Quantification of polysaccharides in medicinal plant raw materials


Cite item

Full Text

Open Access Open Access
Restricted Access Access granted
Restricted Access Subscription or Fee Access

Abstract

Main assays for the quantification of polysaccharides in medicinal plant raw materials (MPRM) and herbal remedies (HRs) are considered. It should be noted that the pharmacopoeial methods are gravimetry and spectrophotometry, which have a number of disadvantages directly related to their performance and obtained results. However, with the advent of modern instrumental physicochemical methods, such as HPLC with various types of detection and capillary electrophoresis, it has become possible to substantially improve the quality control for MPRM and HRs. It seems very relevant to more widely use the methods in the pharmacopoeial analysis of MPRM and HRs.

Full Text

Restricted Access

About the authors

Sabina Dzheykhunovna Kakhramanova

I.M. Sechenov First Moscow State Medical University (Sechenov University); Research Center for Examination of Medical Products Ministry of Health of the Russian Federation

Email: ksd113@yandex.ru
post-graduate student of the Department 8, Trubetskaya St., Build. 2, Moscow 119991, Russian Federation; 8, Petrovsky Boulevard, Build. 2, Moscow 127051, Russian Federation

Dmitry Olegovich Bokov

I.M. Sechenov First Moscow State Medical University (Sechenov University); Federal Testing Center for Nutrition and Biotechnology

Email: fmmsu@mail.ru
Associate Professor of the Department 8, Trubetskaya St., Build. 2, Moscow 119991, Russian Federation; 22/14, Ustinsky Passage, Moscow 109240, Russian Federation

Irina Alexandrovna Samylina

I.M. Sechenov First Moscow State Medical University (Sechenov University)

Email: laznata@mail.ru
Professor of the Department 8, Trubetskaya St., Build. 2, Moscow 119991, Russian Federation

References

  1. Карпук В.В. Фармакогнозия. Минск: БГУ, 2011; 340.
  2. Оленников Д.Н., Кащенко Н.И. Полисахариды. Современное состояние изученности: экспериментально-наукометрическое исследование. Химия растительного сырья. 2014; 1: 5-26. doi: 10.14258/jcprm.1401005
  3. Куркин В.А. Фармакогнозия: Самара: «Офорт», СамГМУ. 2016: 371-5.
  4. Fiorito S. et al. Selenylated plant polysaccharides: A survey of their chemical and pharmacological properties. Phytochemistry. 2018; 153: 1-10. doi: 10.1016/j.phytochem.2018.05.008
  5. Jiao R. et al. The anti-oxidant and antitumor properties of plant polysaccharides. The American J. of Chinese Medicine. 2016; 44 (3): 463-88. doi: 10.1142/S0192415X16500269
  6. Qu J. et al. Hepatoprotective effect of plant polysaccharides from natural resources: A review of the mechanisms and structure-activity relationship. International J. of Biological Macromolecules. 2020; 161: 24-64. doi: 10.1016/j.ijbiomac.2020.05.196
  7. Государственная фармакопея РФ XIV изд. [Электронное издание]. Режим доступа: http://femb.ru/feml
  8. Государственный реестр лекарственных средств Российской Федерации. [Электронный ресурс]. Режим доступа: http://grls.rosminzdrav.ru
  9. European Pharmacopoeia 10.2-th ed. [Electronic resource]. EDQM (European Directorate for the Quality of Medicines and Healthcare). 2019. Subscription access. Access mode:http://online.edqm.eu/entry.htm.
  10. Дроздова И.Л. Выделение и химическое изучение полисахаридов травы донника рослого (Melilotus altissimus Thuill.). Вестник Воронежского государственного университета. Серия: Химия. Биология. Фармация. 2004; 1: 173-5.
  11. Оленников Д.Н., Танхаева Л.М. Методика количественного определения суммарного содержания полисахаридов в семенах льна (Linum usitatissimum L.). Химия растительного сырья. 2007; 4: 85-90.
  12. Оленников Д.Н., Танхаева Л.М. Методика количественного определения группового состава углеводного комплекса растительных объектов. Химия растительного сырья. 2006; 4: 29-33.
  13. ОФС.1.2.3.0019.15 «Определение сахаров спектрофотометрическим методом». Государственная фармакопея РФ XIV изд. Том 1. [Электронное издание]. Режим доступа: http:// femb.ru/feml
  14. Самылина И.А. и др. Определение сахаров спектрофотометрическими методами. Фармация. 2009; 4: 3-5.
  15. Государственная фармакопея Республики Беларусь. II изд. Том 2. Минск: Центр экспертиз и испытаний в здравоохранении, 2016.
  16. Государственная фармакопея Республики Казахстан. Астана: Жибекжолы, 2015.
  17. Оленников Д.Н., Танхаева Л.М. Разработка технологии получения экстракта подорожника большого сухого. Химия растительного сырья. 2006; 1: 49-54.
  18. Оленников Д.Н., Танхаева Л.М. Методика количественного определения суммарного содержания полифруктанов в корнях лопуха (Arctium spp.). Химия растительного сырья. 2010; 1: 115-20.
  19. Танхаева Л.М., Оленников Д.Н. Методика количественного определения суммарного содержания полифруктанов в корнях одуванчика лекарственного (Taraxacum officinale Wigg.). Химия растительного сырья. 2010; 2: 85-9.
  20. Корж А.П. и др. Количественное определение полисахаридов в корневищах аира болотного. Фармация. 2011; 4: 24-6.
  21. Никулин А.В., Терещенко Г.С., Потанина О.Г. Определение суммы полисахаридов и свободных сахаров в листьях мать-и-мачехи методом УФ-спектрофотометрии. Вопросы биологической, медицинской и фармацевтической химии. 2016; 19 (2): 3-7.
  22. Ровкина К.И. и др. Разработка методики количественного определения полисахаридов листьев березы. Медицинский вестник Башкортостана. 2019; 14, 1 (79): 47-50.
  23. Ровкина К.И. и др. Валидация спектрофотометрической методики количественного определения полисахаридов березы. Медицинский вестник Башкортостана. 2019; 14, 2 (80): 48-51.
  24. Скалозубова Т.А. и др. Полисахариды в листьях и настое крапивы двудомной. Фармация. 2012; 2: 5-7.
  25. Тринеева О.В., Сливкин А.И. Определение суммы полисахаридов и простых сахаров в листьях крапивы двудомной. Вестник Воронежского государственного университета. Серия: Химия. Биология. Фармация. 2017; 1: 164-9.
  26. Авдеева Е.Ю., Краснов Е.А., Семенов А.А. Содержание полисахаридов в надземной части Saussurea controversa DC. Химия растительного сырья. 2015; 3: 43-8. doi: 10.14258/jcprm.201503583
  27. Буханова У.Н., Попов Д.М., Селезенев Н.Г. Методика определения суммы фруктозанов и фруктозы в сборе «Лорполифит». Фармация. 2013; 1: 22-4.
  28. Ненелева Е.В., Евдокимова О.В. Количественная оценка содержания сахаров в коре коричника. Перспективы развития современной медицины. Сборник научных трудов по итогам международной научно-практической конференции. Воронеж, 2015; 2: 201-3.
  29. Талал А.Д. Разработка методики количественного определения полисахаридов в чае, используемом при заболеваниях мочевыделительной системы. Медикофармацевтический журнал «Пульс». 2008; 10 (3): 479.
  30. Тринеева О.В., Казьмина М.А., Сливкин А.И. Определение суммы полисахаридов и восстанавливающих моносахаридов в плодах облепихи крушиновидной различных способов консервации. Материалы VI Международной научно-методической конференции «Фармобразование-2016». Воронеж, изд. ВГУ, 2016: 547-51.
  31. Тринеева О.В., Казьмина М.А., Сливкин А.И. Разработка и валидация методики определения суммы свободных и связанных простых сахаров в плодах облепихи крушиновидной. Разработка и регистрация лекарственных средств. 2017; 1: 138-43.
  32. Бубенчикова В.Н., Малютина А.Ю. Стандартизация сырья прозанника крапчатого (Achyrophorus maculates L.) по содержанию полисахаридов. «Университетская наука: взгляд в будущее». Материалы итоговой научной конференции сотрудников КГМУ, Центрально-Черноземного научного центра РАМН и отделения РАЕН, посвященного 78-летию Курского государственного медицинского университета, Курск, 7 февраля 2013 г. Том 2. Курск, 2013; 39-40.
  33. Боева С.А., Бубенчикова В.Н. Разработка методики количественного определения суммы полисахаридов в траве рода галинзога (Galinsoga). Ученые записки Орловского государственного университета. Серия: Естественные, технические и медицинские науки. 2014; 6: 104-6.
  34. Дроздова И.Л., Лупилина Т.И. Разработка методики количественного определения водорастворимых полисахаридов в траве икотника серого. Курский научно-практический вестник «Человек и его здоровье». 2014; 4: 91-6.
  35. Дроздова И.Л., Денисова Н.Н. Разработка методики количественного определения водорастворимых полисахаридов в траве короставника полевого. Научные ведомости Белгородского государственного университета. Серия: Медицина. Фармация. 2016; 36, 26 (247): 114-9.
  36. Казакова В.С. и др. Определение количественного состава полисахаридных соединений растений рода медуница. Научные результаты биомедицинских исследований. 2016; 2 (4): 73-7. doi: 10.18413/2313-8955-2016-2-4-73-77
  37. Королева Д.С. Разработка и валидация методики количественного определения водорастворимых полисахаридов в траве черноголовки лекарственной. Вестник фармации. 2018; 3 (81): 36-42.
  38. Дьякова Н.А. и др. Разработка методики количественного определения водорастворимых полисахаридов и ее валидация. Современная фармация: проблемы и перспективы развития. 2015; 45-8.
  39. Дьякова Н.А. и др. Рационализированная методика количественного определения водорастворимых полисахаридов и ее валидация. Вестник Воронежского государственного университета. Серия: Химия. Биология. Фармация. 2015; 2: 106-11.
  40. Дьякова Н.А. и др. Исследования по разработке и валидации методики извлечения инулина из корней лопуха большого (Arctium lappa L.). Вестник Воронежского государственного университета. Серия: Химия, Биология, Фармация. 2016; 2-С: 114-8.
  41. Дьякова Н.А. Разработка и валидация экспрессметодики выделения и количественного определения водорастворимых полисахаридов листьев лопуха большого (Arctium lappa L.). Химия растительного сырья. 2018; 4: 81-7. doi: 10.14258/jcprm.2018042195
  42. Masuko T. et al. Carbohydrate analysis by a phenol-sulfuric acid method in microplate format. Analytical biochemistry. 2005; 339 (1): 69-72.
  43. Zou Y. et al. Response surface methodology for optimization of the ultrasonic extraction of polysaccharides from Codonopsispilosula Nannf. var. modesta LT Shen. Carbohydrate Polymers. 2011; 84 (1): 503-8.
  44. Wang J. et al. Geographical origin discrimination and polysaccharides quantitative analysis of Radix Сodonopsis with micro near-infrared spectrometer engine. J. of Innovative Optical Health Sciences. 2018; 11 (01): 1850004.
  45. Хасанов В.В. и др. Количественное определение инулина в сухих водных экстрактах из корней одуванчика и лопуха. Новые достижения в химии и химической технологии растительного сырья. 2009; 2: 76-8.
  46. Боков Д.О., Хромченкова Е.П., Сокуренко М.С., Васильев А.В., Бессонов В.В. Разработка методики определения инулина в цикории растворимом натуральном после ферментативного гидролиза методом высокоэффективной жидкостной хроматографии. Вопросы питания, 2017; 86 (5): 50-55.
  47. Bokov D.O. et al. Physiochemical Features, Qualitative and Quantitative Analysis, Present Status and Application Prospects of Polysaccharide Gums. International Journal of Pharmaceutical Quality Assurance. 2020; 11 (01): 74-82.
  48. Li S.P. et al. Capillary Electrophoresis of Herbal Carbohydrates. Capillary Electromigration Separation Methods. Elsevier. 2018: 373-96. doi: 10.1016/B978-0-12-809375-7.00018-6
  49. Якуба Ю.Ф., Марковский М.Г. Определение глюкозы, сахарозы и фруктозы методом капиллярного электрофореза. Вопросы питания. 2015; 1: 89-94.
  50. Gamini A. et al. Use of Capillary Electrophoresis for Polysaccharide Studies and Applications. In: Schmitt-Kopplin P. (eds) Capillary Electrophoresis. Methods in Molecular Biology, vol. 1483. Humana Press, New York, NY, 2016. doi: 10.1007/978-1-4939-6403-1_17
  51. Stefansson M., Novotny M. Modification of the electrophoretic mobility of neutral and charged polysaccharides. Analytical chemistry. 1994; 66 (20): 3466-71.
  52. Kinoshita M. et al. Determination of molecular mass of acidic polysaccharides by capillary electrophoresis. Biomedical Chromatography. 2002; 16 (2): 141-5.
  53. Taylor D.L. et al. Characterization of gellan gum by capillary electrophoresis. Australian J. of Chemistry. 2012; 65 (8): 1156-64.
  54. Бирюлин С.И., Посокина Н.Е., Тришканева М.В. Выделение углеводов из растительного сырья и их идентификация с применением капиллярного электрофореза. Овощи России. 2019; 5: 84-7. doi: 10.18619/2072-9146-2019-5-84-87
  55. Chen J., Yang F., Guo H., Wu F., Wang X. Optimized hydrolysis and analysis of Radix Asparagi polysaccharide monosaccharide composition by capillary zone electrophoresis. J. of Separation Science. 2015; 38 (13): 2327-31. doi: 10.1002/jssc.201500120

Supplementary files

Supplementary Files
Action
1. JATS XML
Download

Copyright (c) 2020 Russkiy Vrach Publishing House

This website uses cookies

You consent to our cookies if you continue to use our website.

About Cookies