Влияние салициловой кислоты на окислительные и фотосинтетические процессы в растениях томатов при инвазии галловой нематодой Meloidogyne incognita (Kofoid ET White, 1919) Chitwood, 1949

Обложка

Цитировать

Полный текст

Аннотация

Проведено исследование процессов перекисного окисления липидов (ПОЛ) и активности фермента пероксидазы, а также фотосинтетических пигментов в восприимчивых растениях томатов, обработанных салициловой кислотой (СК), при заражении галловой нематодой Meloidogyne incognita. Показано, что в корнях СК-обработанных растений активность ПОЛ выше по сравнению с необработанными, особенно в случае инвазии нематодами. Достоверное увеличение активности ПОЛ в СК-обработанных инвазированных растениях по сравнению с необработанными отмечалось в период перехода личинок в седентарную стадию и начала образования мест питания - гигантских клеток (3-5 сутки, после инвазии). Это, по-видимому, способствует угнетению развития паразита и снижению заражённости растений, а также указывает на участие окислительных процессов в механизме индуцированной устойчивости растений к галловым нематодам. В СК-обработанных растениях качественный и количественный состав фотосинтетических пигментов, нарушенный инвазией, восстанавливался и соответствовал контрольному уровню.

Об авторах

Ж. В. Удалова

Институт проблем экологии и эволюции имени А.Н. Северцова Российской академии наук

Автор, ответственный за переписку.
Email: udalova.zh@rambler.ru
Россия, 119071, г. Москва, Ленинский проспект, 33

С. В. Зиновьева

Институт проблем экологии и эволюции имени А.Н. Северцова Российской академии наук

Email: zinovievas@mail.ru
Россия, 119071, г. Москва, Ленинский проспект, 33

Список литературы

  1. Decraemer W., Hunt D.J. Structure and classification in Plant nematology. 2nd Ed. Perry R.N., Moens M., ed. (Wallingford; Oxfordshire: CAB International). 2013. P. 3-29.
  2. Melillo M.T., Leonetti P., Bongiovanni M., et al. //New Phytologist. 2006. V. 170. P. 501-512. doi.org/10.1111/j.1469-8137.2006.01724.x
  3. Melillo M.T., Leonetti P., Leone A., et al. // Europ. J. Plant Pathol. 2011. V. 130. P.489-502. doi: 10.1007/s10658-011-9768-4
  4. Козел Н.В. Шалыго Н.В. //Физиология растений. 2009. Т. 56. № 3. С. 351-358.
  5. Desikan R., Soheila A.-H.-Mackerness, Hancock J.T., Steven J. //Plant Physiol. 2001.V. 127. P. 159-172. doi: 10.1104/pp.127.1.159
  6. Herrera-Vásquez A., Salinas P., Holuigue L. // Front Plant. Sci. 2015. Mar. 19; 6:171. doi: 10.3389/fpls.2015.00171
  7. Zurbriggen M.D., Carrillo N., Hajirezaei M.-R. //Plant Signal Behav. 2010. V. 5. P. 393-396. doi: 10.4161/psb.5.4.10793/
  8. Nazar R., Iqbal N., Syeed S., et al. // J. Plant. Physiol. 2011.V. 168. P. 807-815. doi: 10.1016/j.jplph. 2010.11.001
  9. Зиновьева С.В., Удалова Ж.В., Васюкова Н.И. и др. // Изв. РАН. Сер. биол. 2011. № 5. C. 532-538.
  10. Кузнецов Вл.В., Кузнецов В.В., Романов Г.А. Молекулярно-генетические и биохимические методы в современной биологии растений. М.: БИНОМ. Лаборатория знаний. 2012. 487 с.
  11. Lichtenthaler H.K. //Methods Enzymol. 1987. V. 148. P. 350-382. http/doi.org/10.1016/0076-6879(87)48036-1.
  12. Gillet F.X., Bournaud C., Antonino de Souza Júnior J.D., et.al. // Ann Bot. 2017. 119(5)/ P. 775-789. doi: 10.1093/aob/mcw260
  13. Zacheo G., Bleve-Zacheo T., Pricolo G. // Nematol. medit. 1987. V. 15. P. 293-302.
  14. Wada M. // Plant Science. 2013. V. 210. P. 177-182. DOI: 0.1016/j.plantsci.2013.05.016 7
  15. Лаврова В.В., Зиновьева С.В., Удалова Ж.В. и др. // ДАН. 2016. Т. 476(4). Р. 466-470.

Дополнительные файлы

Доп. файлы
Действие
1. JATS XML

© Российская академия наук, 2019

Данный сайт использует cookie-файлы

Продолжая использовать наш сайт, вы даете согласие на обработку файлов cookie, которые обеспечивают правильную работу сайта.

О куки-файлах