Плодовая мушка — инструмент для поиска механизмов, контролирующих формирование цитоскелета

Обложка

Цитировать

Полный текст

Открытый доступ Открытый доступ
Доступ закрыт Доступ предоставлен
Доступ закрыт Доступ платный или только для подписчиков

Аннотация

Исследования регуляторных факторов и биохимических свойств актинового цитоскелета успешно проводятся на моделях in vitro или с использованием культуры клеток. Однако, как такие факторы функционируют in vivo, создавая невероятное многообразие цитоскелетных структур в процессе развития организма, остается до конца непонятым. Для полного понимания того, как формируются и функционируют цитоскелетные структуры, необходимо, во-первых, выявить полный список факторов, регулирующих сборку структуры, во-вторых, установить пространственно-временной механизм, с помощью которого координируется активность этих факторов, в-третьих, определить, как эти регуляторы и подконтрольные им структуры влияют на динамику развития. В обзоре рассмотрены инновационные методики, сделавшие дрозофилу мощным инструментом в изучении этих вопросов.

Ключевые слова

Об авторах

О. Б Симонова

Институт биологии развития имени Н.К.Кольцова РАН

Email: osimonova@hotmail.com
Москва, Россия

Список литературы

  1. Tilney L.G., DeRosier D.J. How to make a curved Drosophila bristle using straight actin bundles. PNAS USA. 2005; 102(52): 18785–18792. doi: 10.1073/pnas.0509437102.
  2. Hudson A.M., Cooley L. Understanding the function of actin-binding proteins through genetic analysis of Drosophila oogenesis. Annu. Rev. Genet. 2002; 36: 455–488. doi: 10.1146/annurev.genet.36.052802.114101.
  3. Montell D.J., Yoon W.H., Starz-Gaiano M. Group choreography: mechanisms orchestrating the collective movement of border cells. Nat. Rev. Mol. Cell Biol. 2012; 13(10): 631–645. doi: 10.1038/nrm3433.
  4. Kim J.H., Cho A., Yin H. et al. Psidin, a conserved protein that regulates protrusion dynamics and cell migration. Genes Dev. 2011; 25: 730–741. doi: 10.1101/gad.2028611.
  5. Vorontsova Y.E., Zavoloka E.L., Cherezov R.O. et al. Drosophila as a model system used for searching the genes, signaling pathways, and mechanisms controlling cytoskeleton formation. Russ. J. Dev. Biol. 2019; 50: 1–8. doi: 10.1155/2018/7359267.
  6. Fabian L., Brill J.A. Drosophila spermiogenesis: Big things come from little packages. Spermatogenesis. 2012; 2(3): 197–212. doi: 10.4161/spmg.21798.
  7. Desai R., Sarpal R., Ishiyama N. et al. Monomeric alpha-catenin links cadherin to the actin cytoskeleton. Nat. Cell Biol. 2013; 15(3): 261–273. doi: 10.1038/ncb2685.
  8. Mohr S.E., Perrimon N. RNAi screening: new approaches, understandings, and organisms. Wiley Interdiscip. Rev. RNA. 2012; 3(2): 145–158. doi: 10.1002/wrna.110.
  9. Zhang J., Fonovic M., Suyama K. et al. Rab35 controls actin bundling by recruiting fascin as an effector protein. Science. 2009; 325(5945): 1250–1254. doi: 10.1126/science.1174921.
  10. Lee T., Luo L. Mosaic analysis with a repressible cell marker (MARCM) for Drosophila neural development. Trends Neurosci. 2001; 24(5): 251–254. doi: 10.1016/s0166-2236(00)01791-4.
  11. Nefedova, L.N. Drosophila melanogaster as a model of developmental genetics: modern approaches and prospects. Russ. J. Dev. Biol. 2020; 51: 201–211. doi: 10.1134/S1062360420040050.

Дополнительные файлы

Доп. файлы
Действие
1. JATS XML

© Издательство «Наука», 2022