ESTIMATION OF GLYCYRRHIZIC ACID IN THE ROOTS OF GLYCYRRHIZA GLABRA WHICH GROWS IN SOME AREAS OF THE VOLGOGRAD REGION

Full Text

Глицирризиновая кислота - это ценное биологически активное соединение, обусловливающее отхаркивающие, противовоспалительные, антибактериальные и противовирусные, противоязвенные, а также имму-нотропные фармакологические свойства лекарственного растительного сырья «Корни солодки» [5, 8]. Данный тритерпеновый сапонин обнаружен более чем в 10 разновидностях солодки. Одним из официналь-ных источников гликозида является солодка голая (Glycyrrhiza glabra L.) - евро-азиатский вид, произрастающий практически на всей территории Российской Федерации. В подземных органах лекарственного растения глицирризиновая кислота находится в виде смешанных калиево-кальциево-магниевых солей, и ее содержание колеблется в пределах 2-24 % [5]. Данное биологически активное вещество накапливается в коровой паренхиме подземных органов лекарственного растения. Географические и экологические условия произрастания, возраст ценопопуляции, фаза вегетации существенно влияют на накопление глицирризиновой кислоты в лекарственном растительном сырье. Известно также, что ее содержание возрастает по мере продвижения ареала лекарственного растения на юг нашей страны [5, 6]. Одним из самых южных регионов является Волгоградская область, где солодка голая образует достаточно крупные заросли в поймах Дона, Волги и Ахтубы, а также в междуречье Хопра и Кумылги [6]. Волгоградская область - обширная территория, расположенная на юго-востоке европейской части России в низовьях Волги и на Среднем Дону. Территория региона исследования характеризуется такими особенностями климата, как высокая степень континентально-сти, засушливость, неустойчивость режима увлажнения и большая его изменчивость. При этом многие районы области находятся в различных географических и климатических условиях. Изменение температуры, влажности и смена природных зон происходит по направлению с северо-запада на юго-восток [2, 4]. Северо-западная часть области находится в пределах зоны лесостепей, восточная - зоны степей, подзоны южных, опустыненных степей, приближаясь к настоящим пустыням [3, 7]. Все это оказывает непосредственное влияние на динамику накопления биологически активных веществ в лекарственных растениях, произрастающих в разных частях территории области (в частности, глицирризиновой кислоты в корнях солодки голой). 116 Выпуск 4 (56). 2015 ©зеторСз [gofiïijf3 После распада Советского Союза все основные ресурсы солодки голой оказались за пределами Российской Федерации. И поиск новых промысловых массивов этого растения в этих условиях становится важной задачей фармации. Нижнее Поволжье является одной из немногих территорий нашей страны, где заросли солодки голой могут оказаться перспективными для организации заготовительного процесса. Таким образом, с целью эффективного использования внутренних ресурсов региона имеется необходимость проведения химической таксации и выявление на территории Волгоградской области популяций солодки голой с наиболее высоким содержанием глицирризиновой кислоты. ЦЕЛЬ РАБОТЫ Сравнительное изучение содержания глицирризи-новой кислоты в подземных органах солодки голой, заготовленных от дикорастущих популяций в трех административных районах Волгоградской области и выявление наиболее перспективных из них для заготовки лекарственного растительного сырья. МЕТОДИКА ИССЛЕДОВАНИЯ Объектом исследования являлись подземные органы солодки голой, заготовленные в сентябре-октябре 2014 г. от дикорастущих популяций данного лекарственного растения, произрастающих в Кумылженс-ком, Алексеевском и Михайловском районах Волгоградской области. Определение содержания глицирризиновой кислоты в корнях солодки голой проводили с использованием дифференциальной спектрофотометрии в соответствии с методикой, разработанной сотрудниками кафедры фармакогнозии с ботаникой и основами фитотерапии Самарского государственного медицинского университета [1]. Точную навеску измельченного сырья (около 2,0) помещали в коническую колбу со шлифом вместимостью 100 мл, прибавляли 20 мл 96%-го спирта этилового. В колбу вносили 20 мл 3%-го ацетонового раствора кислоты трихлоруксусной и нагревали на водяной бане в течение 30 минут. Полученный раствор фильтровали через бумажный фильтр, колбу промывали двумя порциями ацетона по 5 мл и выливали в общий объем. К полученному фильтрату прибавляли по каплям раствор аммиака концентрированный (не встряхивая колбу) до появления обильного осадка (pH 8,3-9 по универсальному индикатору). Раствор с осадком переносили на фильтр. Колбу и фильтр промывали 10 мл ацетона. Осадок с фильтром переносили в колбу, в которой проводилось осаждение, и растворяли в 50 мл воды, количественно переносили в мерную колбу вместимостью 250 мл и доводили объем раствора водой до метки (раствор А). 1 мл раствора А помещали в мерную колбу вместимостью 25 мл и доводили объем раствора водой до метки (раствор Б). Оптическую плотность раствора Б измеряли на спектрофотометре при длине волны 258 нм в кювете с толщиной слоя 10 мм, используя в качестве раствора сравнения воду. Параллельно измеряли оптическую плотность раствора Б стандартного образца глицирама. Приготовление раствора стандартного образца проводили, растворяя 0,025 г глицирама (ФС 42-0034-00) в мерной колбе вместимостью 50 мл в 15 мл 50%-го спирта этилового. Объем раствора доводили до метки 50%-м спиртом этиловым (раствор А). 5 мл раствора А помещали в мерную колбу вместимостью 25 мл и объем раствора доводили водой до метки (раствор Б) [1]. Содержание глицирризиновой кислоты в пересчете на глицирам в процентах (X) рассчитывали по формуле: D X 7n„ X 250 X 25 X 5 X 100 D X rru X 250000 X = - X 100 = m X 1 X D0 X 50 X 25 X (100- W) ' ~~ m X D0 X (100 - W)’ где D - оптическая плотность испытуемого раствора (Б) при длине волны 258 нм; D0 - оптическая плотность раствора стандартного образца глицирама (Б) при длине волны 258 нм; m - масса сырья, г; m0 - масса стандартного образца глицирама, г; W - потеря в массе при высушивании, % [1]. Спектрофотометрическое определение проводили на спектрофотометрах Shimadzu UV-1800 и Specord 40 (Analytik Jena). Все использованные в работе реактивы имели степень чистоты ч.д.а. РЕЗУЛЬТАТЫ ИССЛЕДОВАНИЯ И ИХ ОБСУЖДЕНИЕ Определение содержания глицирризиновой кислоты в сырье солодки голой проводили методом дифференциальной спектрофотометрии. Изучение УФ-спек-тров полученных извлечений исследуемых образцов сырья в диапазоне длин волн от 190 до 400 нм показало, что максимумы поглощения регистрируются при длине волн 257-261 нм (рис.). Аналогичные спектральные характеристики имеет раствор стандартного образца глицирама [максимум поглощения при (258 ± 3) нм]. Рис. УФ-спектры раствора извлечения из сырья солодки голой (1) и раствора ГСО глицирама (2) Результаты количественного определения глицирризиновой кислоты в исследуемых образцах сырья Выпуск 4 (56). 2015 117 ЩЩгорСз [ЩсмеТКЩ солодки голой, заготовленного от разных популяций лекарственного растения, представлены в табл. При этом следует отметить, что максимальное содержание глицирризиновой кислоты наблюдалось в образцах сырья солодки голой, заготовленных от популяций, произрастающих в условиях достаточного увлажнения и освещенности (на открытых пойменных лугах и в местах разлива рек Хопра и Кумылги) в Ку-мылженском и Алексеевском районах. Меньшие показатели накопления биологически активного вещества отмечались в популяциях более сухих местообитаний, остепненных лугах Михайловского района. Данные содержания глицирризиновой кислоты в сырье солодки голой, заготовленном на территории Волгоградской области ЗАКЛЮЧЕНИЕ Таким образом, в результате проведенного исследования нами установлено, что содержание глицирризиновой кислоты в сырье солодки голой, заготовленном в Волгоградской области, колеблется в пределах от (7,72 ± 0,23) % до (12,43 ± 0,35) % и зависит от местообитания популяции. Полученные предварительные данные о накоплении биологически активного вещества указывают на перспективность организации и проведения заготовок лекарственного растительного сырья на территории данного региона. ЛИТЕРАТУРА

About the authors

A. V. Yanitskaya

SFEE HPE «Volgograd State Medical University» of the Ministry of Public Health of the Russian Federation

Email: a.yanitskaya@yandex.ru

V. A. Kurkin

Samara State Medical University

O. V. Nedilko

SFEE HPE «Volgograd State Medical University» of the Ministry of Public Health of the Russian Federation

I. N. Samoilova

SFEE HPE «Volgograd State Medical University» of the Ministry of Public Health of the Russian Federation

A. S. Scherbinin

SFEE HPE «Volgograd State Medical University» of the Ministry of Public Health of the Russian Federation

M. V. Egorov

Samara State Medical University

References

Supplementary files