HEMOPOESIS AND FUNCTIONAL CONDITION OF BLOOD LEUKOCYTES DURING INFLAMMATION IN THE BACKGROUND OF LOCAL REMOVAL OF NONPHOCOTATING GRANULOZITES

Full Text

Определяющими признаками воспаления являются сложные изменения системы крови, микро-циркуляторного русла и соединительной ткани в виде альтерации, экссудации, эмиграции лейкоцитов и пролиферации. Реакции, возникающие на повреждения со стороны всего организма, являются основополагающими и характеризуют воспали-тельно-репаративные изменения макроорганизма в целом [1-3]. Сигнальными клетками, появляющимися первыми в месте повреждения, являются нейтрофиль-ные гранулоциты. Они в свою очередь стимулируют лимфоциты, моноциты, эозинофилы, которые прибывают на помощь нетрофильным гранулоцитам и активизируют их деятельность. Поэтому нейтро-фильные гранулоциты становятся важным звеном, определяющим впоследствии саму возможность внедрения и локализации антигена [4-6]. Нейтрофильные гранулоциты играют важную роль в воспалительном процессе благодаря нахождению в гранулярном аппарате клеток структур, которые активируются и при дегрануляции выделяют свободные радикалы кислорода, лизосомальные энзимы, способствующие подавлению чужеродных микроорганизмов, проникших в соединительную ткань [7, 8, 12]. Антибактериальная функция авторизирован-ных нейтрофилов при воспалении, заключающаяся в выделении катионных белков и факторов проницаемости, способствует активации дегрануляции нефагоцитирующих гранулоцитов и базофильных лейкоцитов, что указывает на стимуляцию клеток мононуклеарной фагоцитарной системы. В результате многообразия клеточных коопераций формируется эффективный противоинфекционный барьер [9, 10]. В настоящее время установлено взаимодействие мононуклеарных и полиморфноядерных клеток [11]. Лимфоциты и моноциты (макрофаги) могут модифицировать функции и активность нейтрофильных гранулоцитов, а нейтрофилы в свою очередь способны оказывать существенное влияние на мононуклеарные клетки [12]. Наиболее актуальными проблемами воспаления остаются механизмы взаимодействия всей тучноклеточной системы, сдерживающие прогрессирование хронического воспаления и играющие компенсаторную роль в организме. ЦЕЛЬ РАБОТЫ Экспериментальное изучение функционального состояния лейкоцитов крови и гемопоэза при воспалении на фоне локального удаления нефагоцитирующих гранулоцитов. МЕТОДИКА ИССЛЕДОВАНИЯ Эксперимент проведен на 24 крысах-самцах линии Wistar массой 180-220 г. В контрольную группу отобрано 12 животных, не имеющих патологических процессов. Основную группу составили 12 крыс-самцов с явными признаками воспаления. О функциональном состоянии лейкоцитов крови судили по активности их маркерных ферментов. Маркерами функциональной активности нейтрофилов служили миелопероксидаза (МПО) и кислая фосфатаза (КФ), моноцитов-макрофагов - а-нафтилацетат-эстераза (а-НАЭ), лимфоцитов - КФ и а-НАЭ. Миелопероксидаза - фермент, локализующийся преимущественно в специфических гранулах нейтрофилов, определяли по методу Грэхема -Кнолля, основанному на окислении бензидина перекисью водорода в коричневый оксибензидин в присутствии пероксидазы. Свежие мазки крови фиксировали в 4%-м формалиново-спиртовом растворе, состоящем из 10 частей 40%-го формальдегида и 90 частей 96%-го спирта в течение 30 с. Отмывали в проточной воде и высушивали. Заливали реактивом на пероксидазу, состоящим из бензидина, растворенного в 6 мл 96%-го спирта, 4 мл воды и 0,02 мл 3%-й перекиси водорода, на 5 мин. Тщательно промывали в проточной воде и высушивали. Докрашивали азуром II-эозином. Подсчет гранул производили с учетом интенсивности их окраски в световом микроскопе «Биолам». Интенсивность окраски оценивали по 3-балльной шкале. Активность фермента рассчитывали по формуле Астальди и выражали в СЦК. Кислую фосфатазу определяли методом азосочетания Берстона. Нефиксированные мазки инкубировали при 37 °С в течение 2 ч в среде, состоящей из 10 мг нафтол-AS-фосфата, растворенного в 5 мл диметилформамида, 15 мл 0,1 М цитратного буфера, рН 5,2, 45 мл дистиллированной воды, 5 мл раствора хлорида магния, 50 мг диазоля синего. Затем мазки крови промывали изотоническим раствором хлорида натрия. Докрашивали красителем Романовского - Гимзы. Промывали в проточной воде. Подсчет гранул производили с учетом интенсивности их окраски в световом микроскопе «Биолам». Активность фермента рассчитывали по формуле Астальди и выражали в СЦК. Альфа-НАЭ определяли по методу Леффлера. Свежеприготовленные и высушенные на воздухе мазки крови фиксировали в парах формалина 4 мин. Инкубировали в среде, состоящей из 10 мг а-нафтил-ацетата, растворенного в 0,2 мл ацетона, 40 мл 0,1 М раствора фосфатного буфера, рН 7,8-8,0, 50 мг прочного синего В, при комнатной температуре 30 мин, промывали в проточной воде 2-3 мин. Докрашивали кислым гемалауном 8 мин, промывали дистиллированной водой 15 мин. В моноцитах производили подсчет гранул с учетом интенсивности их окраски в световом микроскопе «Биолам». Интенсивность окраски оценивали по 3-балльной шкале. Активность фермента рассчитывали по формуле Астальди и выражали в СЦК. Подсчитывали процент лимфоцитов, содержащих а-НАЭ. Результаты прошли статистическую обработку с применением однофакторного дисперсионного анализа и критерия множественных сравнений Ньюмена - Кейсла в программе «Primer of Biostatistics 4.03» для Windows. Достоверными считали различия при р < 0,05. Все экспериментальные исследования проведены в полном соответствии с требованиями надлежащей лабораторной практики (изложенными в национальном стандарте «Принципы надлежащей лабораторной практики» ГОСТ Р 53434-2009), с соблюдением Международных принципов Европейской конвенции о «Защите позвоночных животных, используемых для экспериментов и других научных целей» (Страсбург, 1986), в соответствии с международными рекомендациями по проведению медико-биологических исследований с использованием животных» (1985), «Общими этическими принципами экспериментов на животных» (Россия, 2011), правилами лабораторной практики в Российской Федерации (приказ МЗ РФ № 267 от 19.06.2003) и положительным заключением этического комитета в условиях вивария на базе федерального государственного бюджетного образовательного учреждения высшего образования «Ставропольский государственный аграрный университет» (Ставрополь). РЕЗУЛЬТАТЫ ИССЛЕДОВАНИЯ И ИХ ОБСУЖДЕНИЕ При изучении функциональной активности лейкоцитов крови установлено, что при естественном течении воспаления активность МПО в нейтрофилах возрастает на 6-й час, 3-, 21- и 28-е сутки, в эти же сроки несколько увеличивается и активность КФ. Активность а-НАЭ в моноцитах повышается на 1-е и достоверно на 7-14-е сутки. В лимфоцитах активность КФ возрастает на 6-й час, 3-, 21-, 28-е сутки; количество лимфоцитов, содержащих а-НАЭ, несколько увеличивается на 1-е и 7-е, 14-е сутки (рис. 1). Активность КФ в лимфоцитах меньше на 6 -й час, 3-и и 21-е сутки, количество лимфоцитов, содержащих а-НАЭ, меньше во все сроки исследования, за исключением 28 суток, достоверно - на 7-е сутки (рис. 3). Рис. 1. Активность а-нафтилацетат-эстеразы в лейкоцитах крови при естественном течении хронического воспаления и при хроническом воспалении на фоне локального удаления НГ (M ± m, n = 6). Данные статистически достоверны относительно показателей контрольной группы р < 0,05) Ри с. 3 . Активность миелопероксидазы в лейкоцитах крови п р и естественном течении хронического воспаления и при хроническом воспалении на фоне локального удаления НГ ( M ± m, n = 6). Данные статистически достоверны относительно показателей контрольной группы (р1 < 0,05) Активность ферментов в лейкоцитах зависит от соотношения между дегрануляцией и эмиграцией клеток и притоком вновь образованных лейкоцитов из костного мозга в периферическую кровь. По нашему мнению, ферментативная деятельность отражает приток лейкоцитов, так как представленные сроки соответствуют поступлению лейкоцитов из костномозгового резерва (6-й-24-й часы), активации гемопоэза (3-и сутки), повторному выходу лейкоцитов в кровь (7-е сутки), вторичной активации гемопоэза (14-28-е сутки). Активность МПО в нейтрофилах при воспалительном процессе на фоне удаления нефагоцитирующих гранулоцитов (НГ) ниже, чем при естественном течении процесса, на 6-й час - 3-и сутки, и выше - на 7-14-е сутки; активность КФ - меньше в контрольной группе и больше на 3-7-е сутки. Активность а-НАЭ в моноцитах ниже в контроле и отстает на 1-е и 7-е сутки, превышает на 3-и сутки и меньше на 14-е сутки (рис. 2). Рис. 2. Активность кислой фосфатазы в лейкоцитах крови при естественном течении хронического воспаления и при хроническом воспалении на фоне локального удаления НГ (M ± m, n = 6). Данные статистически достоверны относительно показателей контрольной группы (р1 < 0,05) Следовательно, различные показатели ферментативной активности отражают меньшее поступление нейтрофилов и моноцитов из костного мозга в кровь и, далее, в очаг воспаления, изменения интенсивности и динамики костномозгового кроветворения и с учетом усиления миграции лимфоцитов в патологический очаг повышенную дегрануляцию лимфоцитов. ЗАКЛЮЧЕНИЕ Таким образом, показатели ферментативной активности лейкоцитов в крови при воспалительном процессе в результате предварительного удаления НГ из патологического очага приводят к усилению костномозгового кроветворения и снижению выхода лейкоцитов из костного мозга в периферическую кровь. В самом воспалительном очаге наблюдается аккумуляция лимфоцитов при незначительном присутствии нейтрофилов и моноцитов.

About the authors

A. G Sirak

FSBEI HE «Stavropol state medical university» of Public Health Ministry of the Russian Federation

Email: sergejsirak@yandex.ru

E. I Piskareva

FSBEI HE «Stavropol state medical university» of Public Health Ministry of the Russian Federation

M. A Dolgashova

FSBEI HE «Stavropol state medical university» of Public Health Ministry of the Russian Federation

O. G Magomedova

FSBEI HE «Stavropol state medical university» of Public Health Ministry of the Russian Federation

A. P Arutyunova

FSBEI HE «Stavropol state medical university» of Public Health Ministry of the Russian Federation

O. V. Lyubanskaya

FSBEI HE «Stavropol state medical university» of Public Health Ministry of the Russian Federation

E. G Nemenuschaya

FSBEI HE «Stavropol state medical university» of Public Health Ministry of the Russian Federation

M. O Didenko

FSBEI HE «Stavropol state medical university» of Public Health Ministry of the Russian Federation

Z. M Kochkarova

FSBEI HE «Stavropol state medical university» of Public Health Ministry of the Russian Federation

References

Supplementary files