Experience of the application of antiseptics for the treatment of biological matrixes of rat lung

Cover Page

Cite item

Full Text

Abstract

In order to select the optimal method for disinfecting the scaffolds prior to decellularization using morphological methods (studying the biomechanical strength of extracellular matrix fibers) and analyzing chemiluminescence in rats, the effect of octenisept and chlorhexidine was studied at different concentrations on the biological matrices of the lungs before and after decellularization. Chlorhexidine at a dilution of 1:10 possessed the least damaging properties for the matrix and most contributed to the decontamination of the cages for further storage and experimental studies.

About the authors

E. V. Kuevda

Кубанский государственный медицинский университет

Author for correspondence.
Email: elenakuevda@yandex.ru
Russian Federation, Краснодар

E. A. Gubareva

Кубанский государственный медицинский университет

Email: elenakuevda@yandex.ru
Russian Federation, Краснодар

A. A. Basov

Кубанский государственный медицинский университет; Кубанский государственный университет

Email: elenakuevda@yandex.ru
Russian Federation, Краснодар

S. V. Krasheninnikov

Национальный исследовательский центр “Курчатовский институт”

Email: elenakuevda@yandex.ru
Russian Federation, Москва

T. E. Grigoriev

Национальный исследовательский центр “Курчатовский институт”

Email: elenakuevda@yandex.ru
Russian Federation, Москва

I. S. Gumenyuk

Национальный исследовательский центр “Курчатовский институт”

Email: elenakuevda@yandex.ru
Russian Federation, Москва

S. S. Dzhimak

Национальный исследовательский центр “Курчатовский институт”

Email: elenakuevda@yandex.ru
Russian Federation, Москва

O. A. Kachanova

Кубанский государственный медицинский университет

Email: elenakuevda@yandex.ru
Russian Federation, Краснодар

S. N. Chvalun

Национальный исследовательский центр “Курчатовский институт”

Email: elenakuevda@yandex.ru
Russian Federation, Москва

References

  1. Balestrini J.L., Liu A., Gard A.L., et al. // Tissue Eng. Pt C. 2016. V. 22. № 3. P. 1–10.
  2. Scarritt M.E., Pashos N.C., Bunnell B.A. // Frontiers in Bioeng. and Biotechnol. 2015. V. 3. № 43. P. 1–17.
  3. Torbeck L., Raccasi D., Guilfoyle D.E., et al. // PDA J. Pharm. Sci. Technol. 2011. V. 65. P. 535–543.
  4. von Woedtke T., Kramer A. // GMS Krankenhaushygiene Interdisziplinar. 2008. V. 3. № 19. P. 1–10.
  5. Leow-Dyke S.F., Rooney P., Kearney J.N. // Tissue Eng. Pt C. 2016. V. 22. № 3. P. 1–11.
  6. Nguyen H., Cassady A.I., Bennett M.B., et al. // Bone. 2013. V. 57. P. 194–200.
  7. Wilshaw S.P., Rooney P., Berry H., et al. // Tissue Eng. Pt A. 2012. V. 18. P. 471–483.
  8. Hogg P., Rooney P., Leow-Dyke S., et al. // Cell Tissue Bank. 2015. V. 16. P. 351–359.
  9. Gouk S.S., Lim T.M., Teoh S.H., et al. // J. Biomed. Mater. Res. B. Appl. Biomater. 2008. V. 84. P. 205.
  10. Куевда Е.В., Губарева Е.А., Крашенинников С.В., Григорьев Т.Е., Гуменюк И.С., Сотниченко А.С., Гилевич И.В., Карал-оглы Д.Д., Орлов С.В., Чвалун С.Н., Редько А.Н., Алексеенко С.Н., Маккиарини П. // ДАН. 2016. Т. 470. № 6. С. 724–727.
  11. Куевда Е.В., Губарева Е.А., Сотниченко А.С., Гуменюк И.С., Гилевич И.В., Поляков И.С., Порханов В.А., Алексеенко С.Н., Маккиарини П. // Вестн. трансплантологии и искусственных органов. 2016. Т. 18. № 1. С. 38–44.
  12. Владимиров Ю.А., Проскурнина Е.В., Измайлов Д.Ю. // Биофизика. 2011. Т. 56. № 6. С. 1081–1090.
  13. Быков И.М., Басов А.А., Малышко В.В., Джимак С.С., Федосов С.Р., Моисеев А. В. // БЭБиМ. 2017. Т. 163. № 2. С. 237–241.
  14. Багаева В.В., Попова В.М., Пашкова Г.С., Исаджанян К.Е., Никитин В.В., Жиленков Е.Л. // Исслед. и практика в медицине. 2015. Т. 2. № 3. С. 35–42.
  15. Королюк В.Б. Медицинская микробиология. СПб.: ЭЛБИ-СПБ, 2002. 268 с.

Supplementary files

Supplementary Files
Action
1. JATS XML

Copyright (c) 2019 Russian academy of sciences

This website uses cookies

You consent to our cookies if you continue to use our website.

About Cookies