CHANGES OF ION CURRENT IN MOLLUSCS UNDER THE INFLUENCE OF SUCCICARD


Cite item

Full Text

Abstract

Succicard modulated the transmembrane ion current of neurons in Lymnaea stagnalis and Planorbarius corneus mollusks in a dose-dependent and reversible fashion. At concentrations of 1—10 micrometers it activated calcium and potassium currents, at 100 micrometers it increased the amplitude of calcium currents by 5—10 %, at 1000 micrometers it suppressed sodium and potassium currents by 5—12 % without affecting the potential of superficial charge of membrane and portal mechanisms of ion channels.

Full Text

Структурные аналоги гамма-аминомасляной кислоты (ГАМК) пирацетам, фенибут, фенотропил облада- ка, ионные каналы которых имеют принципиальное сходют выраженным нейротропным действием, а их соли и ство с нейронами теплокровных животных [6]. композиции с органическими карбоновыми кислотами превосходят по эффективности исходные вещества [4, МЕТОДИКА ИССЛЕДОВАНИЯ 5, 6, 7, 10]. Сукцикард (композиция фенотропила и ян- Объектом исследования были неидентифицировантарной кислоты в соотношении 2 : 1) обладает выра- ные изолированные нейроны моллюсков — прудовика женной нейро- и кардиопротекторной активностью, его большого (Lymnaea stagnais) и катушки роговой (Planorbarius влияние на ионные токи, через которые могут опосре- corneus) [2, 3]. Использовали растворы с различным иондоваться нейро- и психотропные эффекты, не изучены. ным составом (табл.). Перфузирующий (наружный) раствор подавался в камеру, где находился нейрон на полиэтиле-ЦЕЛЬ РАБОТЫ новой микропипетке, а диализирующий (внутриклето-Исследование изменений натриевых, кальциевых чный)—внутрь этой пипетки. Исследуемые вещества дои калиевых ионных токов под влиянием сукцикарда в бавлялись в перфузирующий раствор. Для измерения Ионный состав растворов для регистрации ионных токов и мембранных потенциалов, в мМ Ионные токи NaCl CsCl CaCl2 MgCl2 KCl Tris-ОН рН Внеклеточный раствор Общий входящий ток и регистрация внутриклеточных потенциалов 100 - 2 1,5 5 5 7,5 Кальциевый входящий ток — 100 10 1,5 — 5 7,5 Калиевый выходящий ток 100 — 2 1,5 5 5 7,5 Внутриклеточный раствор Входящие токи — 120 — — — 5 7,4 Калиевые выходящие токи — — — — 120 5 7,4 Выпуск 4 (44). 2012 27 трансмембранных ионных токов применялся метод внутриклеточной перфузии изолированных нейронов и фиксации мембранного потенциала [1, 2, 3]. Для исследования использовали субстанцию сукцикарда, которая растворялась в соответствующих наружных растворах в концентрациях 1, 10, 100 и 1000 мкМ. Кривые ионных токов и потенциалов визуально оценивали на экране осциллографа, с помощью преобразователя АЦП — ЦАП вводили в компьютер и распечатывали на принтере. 12-разрядный ЦАП позволял регистрировать малейшие изменения в амплитудах токов. Результаты обрабатывали с использованием статистической программы SPSS-17, при этом для проверки гипотезы о различиях между группами проводили непараметрический дисперсионный анализ Фридмана, а для доказательства различий между контролем и эффектами фармакологических средств в различных концентрациях — апостериорное попарное сравнение с использованием критериев Вилкоксона. Для оценки каждого изменения тока при определенной концентрации использовали 5—10 измерений. На графиках представлены значения средних арифметических и 95 % доверительные интервалы. Для построения графиков использовали пакет программ «Excel». РЕЗУЛЬТАТЫ ИССЛЕДОВАНИЯ И ИХ ОБСУЖДЕНИЕ Сукцикард вызывал незначительные, зависимые от концентрации и обратимые изменения амплитуды натриевого тока (рис. 1). В концентрациях 1 и 10 мкМ происходило увеличение или наблюдалась тенденция к увеличению тока на 1,5—2 % (рис. 1А), 100 мкМ — проявлялась тенденция подавления тока, а в концентрации 1000 мкМ — подавление тока на 10—12 %. Эффекты наступали быстро, устранялись при отмывании за 2—3 мин, что указывает на невысокую прочность связывания соедине ния со структурами мембраны (или ионных каналов). Сукцикард не изменял кинетику развития тока (рис. 1 Б) и положение максимума вольт-амперной характеристики мембраны (рис. 1 В). В концентрациях от 1 до 1000 мкМ наблюдалось зависимое от концентрации преимущественно активирующее влияние на кальциевые токи (увеличение амплитуды на 3—10 %) (рис. 2А), оно было выражено в большей степени, чем для натриевых токов. Кинетика развития тока (рис. 2Б) и положение максимума вольт-амперной характеристики мембраны (рис. 2В и 2Г) не изменялись. Нужно обратить внимание на то, что сукцикард при действии в концентрации 1000 мкМ в большей степени подавлял натриевые токи (рис. 1А), чем кальциевые (рис. 2А). На рис. 1В показано, что на суммарной натрий-кальциевой вольт-амперной характеристике мембраны левая часть кривой, отражающая натриевый ток, подавлена сукцикардом в концентрации 1000 мкМ в большей степени, чем правая часть, связанная с кальциевым током. Влияние сукцикарда на медленные калиевые токи (рис. 3А) было также зависимым от концентрации, обратимым и двухфазным: наблюдалась небольшая активация (повышение амплитуд тока на 1,5— 3,6 % при концентрациях 1—10 мкМ) и подавление на 5—13 % при действии в концентрации 1000 мкМ. Восстановление токов в процессе отмывания нейронов происходило так же, как для кальциевых и натриевых токов довольно быстро — за 2—3 мин. Кинетика активации и инактивации тока под влиянием сукцикарда не изменялась (рис. 3Б), положение вольт-амперной характеристики мембраны на оси потенциалов не изменялось, что указывает на отсутствие влияния сукцикарда как на воротные механизмы каналов, так и на потенциал поверхностного заряда мембраны нейронов. 110 105 100 95 90 85 I-H I—I nh 10 100 С, MкМ 1000 А — зависимость «концентрация — эффект». Б — изменения амплитуды и кинетики тока при действии сукцикарда, кривые снизу вверх: 1 — отмывание, 2 — контроль, 3 — сукцикард 100 мкМ, 4 —1000 мкМ. В — вольт-амперные характеристики натрий-кальциевых каналов, кривые снизу вверх: 1 и 2 — контроль и отмывание (кривые сливаются), 3 — 1000 мкМ. По оси абсцисс: А — концентрация, Б — время, В — пилообразное смещение мембранного потенциала от —40 до 30 мВ за 20 мс; по оси ординат — ионный ток (А: I — при действии вещества, I0 — до действия, %); Б — натриевый ток (INa); В — натрий-кальциевый ток; доверительные интервалы при р = 95 %. Рис. 1. Изменения натриевого тока нейронов прудовика под влиянием сукцикарда (n = 7) 28 Выпуск 4 (44). 2012 -20 J А — зависимость «концентрация — эффект». Б — изменения амплитуды и кинетики тока при действии сукцикарда, кривые снизу вверх: 1 — отмывание, 2 — контроль, 3 — сукцикард 100 мкМ, 4 —1000 мкМ. В — вольт-амперные характеристики при действии сукцикарда, кривые снизу вверх: 1 — контроль, 2 — отмывание, 3 — 100, 4 — 1000 мкМ. По оси абсцисс: А — концентрация препарата, Б — время, В — пилообразное смещение мембранного потенциала от —40 до 50 мВ длительностью 100 мс; по оси ординат — ионный ток (А: I — при действии вещества, I0 — до действия, %); Б и В: ICa — кальциевый ток; доверительные интервалы при р = 95 %. Рис. 2. Изменения кальциевого тока нейронов прудовика под влиянием сукцикарда (η = 7) 105 100 £ 95 - 90 85 Z *л ш 10 100 С. мкМ 1000 А — зависимости «концентрация — эффект». Б — изменения амплитуды и кинетики медленного тока под влиянием сукцикарда: 1 — 1000 мкМ, 2 — 100 мкМ, 3 — контроль, 4 — 1 мкМ. В — вольт-амперные характеристики быстрых и медленных токов при действии сукцикарда; под левой стрелкой — быстрый калиевый ток, кривые сверху вниз: 1 — 10 мкМ, 2 — 100 мкМ, 3 — контроль, 4 — 1000 мкМ; справа — медленный калиевый ток: 1 — 1000 мкМ, 2 — 100 мкМ, 3 — контроль, 4 — 1 мкМ. По оси абсцисс: А — концентрация; Б — время: слева до стрелки — Т 1, далее — Т 2; В — пилообразное смещение мембранного потенциала от —40 до 50 мВ длительностью 100 мс; по оси ординат: ионные токи: (А: I — при действии вещества, I0 — до действия, %); Б — I Ks — медленный калиевый ток, В — I K — суммарные калиевые токи (быстрый и медленный); доверительные интервалы при р = 95 %. Рис. 3. Изменения калиевых ионных токов нейронов прудовика под влиянием сукцикарда (n = 10) Характер влияния сукцикарда на быстрые калиевые токи напоминал их влияние на медленные калиевые. Общий характер подавления выходящих быстрых и медленных калиевых ионных токов для сравнения показан на рис. 3В. В самом начале на записи после возникновения емкостных токов мембраны (кривые направлены вверх — под стрелкой) следуют небольшие по амплитуде выходящие быстрые калиевые токи, их амплитуда под влиянием сукцикарда изменялась незначительно. Затем следуют линейно нарастающие выходящие медленные калиевые токи (над стрелкой), которые изменялись в большей степени. В самом конце в правой части записи снова видны емкостные токи мембраны, направленные вниз и возникающие на выключение линейно нарастающего деполяризующего смещения потенциала. Неспецифические токи утечки мембраны при действии сукцикарда во всем диапазоне исследованных концентраций (1—1000 мкМ) и при регистрации всех ионных токов либо изменялись незначительно (на 0,5—1 нА), либо оставались неизменными, поэтому характерных изменений тока утечки мембраны установить не удалось. Наши результаты о незначительном увеличении амплитуды трансмембранных ионных токов нейронов под влиянием сукцикарда в концентрациях 1—10 мкМ можно расценивать как активирующие. При этом активация была выражена преимущественно для кальциевых токов. Этот факт указывает на то, что в клетке под влиянием сукцикарда могут возникать многообразные Выпуск 4 (44). 2012 29 модулирующие эффекты — вплоть до активации геномного аппарата, а в синаптических окончаниях — усиленный выброс медиаторов. А поскольку процесс синаптической пластичности связан с повышением концентрации ионов кальция в постсинаптической клетке, который запускает каскад белок-белковых взаимодействий, приводящих в конечном итоге к структурным изменениям в нейроне [2], то полученный нами факт приобретает важное значение для понимания механизмов мембранотропного действия нейромодуляторных ноотропных средств. Подавление всех ионных токов [9] при действии мембраноактивных веществ примерно в равной степени и в равных концентрациях можно называть неспецифическим (неизбирательным) их влиянием на ионные каналы. Многие соединения подавляют кальциевые, натриевые и калиевые ионные токи, но вместе с тем часто выявляются и индивидуальные черты их действия [2, 3]. Например, анксиолитик афобазол, обладающий и противоаритмическими свойствами, способен блокировать ионные каналы [8]. Из ноотроп-ных средств пирацетам на нейронах моллюска виноградной улитки в концентрации 1—2 мМ подавляет калиевые токи почти на 50 % [10]. ЗАКЛЮЧЕНИЕ Сукцикард в концентрациях 1, 10, 100 и 1000 мкМ дозозависимо и обратимо изменяет трансмембранные натриевые, кальциевые и калиевые ионные токи нейронов моллюсков прудовика и катушки, проявляя мем-бранотропную активность при внеклеточном действии. Сукцикард в концентрациях 1—10 мкМ увеличивает амплитуду кальциевых и калиевых токов на 2—10 %, не изменяя амплитуду натриевых; 100 мкМ — увеличивает амплитуду кальциевых токов на 5—10 %, не оказывая влияния на натриевые и калиевые; 1000 мкМ — подавляет амплитуду натриевых и калиевых токов на 5—12 %, не оказывая влияния на кальциевые. Сукцикард не вызывает сдвигов вольт-амперных характеристик мембраны для всех токов; не влияет на потенциал поверхностного заряда мембраны вблизи ионных каналов и кинетику активации/инактивации ионных то ков, что свидетельствует об отсутствии его влияния на воротные механизмы ионных каналов. Быстрая обратимость эффектов после действия сукцикарда в течение 2—3 мин указывает на относительно непрочное связывание его молекул со структурами мембраны и ионных каналов.
×

References

  1. Бородкина Л. Е., Молодавкин Г. М., Тюренков И. Н. // Эксперим. и клинич. фармакол. — 2009. — № 1. — С. 57—60.
  2. Вислобоков А. И., Игнатов Ю. Д., Галенко-Ярошевский П. А., Шабанов П. Д. Мембранотропное действие фармакологических средств. — СПб. — Краснодар: Просвещение-Юг, 2010. — 528 с.
  3. Вислобоков А. И., Игнатов Ю. Д., Мельников К. Н. Фармакологическая модуляция ионных каналов мембраны нейронов. — СПб.: Издательство СПбГМУ, 2006. — 288 с.
  4. Перфилова В. Н., Тюренков И. Н., Гречко О. Ю. и др. // Вестник Волгоградского государственного медицинского университета. — 2010. — № 1. — С. 74—76.
  5. Тюренков И. Н., Багметов М. Н., Епишина В. В. и др. // Эксперим. и клинич. фармакол. — 2006. — С. 19 — 22.
  6. Тюренков И. Н., Багметов М. Н., Епишина В. В. // Эксперим. и клинич. фармакол. — 2007. — Т. 70, №2. — С. 24—29
  7. Тюренков И. Н., Багметова В. В., Кривицкая А. Н. и др. // Эксперим. и клинич. фармакол. — 2011. — Т. 74, № 2. — С. 3—7.
  8. Цорин И. Б., Палка И. П., Чичканов Г. Г. // Эксперим. и клинич. фармакол. — 2009. — Т. 72, № 1. — С. 41—45.
  9. Miller K. W. // Br. J. Anaesth. — 2002. — Vol. 89, № 1. — P. 17—31.
  10. Solntseva E. I., Bukanova J. V., Ostrovskaya R. U., et al. // Gen. Pharmacol. — 1997. — Vol. 29 (1 ) — P 85—89.

Supplementary files

Supplementary Files
Action
1. JATS XML

Copyright (c) 2012 Vislobokov A.I., Ignatov Y.D., Tyurenkov I.N., Bagmetova V.V.

Creative Commons License
This work is licensed under a Creative Commons Attribution 4.0 International License.

СМИ зарегистрировано Федеральной службой по надзору в сфере связи, информационных технологий и массовых коммуникаций (Роскомнадзор).
Регистрационный номер и дата принятия решения о регистрации СМИ: серия ПИ № ФС 77 - 79562 от 27.11.2020 г.

This website uses cookies

You consent to our cookies if you continue to use our website.

About Cookies