жгутиконосцы, обитающие на внутреннем шельфе, лучше обеспечены пищей по сравнению с другими районами моря. Между биомассой гетеротрофных нанофлагеллят и суммарной биомассой автотрофного и гетеротрофного пикопланктона выявлена положительная корреляция (n=10, r=0.66). Биомасса гетеротрофных нанофлагеллят в среднем составляла 23–54% биомассы их потенциальных потребителей — растительноядного зоопланктона. Вероятно, гетеротрофные нанофлагелляты могут быть существенным дополнительным пищевым ресурсом для зоопланктона, который в свою очередь может быть важным фактором, контролирующим их развитие. Доля гетеротрофных жгутиконосцев в общей биомассе планктонного сообщества, включающего фитопланктон [8], зоопланктон [1], простейших, бактерий и вирусов, на внутреннем (694 мг С/м 2), срединном (826 мг С/м 2) и внешнем шельфе (511 мг С/м 2) и в глубоководной области (609 мг С/м 2) составляла 4.9, 9.6, 5.3 и 8.4% соответственно.

 

Таблица 3. Средние для верхнего 30-м слоя воды значения биомассы (мг С/м3) автотрофного пикопланктона, гетеротрофных бактерий, гетеротрофных нанофлагеллят и растительноядного зоопланктона в различных районах моря Лаптевых

Параметр

Внутренний шельф

Средний

шельф

Внешний

шельф

Глубоководный район

Автотрофный пикопланктон

6.9–11.2

9.0

3.2–11.5

6.1±4.6

0.8–1.2

1.0

0.3–1.8

1.2±0.8

Бактерии

30–39.2

34.6

11.0–22.0

16.9±5.5

4.8–6.7

5.7

4.2–7.7

6.0±1.8

Автотрофный пикопланктон + Бактерии

36.9–50.4

43.6

14.2–33.5

23.0±9.8

5.6–7.9

6.8

5.6–8.0

7.2±1.4

Флагелляты

1.6–4.6

3.1

2.9–4.1

3.3±0.7

0.8–0.9

0.9

1.2–2.4

1.7 ±0.6

Флагелляты / (Автотрофный пикопланктон + Бактерии), %

4.3–9.1

6.7

9.0–20.4

16.2±6.3

11.4–14.3

12.8

15.0–48.2

27.7±17.9

Зоопланктон*

11.8±3.4

6.1±2.1

3.9±0.8

5.2

Флагелляты / Зоопланктон, %

26.3

54.1

23.1

32.7

* Данные по биомассе зоопланктона взяты из статьи Арашкевич с соавт. [1]. Содержание углерода в сырой биомассе зоопланктона принимали равным 5%.

 

Скорость осветления воды гетеротрофными нанофлагеллятами оказалась равной 3.0–8.9 нл/(экз.×ч), что сопоставимо со скоростью этого процесса в других арктических морях, которая обычно находится в пределах 2.5–10 нл/(экз.×ч) [35, 40]. В областях внутреннего, срединного и внешнего шельфа и в глубоководном районе средняя скорость потребления бактерий составляла 8±5, 9±4, 1.8±1.1 и 2.5±1.6 кл/(экз.×ч) соответственно, а скорость потребления пиководорослей и пикоцианобактерий — 0.22±0.11, 0.25±0.34, 0.034±0.016 и 0.036±0.017 кл/(экз.×ч) соответственно. В среднем гетеротрофные нанофлагелляты потребляли 12.3±5.4% первичной продукции фитопланктона и продукции гетеротрофных бактерий (табл. 4). Максимальные скорости потребления бактерий и автотрофного пикопланктона наблюдались в области срединного шельфа. Эти значения сопоставимы с данными, полученными в июле-сентябре в Центральной Арктике, где гетеротрофные жгутиконосцы выедали 1.1–23.2% (в среднем 6.7%) продукции бактериопланктона [35], но ниже данных, полученных весной в заливе Баффина (в среднем 31±26% продукции бактериопланктона) [40]. В восточной части моря Лаптевых в сентябре 2015 г. роль гетеротрофных нанофлагеллят в выедании первичной продукции планктона на внутреннем и срединном шельфе была существенно выше, чем на внешнем шельфе и в глубоководном районе, тогда как выедание первичной продукции растительноядным зоопланктоном, наоборот, было выше на внешнем шельфе и глубоководном участке. В среднем для всех четырех районов потребление первичной продукции фитопланктона гетеротрофными нанофлагеллятами (3.3±2.9%) было почти в 2 раза ниже ее потребления растительноядным зоопланктоном (6.2±5.5%) [1].

 

Таблица 4. Первичная продукция планктона (PPHY), скорость (GРНY) и доля (GРНY/PPHY) ее потребления гетеротрофными нанофлагеллятами, продукция гетеротрофного бактериопланктона (PВAC), скорость (GВAC) и доля (GВFC/PВAC) ее потребления гетеротрофными нанофлагеллятами в различных районах моря Лаптевых

Параметр

Внутренний шельф

Средний

шельф

Внешний

шельф

Глубоководный район

PPHY, мг С/(м2×сут)*

89.7±13.0

62.0±5.8

73.7±27.3

56.5±0.9

GРНY, мг С/(м2×сут)

3.4

4.4±2.3

0.4

1.0±0.6

GРНY/PPHY, %

3.8

7.1

0.5

1.8

PВAC, мг С/(м2×сут)

108.4

115.1±12.9

29.3

41.8±12

GВAC, мг С/(м2×сут)

14.3

21.8±10.3

1.7

4.7±1.7

GВFC/PВAC, %

13.2

18.9±4.2

5.8

11.2±5.5

* Данные по первичной продукции фитопланктона взяты из статьи Арашкевич с соавт. [1].

 

В морских прибрежных и эстуарных экосистемах количество гетеротрофного бактериопланктона обычно максимально в узком пограничном слое воды над донными отложениями, где регистрируется также высокое содержание взвешенного органического вещества автохтонного и аллохтонного происхождения, оседающего из толщи воды и в дальнейшем потребляемого бентосными организмами [18, 19, 34]. Процесс активной микробной деструкции органического вещества приводит к возникновению высоких концентраций биогенных элементов, высокой численности бактерий и их потребителей непосредственно над поверхностью донных осадков.

В шельфовой зоне моря Лаптевых численность и биомасса гетеротрофных нанофлагеллят в 20-см слое воды над поверхностью донных отложений превышали максимальные значения этих параметров в вышележащих горизонтах в 1.2–9.2 и 1.8–8.9 раза соответственно. Причем наибольшее превышение зарегистрировано в области внешнего шельфа. В узком наддонном слое воды отношение численности бактерий к численности гетеротрофных нанофлагеллят (в среднем 2900±1700) существенно ниже, чем в вышележащих горизонтах (в среднем 6100±4400). Это свидетельствует о напряженных трофических взаимоотношениях между бактериями и нанофлагеллятами в этом пограничном слое воды. Кроме того, меньшие объемы бактериальных клеток в этом слое (0.047±0.022 мкм 3 по сравнению с 0.066±0.013 мкм 3 в вышележащей водной толще) могут быть результатом интенсивного избирательного потребления крупных бактерий гетеротрофными жгутиконосцами, что уже отмечалось в придонных горизонтах воды Карского моря [7]. В то же время высокая концентрация детритных частиц, линейные размеры которых не превышали 30 мкм, населенных микроорганизмами, в придонном слое воды (до 133×10 3 частиц/мл), вероятно, способствовала уменьшению выедания гетеротрофных нанофлагеллят мирным зоопланктоном.

Проведенные впервые исследования гетеротрофных нанофлагеллят в донных отложениях моря Лаптевых выявили их немногочисленный видовой состав и высокий уровень количественного развития. В поверхностном слое донных осадков при отрицательной температуре, солености более 30 psu и высоком количестве бактериобентоса численность гетеротрофных нанофлагеллят составляла (1.2–5.5)×10 6 кл/мл. Это значительно выше их численности, например, в Северном море (0.007–1.1)×10 6 кл/мл [24]. При этом размеры клеток большей части гетеротрофных нанофлагеллят в донных отложениях моря Лаптевых и Северного моря находились в пределах 2–4 и 2–5 мкм соответственно. Максимальные значения численности и биомассы бентосных жгутиконосцев обнаружены в прибрежном районе вблизи дельты Лены. По-видимому, аллохтонные органические вещества, приносимые рекой, наряду с оседающими на дно автохтонными веществами обеспечивают активное функционирование бактериобентоса и его потребителей — гетеротрофных нанофлагеллят.

На шельфе моря Лаптевых на глубинах от 23 до 100 м доли бентосных гетеротрофных бактерий и нанофлагеллят в суммарной биомассе планктонных и бентосных бактерий и нанофлагеллят под 1 м 2 (1316–2457 и 303–802 мг С/м 2 соответственно) составляли 58–80% (в среднем 69±8%) и 39–85% (в среднем 60±18%) соответственно (рис. 4). Только на станциях 5215_2 и 5223 биомасса гетеротрофных нанофлагеллят под 1 м 2 в донных отложениях была меньше, чем в толще воды. На остальных участках она, наоборот, была в 1.46–5.57 раза больше. Биомасса бактериобентоса превышала биомассу бактериопланктона в 1.37–3.94 раза на всех мелководных станциях. В пересчете на 1 м 2 биомасса бактерий была больше биомассы жгутиконосцев как в водной толще (в среднем в 3.7 раза), так и в донных отложениях (в среднем в 5.8 раза). Максимальная суммарная биомасса гетеротрофных нанофлагеллят зарегистрирована на ст. 5220, расположенной на срединном шельфе и характеризующейся резким увеличением солености воды, бактерий — на участке струйных выделений метана (ст. 5231). Полученные данные свидетельствуют о важной роли бентосных микробных сообществ в структуре и функционировании биотического компонента экосистемы шельфа моря Лаптевых.

 

Рис. 4. Биомасса (В) гетеротрофных нанофлагеллят (а) и бактерий (б) в верхнем слое донных отложений (1) и столбе воды (2) на станциях, расположенных в шельфовой области.

 

ЗАКЛЮЧЕНИЕ

Проведенные исследования выявили повсеместное распространение планктонных гетеротрофных жгутиконосцев в восточной части моря Лаптева в ранне-осенний период сукцессии, причем они вносили заметный вклад в формирование биомассы планктона, как в прибрежных, так и в открытых районах моря Лаптевых, и принимали активное участие в потреблении, как первичной продукции фитопланктона, так и продукции гетеротрофного бактериопланктона. Однако в этот сезон их численность и биомасса не достигали высоких значений. Распространение, разнообразие и структура сообщества гетеротрофных нанофлагеллят в большой степени определялись характеристиками водных масс, существенно зависящих от стока реки Лены, распространяющегося на значительные расстояния. В южном, наиболее опресненном районе внутреннего шельфа и в северном глубоководном районе с максимальной соленостью сформировались разные сообщества гетеротрофных жгутиконосцев, и, по-видимому, важным фактором, определяющим их различия, была соленость воды. Количество и биомасса гетеротрофных нанофлагеллят в поверхностном слое донных отложений были на 3–4 порядка выше, чем в водной толще, и в шельфовой зоне моря под 1 м 2 биомасса бентосных жгутиконосцев превышала таковую планктонных жгутиконосцев. Полученные результаты позволяют утверждать, что гетеротрофные нанофлагелляты вносят заметный вклад в формирование биоразнообразия и биомассы арктических морей.

 

×

About the authors

N. G. Kosolapova

Papanin Institute for Biology of Inland Waters, Russian Academy of Sciences; Shirshov Institute of Oceanology, Russian Academy of Sciences

Author for correspondence.
Email: kng@ibiw.yaroslavl.ru
Russian Federation, Borok; Moscow

D. B. Kosolapov

Papanin Institute for Biology of Inland Waters, Russian Academy of Sciences; Cherepovets State University

Email: kng@ibiw.yaroslavl.ru
Russian Federation, Borok; Cherepovets

A. I. Kopylov

Papanin Institute for Biology of Inland Waters, Russian Academy of Sciences

Email: kng@ibiw.yaroslavl.ru
Russian Federation, Borok

A. V. Romanenko

Papanin Institute for Biology of Inland Waters, Russian Academy of Sciences; Shirshov Institute of Oceanology, Russian Academy of Sciences

Email: kng@ibiw.yaroslavl.ru
Russian Federation, Borok; Moscow

References

  1. Арашкевич Е. Г., Дриц А. В., Пастернак А. Ф. и др. Распределение и питание растительноядного зоопланктона в море Лаптевых // Океанология. 2018. Т. 58. № 3. С. 404-419.
  2. Жуков Б. Ф. Атлас пресноводных гетеротрофных жгутиконосцев (биология, экология, систематика). Рыбинск: Дом печати, 1993. 160 с.
  3. Заика В. Е., Макарова Н. П. Частота делящихся микроорганизмов как показатель интенсивности их размножения // Гидробиол. журн. 1989. Т. 25. № 5. С. 32-38.
  4. Копылов А. И., Косолапов Д. Б., Заботкина Е. А. и др. Планктонные вирусы, гетеротрофные бактерии и нанофлагелляты в морских и пресных водах бассейна Карского моря (Арктика) // Биол. внутр. вод. 2012. № 3. С. 15-24.
  5. Копылов А. И., Сажин А. Ф., Заботкина Е. А. и др. Вирусы, бактерии и гетеротрофные нанофлагелляты в планктоне моря Лаптевых // Океанология. 2016. Т. 56. № 6. С. 869-878.
  6. Макарова Н. П. Метод расчета времени генерации по доле делящихся микроорганизмов // Биол. моря. 1975. Вып. 33. С. 116-118.
  7. Романова Н. Д., Мазей Ю. А., Тихоненков Д. В. и др. Сообщества гетеротрофных микроорганизмов на границе «вода-дно» в Карском море // Океанология. 2013. Т. 53. № 3. С. 375-386.
  8. Суханова И. Н., Флинт М. В., Георгиева Е. Ю. и др. Структура сообществ фитопланктона в восточной части моря Лаптевых // Океанология. 2017. Т. 57. № 1. С. 86-102.
  9. Тимохов Л. А. 20 лет российско-германским исследованиям системы моря Лаптевых // Российские полярные исследования. 2013. № 3. С. 5-11.
  10. Тихоненков Д. В., Мазей Ю. А. Распределение гетеротрофных жгутиконосцев вдоль градиента солености: соотношение активного и скрытого видового разнообразия в беломорском эстуарии // Усп. совр. биол. 2013. Т. 133. № 2. С. 178-190.
  11. Тихоненков Д. В., Бурковский И. В., Мазей Ю. А. Свободноживущие гетеротрофные жгутиконосцы сублиторали и батиали Карского моря // Биол. моря. 2015. Т. 41. № 3. С. 196-204.
  12. Azam F., Malfatti F. Microbial structuring of marine ecosystems // Nat. Rev. Microbiol. 2007. V. 5. P. 782-791.
  13. Azovsky A., Saburova M., Tikhonenkov D. et al. Composition, diversity and distribution of microbenthos across the intertidal zones of the Ryazhkov Island (the White Sea) // Eur. J. Protistol. 2013. V. 49. № 4. P. 500-515.
  14. Boenigk J. Nanoflagellates: functional groups and intraspecific variation // Denisia. 2008. V. 23. P. 331-335.
  15. Borsheim K. Y., Bratbak G. Cell volume to carbon conversion factors for a bacterivorous Monas sp. enriched from seawater // Mar. Ecol. Prog. Ser. 1987. V. 36. P. 171-175.
  16. Caron D. A. Technique for enumeration of heterotrophic and phototrophic nanoplankton, using epifluorescence microscopy, and comparison with other procedures // Appl. Environ. Microbiol. 1983. V. 46. № 2. P. 491-498.
  17. Cavalier-Smith T. Flagellates megaevolution. The basis for eukaryote diversification // The flagellates: Unity, diversity and evolution. London, New-York: Taylor and Francis Ltd, 2000. P. 316-239.
  18. Dann L. M., Mitchell J. G., Speck P. G. et al. Virio- and bacterioplankton microscale distributions at the sediment-water interface // PLoS ONE. 2014. V. 9. № 7. e102805.
  19. Drake L. A., Choi K. H., Haskell A. G. E., Dobbs F. C. Vertical profiles of virus-like particles and bacteria in the water column and sediments of Chesapeake Bay, USA // Aquat. Microb. Ecol. 1998. V. 16. № 1. P. 17-25.
  20. Fenchel T. Ecology of heterotrophic microflagellates. II. Bioenergetics and growth // Mar. Ecol. Prog. Ser. 1982. V. 8. P. 225-231.
  21. Fenchel T. Flagellate design and function // The Biology of Free-living Heterotrophic Flagellates. Oxford: Clarendon Press, 1991. P. 7-19.
  22. Fukuda H., Sohrin R., Nagata T., Koike I. Size distribution and biomass of nanoflagellates in meso- and bathypelagic layers of the subarctic Pacific // Aquat. Microb. Ecol. 2007. V. 46. № 2. P. 203-207.
  23. Gough H. L., Stahl D. A. Optimization of direct cell counting in sediment // J. Microbiol. Methods. 2003. V. 52. P. 39-46.
  24. Hondeveld B. J. M., Nieuwland G., Van Duyl F. C., Bak R. P. M. Temporal and spatial variations in heterotrophic nanoflagellate abundance in North Sea sediments // Mar. Ecol. Prog. Ser. 1994. V. 109. P. 235-243.
  25. Ikavalko J., Gradinger R. Flagellates and heliozoans in the Greenland Sea ice studied alive using light microscopy // Polar Biol. 1997. V. 17. P. 473-481.
  26. Jürgens K., Massana R. Protistan grazing on marine bacterioplankton // Microbial Ecology of the Ocean, 2nd edition. New York: Wiley-Liss, 2008. P. 383-441.
  27. Laybourn-Parry J., Parry J. Flagellates and the microbial loop // The Flagellates, Unity, Diversity and Evolution. London, New York: Taylor and Francis, 2000. P. 216-239.
  28. Lee W. J. Small free-living heterotrophic flagellates from marine sediments of Gippsland basin, South-Eastern Australia // Acta Protozool. 2015. V. 54. P. 53-76.
  29. Maclsaac E. A., Stockner J. G. Enumeration of phototrophic picoplankton by autofluorescence microscopy // Handbook of Methods in Aquatic Microbial Ecology. Boca Raton: Lewes Publishers, 1993. P. 187-197.
  30. Monier A., Terrado R., Thaler M. et al. Upper Arctic Ocean water masses harbor distinct communities of heterotrophic flagellates // Biogeosciences. 2013. V. 10. P. 4273-4286.
  31. Norland S. The relationship between biomass and volume of bacteria // Handbook of Methods in Aquatic Microbial Ecology / Eds. Kemp P. et al. Boca Raton: Lewis Publishers, 1993. P. 303-308.
  32. Porter K. G., Feig Y. S. The use of DAPI for identifying and counting of aquatic microflora // Limnol. Oceanogr. 1980. V. 25. № 5. P. 943-948.
  33. Sanders R. W. Trophic strategies among heterotrophic flagellates // The biology of free-living heterotrophic flagellates. Oxford: Clarendon Press, 1991. P. 21-38.
  34. Seymour J. R., Seuront L., Mitchell J. G. Microscale gradients of planktonic microbial com-munities above the sediment surface in a mangrove estuary // Est. Coast. Shelf Sci. 2007. V. 73. P. 651-666.
  35. Sherr E. B., Sherr B. F., Fessenden L. Heterotrophic protists in the Central Arctic Ocean // Deep-Sea Res. II. 1997. V. 44. P. 1665-1682.
  36. Sherr E. B., Sherr B. F., Hartz A. J. Microzooplankton grazing impact in the Western Arctic Ocean // Deep-Sea Res. II. 2009. V. 56. P. 1264-1273.
  37. Thaler M., Lovejoy C. Biogeography of heterotrophic flagellate populations indicates the presence of generalist and specialist taxa in the Arctic Ocean // Appl. Environ. Microbiol. 2015. V. 81. P. 2137-2148.
  38. Tikhonenkov D. V., Mazei Yu. A., Mylnikov A. P. Species diversity of heterotrophic flagellates in White Sea littoral sites // Eur. J. Protistol. 2006. V 42. № 3. P. 191-200.
  39. Tong S. M. Heterotrophic flagellates and other protists from Southampton Water, U. K. // Ophelia. 1997. V. 47. P. 71-131.
  40. Vaque D., Guadavol O., Peters F. et al. Seasonal changes in planktonic bacterivory rates under the ice-covered coastal Arctic Ocean // Limnol. Oceanogr. 2008. V. 53. № 6. P. 2427-2438.
  41. Vørs N. Heterotrophic amoebae, flagellates and Heliozoa from the Tvärminne Area, Gulf of Finland, in 1988-1990 // Ophelia. 1992. V. 36. № 1. P. 1-109.
  42. Vørs N. Heterotrophic amoebae, flagellates and heliozoan from Arctic marine waters (North West Territories, Canada and West Greenland) // Polar Biol. 1993. V. 13. P. 113-126.
  43. Weisse T. Dynamics of autotrophic picoplankton in marine and freshwater ecosystems // Adv. Microb. Ecol. 1993. V. 13. P. 327-370.

Supplementary files

Supplementary Files
Action
1. JATS XML

Copyright (c) 2019 Russian academy of sciences

This website uses cookies

You consent to our cookies if you continue to use our website.

About Cookies