Влияние салициловой кислоты на окислительные и фотосинтетические процессы в растениях томатов при инвазии галловой нематодой Meloidogyne incognita (Kofoid ET White, 1919) Chitwood, 1949

Обложка

Цитировать

Полный текст

Открытый доступ Открытый доступ
Доступ закрыт Доступ предоставлен
Доступ закрыт Только для подписчиков

Аннотация

Проведено исследование процессов перекисного окисления липидов (ПОЛ) и активности фермента пероксидазы, а также фотосинтетических пигментов в восприимчивых растениях томатов, обработанных салициловой кислотой (СК), при заражении галловой нематодой Meloidogyne incognita. Показано, что в корнях СК-обработанных растений активность ПОЛ выше по сравнению с необработанными, особенно в случае инвазии нематодами. Достоверное увеличение активности ПОЛ в СК-обработанных инвазированных растениях по сравнению с необработанными отмечалось в период перехода личинок в седентарную стадию и начала образования мест питания - гигантских клеток (3-5 сутки, после инвазии). Это, по-видимому, способствует угнетению развития паразита и снижению заражённости растений, а также указывает на участие окислительных процессов в механизме индуцированной устойчивости растений к галловым нематодам. В СК-обработанных растениях качественный и количественный состав фотосинтетических пигментов, нарушенный инвазией, восстанавливался и соответствовал контрольному уровню.

Об авторах

Ж. В. Удалова

Институт проблем экологии и эволюции имени А.Н. Северцова Российской академии наук

Автор, ответственный за переписку.
Email: udalova.zh@rambler.ru
Россия, 119071, г. Москва, Ленинский проспект, 33

С. В. Зиновьева

Институт проблем экологии и эволюции имени А.Н. Северцова Российской академии наук

Email: zinovievas@mail.ru
Россия, 119071, г. Москва, Ленинский проспект, 33

Список литературы

  1. Decraemer W., Hunt D.J. Structure and classification in Plant nematology. 2nd Ed. Perry R.N., Moens M., ed. (Wallingford; Oxfordshire: CAB International). 2013. P. 3-29.
  2. Melillo M.T., Leonetti P., Bongiovanni M., et al. //New Phytologist. 2006. V. 170. P. 501-512. doi.org/10.1111/j.1469-8137.2006.01724.x
  3. Melillo M.T., Leonetti P., Leone A., et al. // Europ. J. Plant Pathol. 2011. V. 130. P.489-502. doi: 10.1007/s10658-011-9768-4
  4. Козел Н.В. Шалыго Н.В. //Физиология растений. 2009. Т. 56. № 3. С. 351-358.
  5. Desikan R., Soheila A.-H.-Mackerness, Hancock J.T., Steven J. //Plant Physiol. 2001.V. 127. P. 159-172. doi: 10.1104/pp.127.1.159
  6. Herrera-Vásquez A., Salinas P., Holuigue L. // Front Plant. Sci. 2015. Mar. 19; 6:171. doi: 10.3389/fpls.2015.00171
  7. Zurbriggen M.D., Carrillo N., Hajirezaei M.-R. //Plant Signal Behav. 2010. V. 5. P. 393-396. doi: 10.4161/psb.5.4.10793/
  8. Nazar R., Iqbal N., Syeed S., et al. // J. Plant. Physiol. 2011.V. 168. P. 807-815. doi: 10.1016/j.jplph. 2010.11.001
  9. Зиновьева С.В., Удалова Ж.В., Васюкова Н.И. и др. // Изв. РАН. Сер. биол. 2011. № 5. C. 532-538.
  10. Кузнецов Вл.В., Кузнецов В.В., Романов Г.А. Молекулярно-генетические и биохимические методы в современной биологии растений. М.: БИНОМ. Лаборатория знаний. 2012. 487 с.
  11. Lichtenthaler H.K. //Methods Enzymol. 1987. V. 148. P. 350-382. http/doi.org/10.1016/0076-6879(87)48036-1.
  12. Gillet F.X., Bournaud C., Antonino de Souza Júnior J.D., et.al. // Ann Bot. 2017. 119(5)/ P. 775-789. doi: 10.1093/aob/mcw260
  13. Zacheo G., Bleve-Zacheo T., Pricolo G. // Nematol. medit. 1987. V. 15. P. 293-302.
  14. Wada M. // Plant Science. 2013. V. 210. P. 177-182. DOI: 0.1016/j.plantsci.2013.05.016 7
  15. Лаврова В.В., Зиновьева С.В., Удалова Ж.В. и др. // ДАН. 2016. Т. 476(4). Р. 466-470.

Дополнительные файлы

Доп. файлы
Действие
1. JATS XML

© Российская академия наук, 2019