ASSESSMENT OF HEPATOTOXICITY OF MULTIPLE ANTIVIRAL RIAMILOVIR PREPARATION ADMINISTRATION IN NON-LINEAR GUINEA PIGS MODEL
- Authors: Fedulova K.D1, Izmozherova H.V1, Petrov A.Y.1, Gavrilov I.V1, Slovesnova N.V1
-
Affiliations:
- FSBEI HE «Ural State Medical University» of the Ministry of Healthcare of the Russian Federation
- Issue: Vol 18, No 2 (2021)
- Pages: 151-155
- Section: Articles
- URL: https://journals.eco-vector.com/1994-9480/article/view/119653
- DOI: https://doi.org/10.19163/1994-9480-2021-2(78)-151-155
- ID: 119653
Cite item
Full Text
Abstract
The aim of this study was to asses hepatoxicity of riamilovir with repeated administration on the animal model. Materials and methods. Twenty non-linear guinea pigs were randomized into 4 groups: control and three experimental, receiving 64 days of daily riamilovir orally in doses of 48, 96, 144 mg/kg. Biochemical profile: ALT, AST, GGT, total protein, total and direct bilirubins, albumin, cholesterol, triglycerides: on 0, 33 and 65 days from the start of the experiment. Results. A significant decrease of serum albumin and cholesterol levels was found only in group 2 and there were no statistically significant changes of other indicators. Conclusion. The data obtained indicate afunctional liver synthetic function changes without signs of hepatobiliary and hepatocellular damage.
Keywords
Full Text
В настоящее время уделяется много внимания безопасности лекарственных препаратов, и доклинические исследования являются важнейшим этапом в изучении побочных их эффектов. Особенно важно на доклиническом этапе оценить риск развития гепато-токсичности. Лекарственные поражения печени (ЛПП) являются основной причиной острой печеночной недостаточности в США и Европе [2]. Согласно статистике, во Франции ЛПП возникают с частотой 1419 случаев на 100 000 пациентов; по общемировой статистике, ЛПП возникает с частотой 13,9-24 случая на 100 000 пациентов. В доклинических исследованиях у 50 % новых потенциальных лекарственных молекул выявляется гепатотоксичность, которая в клинических исследованиях является самой частой причиной отзыва препаратов [3]. Противовирусный препарат «Риамиловир» используется в клинической практике в составе комплексной терапии гриппа у взрослых и, являясь нуклеотидным аналогом, имеет потенциал для репозиционирования. Данный препарат обладает малой токсичностью при коротком курсе использования [1]. Являясь аналогом пуриновых оснований, этот препарат может быть ингибитором белка теплового шока 90 (heat shock protein 90, HSP90), который играет ключевую роль в жизненном цикле вируса гепатита В и С, вируса герпеса, вируса иммунодефицита человека [4]. Терапия данных вирусных инфекций требует более длительного приема в сравнении с курсом лечения инфекции, вызванной вирусом гриппа. Соответственно риск возникновения нежелательных лекарственных реакций, в том числе ЛПП, может быть значительно выше. Таким образом, оценка потенциального риска гепато-токсичности риамиловира при длительном приеме представляется актуальной целью. ЦЕЛЬ РАБОТЫ Оценить гепатотоксическое действие препарата «Риамиловир» при многократном введении на животной модели. МЕТОДИКА ИССЛЕДОВАНИЯ В качестве экспериментальной модели использовались нелинейные морские свинки. До начала эксперимента животные прошли карантин в течение одного месяца. Каждое животное содержалось в индивидуальной клетке в соответствии с ГОСТ Р 53434.2009 от 02.12.2009 «Принципы надлежащей лабораторной практики (GLP)». Таблица 1 Группа Вес животных, г медиана [интерквартильный размах] Дозировка риамиловира, мг/кг/сутки Дозировка риамиловира в перерасчете на ЭДЧ, мг/кг Контрольная группа, 880,0 0 0 n = 5 [520, 0; 967, 0] Группа I, n = 5 832,5 [790, 0; 932, 5] 48 10,2 Группа II, n = 5 861,0 [790, 0; 931, 0] 96 20,4 Группа III, n = 5 916,0 [798, 5; 967, 5] 144 30,6 Примечание. ЭДЧ - эквивалентная доза человека, рассчитана по формуле ЭДЧ = доза животного/k, где к для морской свинки 4,7. Характеристика экс эиментальных групп Животные общим числом 20 рандомизированы при помощи приложения для рандомизации британского национального центра по замене, усовершенствования и уменьшения использования животных в исследованиях (National center for the Replacement, Refinment & Reduction of Animals in Research, UK). Таким образом, животные были разделены на 4 группы: контрольная группа получала 10%-й сахарнокрахмальный сироп, I группа получала 2,5%-й сахарнокрахмальный сироп риамиловира (48 мг/кг), II и III группы получали 4%-й сахарно-крахмальный сироп риамиловира в разных объемах (96 и 144 мг/кг соответственно). Субстанция риамиловира (партия № 15117) производства ООО «Завод Медсинтез» (Российская Федерация). Для удобства доставки животным композиция в объеме 2 мл помещалась в шприцы с удаленными иглами;препарат хранился не более 7 дней при температуре 2-4 °С. Характеристика экспериментальных групп представлена в табл. 1. Сироп вводился животным перорально за зубной ряд через короткий зонд, надеваемый на шприц, ежедневно в одно и то же время. В течение эксперимента каждое животное осматривалось ежедневно, оценивались: активность, общее состояние животных, изменения шерсти, наличие диареи и кровотечений. Забор крови производился трижды после 14-15-часового голодания: до начала эксперимента (0-й день), на 33-й и 65-й дни эксперимента. Биохимическая панель включала: аспартатами-нотрансфераза (АСТ), аланинаминотрансфераза (АЛТ), общий и свободный билирубин, гамма-глутамил-трансфераза (ГГТ), общий холестерин, триглицериды, общий белок. Кровь забиралась при помощи вакуумной системы забора крови VACUETTE® из полости сердца, в пробирки VACUETTE® с гелем и активатором свертывания [5]. Во время забора крови животные находились под общей анестезией, которая выполнялась с помощью лекарственных препаратов «Золетил 100» (Тилетамин) и «Ксила» 2 % (Ксилазин), анестезиологическое пособие оказывалось врачом-ветеринаром. Биохимический анализ производился на автоматическом биохимическом и иммуноферментном анализаторе ChemWell (Awareness Technologi, США) с использованием реактивов ООО «Ольвекс-Диа-гностикум». После окончания 8-недельного периода введения препарата (на 65-й день) животные выводились из эксперимента при помощи эфирного наркоза. Полученные результаты обрабатывали с использованием пакета программ Statistica 13.0 (StatSoft, США). Алгоритм статистического анализа включал этап определения медианы, 25 и 75 процентиля. Сравнение полученных результатов проводилось при помощи непараметрического критерия Фридмана, разницу принимали как статистически значимую при p < 0,05. Исследование одобрено Локальным этическим комитетом ФГБОУ ВО УГМУ Минздрава России (протокол № 10 от 16.12.2016). РЕЗУЛЬТАТЫ ИССЛЕДОВАНИЯ И ИХ ОБСУЖДЕНИЕ На протяжении всего исследования ни в одной экспериментальной группе отклонений в состоянии здоровья животных обнаружено не было. У всех морских свинок была чистая, ухоженная шкурка, видимые слизистые и кожные покровы имели физиологическую окраску, экзофтальма не было. Диарея и кровотечения не зафиксированы. При сравнении значений полученных биохимических показателей (табл. 2) при помощи критерия Фридмана статистически значимых изменений значений АЛТ, АСТ, ГГТ, общего и свободного билирубина, триглицеридов и общего белка не было получено. Для оценки гепатоцеллюлярного повреждения достаточно двух маркеров из перечисленных: АЛТ, АСТ, сорбитолдегидрогеназа или глутаматдегидрогеназа [7]. Как минимум два параметра из перечисленных необходимы для идентификации гепатобилиарного повреждения: щелочная фосфотаза, гамма-глутамил-трансфераза, 5-нуклеотидаза или общий билирубин [7]. Такие показатели, как общий белок, альбумин, холестерин, триглицериды используются как дополнительные параметры метаболической и синтетической функции печени. Стоит отметить, что снижение альбумина является отражением нарушением не только синтетической функции, но и маркером воспалительных процессов [9]. В исследовании было выявлено статистически значимое снижение альбумина во II группе с 45,7 [44, 3; 46, 25] г/л в начале эксперимента до 37,25 [36, 2; 39, 5] г/л на 65-й день (р = 0,018), и в III группе 44,95 [42, 8; 46, 15] г/л в начале эксперимента до 43,1 [40, 7; 44, 5] г/л на 65-й день (p = 0,039), статистически значимое сниже-ни е холестерина во II группе с 1,33 ммоль/л [1, 16; 1, 4] в начале эксперимента до 0,9 ммоль/л [0, 69; 1, 0] на 65-й день (p = 0,049), при этом его уровень остался в границах нормы (норма холестерина для морских свинок составляет 0,5-2,0 ммоль/л) [8]. Также было выявлено снижение альбумина во II группе животных на 8,45 г/л (p = 0,018), с 45,7 г/л в начале эксперимента до 37,25 г/л на 65-й день и в III группе животных на 1,85 г/л (р = 0,039), с 44,95 г/л в начале эксперимента до 43,1 г/л. Значение альбумина также осталось в границах нормального значения (норма альбумина для морских свинок 20-50 г/л) [10]. Не было зарегистрировано снижения общего белка во II группе, что может свидетельствовать об относительном снижении уровня альбумина и повышении уровня провоспалительных белков, в том числе глобулина. Воспалительные цитокины, в том числе интерлейкин-1, фактор некроза опухолей, интерферон, стимулируют синтез белков воспалительных белков, что приводит к относительному снижению альбумина [9]. Также стоит отметить, что отсутствовали изменения в III группе животных, получавших максимальную дозировку риамиловира. Вероятнее всего, это связано с физико-химическими свойствами соли риамиловира, которая обладает плохой растворимостью. Возможно, в концентрации 144 мг/кг препарат плохо всасывается при пероральном введении. Таблица 2 Показатель Группа День эксперимента р, критерий Фридмана 0 33 65 АЛТ, Ед./л Контроль 25,0 [21, 7; 27, 1] 35,5 [29, 4; 35, 5] 45,2 [27, 1; 53, 7] 0,09 I группа 39,85 [25, 7; 53, 6] 35,65 [28, 6; 45, 4] 29,25 [24, 1; 38, 9] 0,77 II группа 33,1 [24, 1; 35, 0] 28,25 [35, 7; 40, 5] 46,65 [30, 9; 61, 7] 0,17 III группа 37,5 [31, 8; 45, 6] 43,5 [35, 7; 57, 8] 54,85 [40, 0; 67, 0] 0,47 АСТ, Ед./л Контроль 30,8 [22, 6; 48, 5] 44,3 [29, 1; 61, 1] 88,6 [41, 3; 107, 3] 0,26 I группа 26,35 [21, 1; 63, 7] 43,15 [30, 6; 59, 5] 55,9 [36, 4; 77, 3] 0,77 II группа 38,65 [26, 0; 50, 9] 46,5 [28, 8; 56, 4] 33,3 [31, 6; 35, 3] 0,62 III группа 49,15 [33, 0; 63, 5] 48,6 [46, 0; 53, 2] 65,45 [37, 9;102, 6] 0,47 Динамика биохимических показателей (медиана, 25-й и 75-й процентили)* Окончание табл. 2 Показатель Группа День эксперимента р, критерий Фридмана 0 33 65 ГГТ, Ед./л Контроль 6,46 [5, 8; 10, 6] 6,46 [4, 1; 6, 46] 7,08 [4, 7; 23, 0] 0,71 I группа 6,1 [5, 0; 11, 4] 7,24 [6, 61; 8, 0] 9,0 [7, 77; 10, 0] 0,62 II группа 7,0 [5, 9; 9, 5] 7,0 [5, 6; 8, 6] 6,78 [5, 95; 14, 0] 0,77 III группа 9,0 [7, 5; 10, 1] 7,4 [6, 6; 8, 0] 8,5 [7, 6; 10, 5] 0,36 Билирубин общий, мкмоль/л Контроль 8,96 [6, 0; 9, 12] 5,75 [3, 95; 8, 22] 7,4 [7, 07; 10, 2] 0,71 I группа 7,4 [5, 75; 16, 0] 4,77 [2, 4; 8, 5] 6,37 [3, 08; 10, 2] 1,0 II группа 9,865 [5, 5; 13, 35] 4,11 [3, 0; 8, 4] 5,75 [3, 5; 19, 1] 0,08 III группа 11,47 [4, 93; 18, 8] 8,22 [6, 2; 8, 26] 7,6 [5, 3; 12, 45] 1,0 Билирубин свободный, мкмоль/л К о нтроль 1,89 [1, 64; 2, 2] 1,46 [1, 1; 1, 48] 1,91 [1, 81; 3, 11] 0,051 I группа 1,69 [0, 9; 4, 15] 1,35 [1, 1;1, 89] 1,64 [1, 08; 2, 5] 1,0 II группа 2,09 [1, 47; 2, 8] 1,32 [0, 87; 2, 1] 1,54 [1, 1; 4, 3] 0,17 III группа 2,76 [1, 74; 4, 06] 1,46 [1, 1; 1, 8] 2,11 [1, 36; 3, 1] 0,17 ТГ, ммоль/л Контроль 1,15 [1, 02; 1, 56] 1,76 [1, 72; 2, 9] 2,2 [1, 68; 2, 26] 0,09 I группа 1,25 [0, 9; 1, 7] 1,0 [0, 86; 1, 72] 1,46 [0, 9; 1, 9] 0,07 II группа 0,93 [0, 89; 1, 5] 1,51 [0, 88; 2, 2] 1,68 [1, 5; 1, 97] 0,36 III группа 2,665 [1, 94; 3, 08] 1,77 [1, 4; 2, 5] 1,9 [1, 2; 2, 53] 0,47 ХС, ммоль/л Контроль 0,97 [0, 81; 0, 99] 1,06 [0, 85; 1, 18] 0,84 [0, 81; 0, 9] 0,26 I группа 1,01 [0, 83; 1, 14] 0,94 [0, 79; 1, 2] 0,705 [0, 65; 0, 94] 0,36 II группа 1,33 [1, 16; 1, 4] 1,22 [0, 9; 1, 4] 0,9 [0, 69; 1, 0] 0,049 III группа 1,05 [0, 82; 1, 27] 0,96 [0, 81; 1, 21] 1,13 [0, 98; 1, 18] 0,47 Общий белок, г/л Контроль 51,3 [43, 1; 61, 5] 59,5 [57, 4; 60, 9] 58,6 [53, 0; 63, 6] 0,36 I группа 58,0 [56, 7; 58, 7] 57,25 [54, 2; 58, 1] 51,55 [43, 4; 58, 6] 0,17 II группа 59,2 [58, 4; 60, 3] 57,95 [57, 4; 58, 8] 54,95 [54, 6; 57, 3] 0,17 III группа 58,45 [56, 4; 59, 0] 57,6 [53, 6; 59, 8] 57,6 [53, 6; 59, 8] 0,17 Альбумин, г/л Контроль 40,1 [35, 1; 49, 9] 46,0 [45, 9; 46, 8] 41,6 [38, 8; 44, 9] 0,26 I группа 43,9 [42, 3; 45, 7] 44,5 [42, 9; 46, 0] 37,3 [32, 9; 42, 3] 0,36 II группа 45,7 [44, 3; 46, 2] 43,0 [40, 4; 45, 7] 37,25 [36, 2; 39, 5] 0,018 III группа 44,95 [42, 8; 46, 1] 55,9 [54, 3; 57, 7] 43,1 [40, 7; 44, 5] 0,039 * Различия значимы при р < 0,05. ЗАКЛЮЧЕНИЕ Противовирусный препарат «Риамиловир» не вызывает гепатоцеллюлярного и гепатобилиарного повреждения при многократном введении в дозировках 48, 96, 144 мг/кг в течение 64 дней (8 недель). Возможно функциональное изменение синтетической функции печени при ежедневном введении риамиловира в течение 8 недель в дозировках 96 и 144 мг/кг×
About the authors
K. D Fedulova
FSBEI HE «Ural State Medical University» of the Ministry of Healthcare of the Russian Federation
Email: fedulova.k.d@gmail.com
H. V Izmozherova
FSBEI HE «Ural State Medical University» of the Ministry of Healthcare of the Russian Federation
A. Yu Petrov
FSBEI HE «Ural State Medical University» of the Ministry of Healthcare of the Russian Federation
I. V Gavrilov
FSBEI HE «Ural State Medical University» of the Ministry of Healthcare of the Russian Federation
N. V Slovesnova
FSBEI HE «Ural State Medical University» of the Ministry of Healthcare of the Russian Federation
References
- Деева Э.Г., Русинов В.Л., Чарушин В.Н. и др. Противовирусный препарат «Триазавирин»: от скрининга до клинической апробации// Разработка и апробация лекарственных средств. -2014. - № 2 (7). - С. 144-151.
- Kullak-Ublick G.A., Andrade R.J., Merz M., et al. Drug-induced liver injury: recent advances in diagnosis and risk assessment // Gut. - 2017. - No. 66. - P. 1154-1164.
- Chen M., Suzuki A., Borlak J., et al. Drug-induced liver injury: Interactions between drug properties and host factors // Journal of Hepatology. - 2015. - Vol. 63 (2). - P. 503-514.
- Fedulova K.D., Ivanova A.V., Izmozherova N.V. Computer modeling of interaction between the antiviral drug riamilovir and HSP90 // AIP Conference Proceedings. - 2019. -No. 2063(030007). - URL: https://doi.org/10.1063/1.5087315 (date of viewing: 14.09.2020).
- Parasuraman S., Raveendran R., Kesavan R. Blood sample collection in small laboratory animals // Journal of Pharmacology & Pharmacotherapeutics. - 2010. - No. 1 (2). -P. 87-93.
- James L.S., Thomas K.B. The future of drug safety testing: expanding the view and narrowing the focus // Drug discovery today. - 2009. - No. 14 (3-4). - P. 162-167.
- Reflection paper on non-clinical evaluation of drug-induced liver injury (DILI) // Committee for Medicinal Products for Human Use (CHMP). - 2010. URL: https://www.ema.europa.eu/en/documents/scientific-guideline/ ref l e c t ion-paper-non-clinical-evaluation-drug-induced-liver-injury-dili_en.pdf (date of viewing: 14.09.2020).
- Siska W., Gupta A., Tomlinson L., et al. Recommendations for clinical pathology data generation, interpretation, and reporting in target animal safety studies for veterinary drug development // International Journal of Toxicology. - 2017. - No. 36 (4). - P. 293-302.
- Manani S.M., Virz G.M., Clementi A., et al. Proinflammatory cytokines: a possible relationship with dialytic adequacy and serum albumin in peritoneal dialysis patients // Clinical kidney journal. - 2016. - Vol. 9 (1). - P. 153-157.
- Washington I.M., Van Hoosier G. dinical biochemistry and hematology // The Laboratory Rabbit, Guinea Pig, Hamster, and Other Rodents. - 2012. - P. 57-116.
Supplementary files
![](/img/style/loading.gif)