Плодовая мушка — инструмент для поиска механизмов, контролирующих формирование цитоскелета
- Авторы: Симонова О.Б1
-
Учреждения:
- Институт биологии развития имени Н.К.Кольцова РАН
- Выпуск: № 7 (2022)
- Страницы: 40-46
- Раздел: Статьи
- URL: https://journals.eco-vector.com/0032-874X/article/view/631038
- DOI: https://doi.org/10.7868/S0032874X22070079
- ID: 631038
Цитировать
Полный текст



Аннотация
Исследования регуляторных факторов и биохимических свойств актинового цитоскелета успешно проводятся на моделях in vitro или с использованием культуры клеток. Однако, как такие факторы функционируют in vivo, создавая невероятное многообразие цитоскелетных структур в процессе развития организма, остается до конца непонятым. Для полного понимания того, как формируются и функционируют цитоскелетные структуры, необходимо, во-первых, выявить полный список факторов, регулирующих сборку структуры, во-вторых, установить пространственно-временной механизм, с помощью которого координируется активность этих факторов, в-третьих, определить, как эти регуляторы и подконтрольные им структуры влияют на динамику развития. В обзоре рассмотрены инновационные методики, сделавшие дрозофилу мощным инструментом в изучении этих вопросов.
Ключевые слова
Об авторах
О. Б Симонова
Институт биологии развития имени Н.К.Кольцова РАН
Email: osimonova@hotmail.com
Москва, Россия
Список литературы
- Tilney L.G., DeRosier D.J. How to make a curved Drosophila bristle using straight actin bundles. PNAS USA. 2005; 102(52): 18785–18792. doi: 10.1073/pnas.0509437102.
- Hudson A.M., Cooley L. Understanding the function of actin-binding proteins through genetic analysis of Drosophila oogenesis. Annu. Rev. Genet. 2002; 36: 455–488. doi: 10.1146/annurev.genet.36.052802.114101.
- Montell D.J., Yoon W.H., Starz-Gaiano M. Group choreography: mechanisms orchestrating the collective movement of border cells. Nat. Rev. Mol. Cell Biol. 2012; 13(10): 631–645. doi: 10.1038/nrm3433.
- Kim J.H., Cho A., Yin H. et al. Psidin, a conserved protein that regulates protrusion dynamics and cell migration. Genes Dev. 2011; 25: 730–741. doi: 10.1101/gad.2028611.
- Vorontsova Y.E., Zavoloka E.L., Cherezov R.O. et al. Drosophila as a model system used for searching the genes, signaling pathways, and mechanisms controlling cytoskeleton formation. Russ. J. Dev. Biol. 2019; 50: 1–8. doi: 10.1155/2018/7359267.
- Fabian L., Brill J.A. Drosophila spermiogenesis: Big things come from little packages. Spermatogenesis. 2012; 2(3): 197–212. doi: 10.4161/spmg.21798.
- Desai R., Sarpal R., Ishiyama N. et al. Monomeric alpha-catenin links cadherin to the actin cytoskeleton. Nat. Cell Biol. 2013; 15(3): 261–273. doi: 10.1038/ncb2685.
- Mohr S.E., Perrimon N. RNAi screening: new approaches, understandings, and organisms. Wiley Interdiscip. Rev. RNA. 2012; 3(2): 145–158. doi: 10.1002/wrna.110.
- Zhang J., Fonovic M., Suyama K. et al. Rab35 controls actin bundling by recruiting fascin as an effector protein. Science. 2009; 325(5945): 1250–1254. doi: 10.1126/science.1174921.
- Lee T., Luo L. Mosaic analysis with a repressible cell marker (MARCM) for Drosophila neural development. Trends Neurosci. 2001; 24(5): 251–254. doi: 10.1016/s0166-2236(00)01791-4.
- Nefedova, L.N. Drosophila melanogaster as a model of developmental genetics: modern approaches and prospects. Russ. J. Dev. Biol. 2020; 51: 201–211. doi: 10.1134/S1062360420040050.
Дополнительные файлы
