Фрагментация и гидроксиметилирование ДНК эякулированных сперматозоидов при нормозооспермии и патоспермии



Цитировать

Полный текст

Аннотация

Актуальность. Поиск новых критериев качества эякулята, основанных на оценке структурно-функционального состояния генома сперматозоидов, является актуальной задачей репродуктологии.

Цель — оценка целостности ДНК и содержания 5-гидроксиметилцитозина (5hmC) в одних и тех же эякулированных сперматозоидах, полученных от пациентов с нормозооспермией и патоспермией.

Материал и методы. Исследование проведено на образцах эякулята 63 пациентов с нормозооспермией (n=33) и патоспермией (n=30). Из образцов готовили микроскопические препараты, на которых последовательно выявляли фрагментированную ДНК методом TUNEL, получали цифровые фотоизображения, выявляли 5hmC методом непрямой иммунофлуоресценции и снова получали цифровые фотоизображения тех же полей зрения. Всего проанализировано 126000 сперматозоидов – по 2000 в каждом образце.

Результаты. Значительная доля сперматозоидов (72,8-94,2%) во всех образцах характеризовалась отсутствием нарушений целостности ДНК и низким (фоновым) уровнем 5hmC. Частота сперматозоидов, в которых была выявлена фрагментация ДНК, повышенный уровень гидроксиметилирования или обе характеристики одновременно варьировала между образцами и составила 0,05-13,8%, 0,15-11,5% и 0,99-13,38%, соответственно. Частота сперматозоидов с фрагментацией и/или гипергидроксиметилированием ДНК не отличалась у пациентов с нормозооспермией и патоспермией. Установлено, что фрагментация и гипегидроксиметилирование ДНК в эякулированных сперматозоидах взаимозависимы, и их сочетание в гаметах носит неслучайный характер.

Заключение. Неслучайность сочетания в сперматозоидах фрагментации ДНК и ее гипергидроксиметилирования и взаимозависимость этих характеристик свидетельствует об их общем триггере, которым, вероятнее всего, является окислительный стресс. При этом, наличие других факторов, приводящих к повреждению ДНК или изменению уровня ее гидроксиметилирования объясняет не 100%-совпадение этих характеристик в сперматозоидах. Оценка фрагментации ДНК и уровня ее гидроксиметилирования в сперматозоидах представляется перспективной для определения качества эякулята и выявления потенциальных причин идиопатического бесплодия.

Полный текст

Доступ закрыт

Об авторах

Янина Максимовна Сагурова

Научно-исследовательский институт акушерства, гинекологии и репродуктологии им. Д.О. Отта

Email: yanina.sagurova96@mail.ru
ORCID iD: 0000-0003-4947-8171
SPIN-код: 8908-7033

мл. научн. сотр.

Россия, Санкт-Петербург

Ольга Алексеевна Ефимова

Научно-исследовательский институт акушерства, гинекологии и репродуктологии им. Д.О. Отта

Email: efimova_o82@mail.ru
ORCID iD: 0000-0003-4495-0983
SPIN-код: 6959-5014
Scopus Author ID: 14013324600
ResearcherId: F-5764-2014

канд. биол. наук, заведующий лабораторией цитогенетики и цитогеномики репродукции

Россия, Санкт-Петербург

Михаил Игоревич Крапивин

Научно-исследовательский институт акушерства, гинекологии и репродуктологии им. Д.О. Отта

Email: krapivin-mihail@mail.ru
ORCID iD: 0000-0002-1693-5973
SPIN-код: 4989-1932
Scopus Author ID: 56507166200

мл. научн. сотр.

Россия, Санкт-Петербург

Мария Алексеевна Ищук

Научно-исследовательский институт акушерства, гинекологии и репродуктологии им. Д.О. Отта

Email: mashamazilina@gmail.com
ORCID iD: 0000-0002-4443-4287
SPIN-код: 1237-6373

мл. научн. сотр.

Россия, Санкт-Петербург

Дмитрий Александрович Староверов

Научно-исследовательский институт акушерства, гинекологии и репродуктологии им. Д.О. Отта

Email: st110982@student.spbu.ru
ORCID iD: 0009-0004-9716-4964
SPIN-код: 3438-7974

Лаборант-исследователь

Россия, Санкт-Петербург

Екатерина Дмитриевна Трусова

Научно-исследовательский институт акушерства, гинекологии и репродуктологии им. Д.О. Отта

Email: trusova.ek@mail.ru
ORCID iD: 0009-0005-6529-5799

Лаборант-исследователь

Россия, Санкт-Петербург

Евгения Михайловна Комарова

Научно-исследовательский институт акушерства, гинекологии и репродуктологии им. Д.О. Отта

Email: evgmkomarova@gmail.com
ORCID iD: 0000-0002-9988-9879
SPIN-код: 1056-7821
Scopus Author ID: 57191625749

канд. биол. наук, заведующая лабораторией раннего эмбриогенеза

Россия, Санкт-Петербург

Олеся Николаевна Беспалова

Научно-исследовательский институт акушерства, гинекологии и репродуктологии им. Д.О. Отта

Email: shiggerra@mail.ru
ORCID iD: 0000-0002-6542-5953
SPIN-код: 4732-8089
Scopus Author ID: D-3880-2018

доктор мед. наук, заместитель директора по научной работе

Россия, 199034, Санкт-Петербург, Менделеевская линия, д. 3

Анна Андреевна Пендина

Научно-исследовательский институт акушерства, гинекологии и репродуктологии им. Д.О. Отта

Автор, ответственный за переписку.
Email: pendina@mail.ru
ORCID iD: 0000-0001-9182-9188
SPIN-код: 3123-2133
Scopus Author ID: 6506976983

канд. биол. наук, ст. научн. сотр.

Россия, Санкт-Петербург

Список литературы

  1. Agarwal A., Bascaran S., Parekh N., et al. Male infertility // The Lancet. 2021. Vol. 397. № 10271. P. 319-333. doi: 10.1016/S0140-6736(20)32667-2.
  2. Yatsenko S.A., Rajkovic A. Genetics of human female infertility // Biology of reproduction. 2019. Vol. 101. № 3. P. 549-566. doi: 10.1017/9781009197700.009.
  3. Eisenberg M.L., Esteves S.C., Lamb DJ, et al. Male infertility // Nature Reviews Disease Primers. 2023. Vol. 9. №. 1. P. 49. doi: 10.1038/s41572-023-00459-w.
  4. Bala R., Singh V., Rajender S., Singh K. Environment, lifestyle, and female infertility // Reproductive sciences. 2021. Vol. 28. P. 617-638. doi: 10.1007/s43032-020-00279-3.
  5. Matzuk M.M., Lamb D.J. The biology of infertility: research advances and clinical challenges // Nature medicine. 2008. Vol. 14. № 11. P. 1197-1213. doi: 10.1038/nm.f.1895.
  6. Bracke A., Peeters K., Punjabi U., Hoogewijs D., Dewilde S. A search for molecular mechanisms underlying male idiopathic infertility // Reproductive biomedicine online. 2018. Vol. 36. № 3. P. 327-339. doi: 10.1016/j.rbmo.2017.12.005.
  7. Marinaro J.A. Sperm DNA fragmentation and its interaction with female factors // Fertility and Sterility. 2023. Vol. 120. № 4. P. 715-719. doi: 10.1016/j.fertnstert.2023.06.001.
  8. Dai Y., Liu J., Yuan E., Li Y., Shi Y., Zhang L. Relationship among traditional semen parameters, sperm DNA fragmentation, and unexplained recurrent miscarriage: a systematic review and meta-analysis // Frontiers in endocrinology. 2022. Vol. 12. P. 802632. doi: 10.3389/fendo.2021.802632.
  9. Malić Vončina S., Stenqvist A., Bungum M., Schyman T., Giwercman, A. Sperm DNA fragmentation index and cumulative live birth rate in a cohort of 2,713 couples undergoing assisted reproduction treatment // Fertility and sterility. 2021. Vol. 116. № 6. P. 1483–1490. doi: 10.1016/j.fertnstert.2021.06.049.
  10. Sunday O. E., Nwogu A., Samue E. E., et al. Single nucleotide polymorphisms in protamine 2 genes in fertile and infertile human males in Southwest, Nigeria // World Journal of Advanced Research and Reviews. 2024. Vol. 23. № 1. P. 1365-1373. doi: 10.30574/wjarr.2024.23.1.1834.
  11. Ni K., Spiess A. N., Schuppe H. C., Steger K. The impact of sperm protamine deficiency and sperm DNA damage on human male fertility: a systematic review and meta-analysis // Andrology. 2016. Vol. 4. № 5. P. 789-799. doi: 10.1111/andr.12216.
  12. Aston K.I., Uren P.J., Jenkins T.G., et al. Aberrant sperm DNA methylation predicts male fertility status and embryo quality // Fertility and Sterility. 2015; 104: 1388-1397.e1-5. doi: 10.1016/j.juro.2016.07.015.
  13. Du Y., Li M., Chen J., et al. Promoter targeted bisulfite sequencing reveals DNA methylation profiles associated with low sperm motility in asthenozoospermia // Human Reproduction. 2016. Vol. 31. P. 24-33. doi: 10.1093/humrep/dev283.
  14. Urdinguio R.G., Bayón G.F., Dmitrijeva M., et al. Aberrant DNA methylation patterns of spermatozoa in men with unexplained infertility // Human Reproduction. 2015. Vol. 30. P. 1014-28. doi: 10.1093/humrep/dev053.
  15. Olszewska M., Kordyl O., Kamieniczna M. Global 5mC and 5hmC DNA Levels in Human Sperm Subpopulations with Differentially Protaminated Chromatin in Normo- and Oligoasthenozoospermic Males // International Journal of Molecular Sciences. 2022. Vol. 23. № 9. P. 4516. doi: 10.3390/ijms23094516.
  16. Ефимова О.А., Крапивин М.И., Парфеньев С.Е., и др. Дифференциальное распределение 5-формилцитозина и 5-карбоксилцитозина в сперматогенных клетках и сперматозоидах человека // Экологическая генетика. 2023. Т. 21. №1. C. 61-74. doi: 10.17816/ecogen120080.
  17. Wang X.X., Sun B.F., Jiao J., et al. Genome-wide 5-hydroxymethylcytosine modification pattern is a novel epigenetic feature of globozoospermia //Oncotarget. 2015. Vol. 6. № 9. P. 6535. doi: 10.18632/oncotarget.3163.
  18. Мазилина М. А., Комарова Е. М., Лесик Е. А., и др. Влияние фрагментации ДНК сперматозоидов на эффективность оплодотворения и развитие эмбрионов человека, культивируемых in vitro //Журнал акушерства и женских болезней. 2017. Т. 66. № спецвыпуск. С. 40-41. doi: 10.18565/aig.2017.3.69-74.
  19. Efimova O.A., Pendina A.A., Tikhonov A.V., et al. Genome-wide 5-hydroxymethylcytosine patterns in human spermatogenesis are associated with semen quality // Oncotarget. 2017. Vol. 8. № 51. P. 88294-88307. doi: 10.18632/oncotarget.18331.
  20. WHO laboratory manual for the examination and processing of human semen. Sixth Edition. World Health Organization. 2021.
  21. Efimova O.A., Pendina A.A., Tikhonov A.V., et al. Chromosome hydroxymethylation patterns in human zygotes and cleavage-stage embryos // Reproduction. 2015. Vol. 149. P. 223-233. doi: 10.1530/rep-14-0343.
  22. Shcherbitskaia A.D., Komarova E.M., Milyutina Y.P., et al. Age-Related COVID-19 Influence on Male Fertility // International Journal of Molecular Sciences. 2023. Vol. 24. № 21. P.15742. doi: 10.3390/ijms242115742.
  23. dos Santos Hamilton T.R., Assumpção M.E.O.D.Á. Sperm DNA fragmentation: causes and identification // Zygote. 2020. Vol. 28. № 1. P. 1-8. doi: 10.1017/s0967199419000595.
  24. Sakkas D., Manicardi G., Bianchi P.G., Bizzaro D., Bianchi U. Relationship between the presence of endogenous nicks and sperm chromatin packaging in maturing and fertilizing mouse spermatozoa // Biology of Reproduction. 1995. Vol. 52. P. 1149–55. doi: 10.1095/biolreprod52.5.1149.
  25. Marcon L., Boissonneault G. Transient DNA strand breaks during mouse and human spermiogenesis new insights in stage specificity and link to chromatin remodeling // Biology of Reproduction. 2004. Vol. 70. P. 910–918. doi: 10.1095/biolreprod.103.022541.
  26. Sakkas D., Mariethoz E., Manicardi G., et al. Origin of DNA damage in ejaculated human spermatozoa // Reviews of reproduction. 1999. Vol. 4. P. 31-37. doi: 10.1530/ror.0.0040031.
  27. Lopes S., Jurisicova A., Sun J. G., Casper R. F. Reactive oxygen species: potential cause for DNA fragmentation in human spermatozoa // Human Reproduction (Oxford, England). 1998. Vol. 13. №. 4. P. 896-900. doi: 10.1093/humrep/13.4.896.
  28. Fernández-Sánchez A., Madrigal-Santillán E., Bautista M., et al. Inflammation, oxidative stress, and obesity // International Journal of Molecular Sciences. 2011. Vol. 12. № 5. P. 3117-3132. doi: 10.3390/ijms12053117.
  29. Elshal M. F., El-Sayed, I. H., Elsaied, M. A., et al. Sperm head defects and disturbances in spermatozoal chromatin and DNA integrities in idiopathic infertile subjects: association with cigarette smoking // Clinical biochemistry. 2009. Vol. 42. № 7-8. P. 589-594. doi: 10.1016/j.clinbiochem.2008.11.012.
  30. Sanchez-Pena L.C., Reyes B.E., Lopez-Carrillo L., et al. Organophosphorous pesticide exposure alters sperm chromatin structure in Mexican agricultural workers // Toxicology and applied pharmacology. 2004. Vol. 196. № 1. P. 108-113. doi: 10.1016/j.taap.2003.11.023.
  31. Garolla A., Torino M., Sartini B., Cosci I., et al. Seminal and molecular evidence that sauna exposure affects human spermatogenesis // Human Reproduction. 2013. Vol. 28. № 4. P. 877-885. doi: 10.3410/f.717991598.793476086.
  32. Meeker J.D., Ehrlich S., Toth T.L., Wright D.L., et al. Semen quality and sperm DNA damage in relation to urinary bisphenol A among men from an infertility clinic // Reproductive toxicology. 2010. Vol. 30. № 4. P. 532-539. doi: 10.1016/j.reprotox.2010.07.005.
  33. Desai N.R., Kesari K.K., Agarwal A. Pathophysiology of cell phone radiation: oxidative stress and carcinogenesis with focus on male reproductive system //Reproductive Biology and Endocrinology. 2009. Vol. 7. P. 1-9. doi: 10.1186/1477-7827-7-114.
  34. Wossidlo M., Nakamura T., Lepikhov K. et al. 5-Hydroxymethylcytosine in the mammalian zygote is linked with epigenetic reprogramming // Nat Commun. 2011. Vol. 2. P. 241 doi: 10.1038/ncomms1240.
  35. Hill P.W.S., Amouroux R., Hajkova P. DNA demethylation, Tet proteins and 5-hydroxymethylcytosine in epigenetic reprogramming: An emerging complex story // Genomics. 2014. Vol. 104. № 5. P. 324-333, doi: 10.1016/j.ygeno.2014.08.012.Efimova O.A., Pendina A.A., Tikhonov A.V. et al. Oxidized form of 5-methylcytosine—5-hydroxymethylcytosine: a new insight into the biological significance in the mammalian genome // Russian Journal of Genetics. 2015. Vol. 5. P. 75–81. doi: 10.1134/S2079059715020033.
  36. Zheng K., Lyu Z., Chen J., Chen G. 5-Hydroxymethylcytosine: Far Beyond the Intermediate of DNA Demethylation // International Journal of Molecular Sciences. 2024. Vol. 25. № 21. P. 11780. doi: 10.3390/ijms252111780.
  37. Efimova O.A., Koltsova A.S., Krapivin M.I., Tikhonov A.V., Pendina A.A. Environmental epigenetics and genome flexibility: Focus on 5-hydroxymethylcytosine // International Journal of Molecular Sciences. 2020. Vol. 21. № 9. P. 3223. doi: 10.3390/ijms21093223.
  38. Zheng H., Zhou X., Li D. K., et al. Genome-wide alteration in DNA hydroxymethylation in the sperm from bisphenol A-exposed men // PLoS One. 2017. Vol. 12. № 6. P. e0178535. doi: 10.1371/journal.pone.0178535.
  39. Feng Q., Li Q., Hu Y., et al. TET1 overexpression affects cell proliferation and apoptosis in aging ovaries // Journal of Assisted Reproduction and Genetics. 2024. P. 1-12. doi: 10.1007/s10815-024-03271-x.
  40. Shanshan L.U.O., Chengyun H.U., Xue L.I., Chaoliang, T.A.N.G. High S-adenosylmethionine-containing diet inhibits post-stroke neuronal apoptosis and ROS accumulation in mice through TET3-mediated DNA demethylation // Journal of Xuzhou Medical University. 2024. Vol. 44. № 7. P. 469-476. doi: 10.3969/j.issn.2096-3882.2024.07.001.
  41. Madugundu G.S., Cadet J., Wagner J.R. Hydroxyl-radical-induced oxidation of 5-methylcytosine in isolated and cellular DNA // Nucleic Acids Res. 2014. Vol. 42. № 11. P. 7450-60. doi: 10.1093/nar/gku334.
  42. Cadet J., Wagner J.R. Radiation-induced damage to cellular DNA: Chemical nature and mechanisms of lesion formation // Radiation Physics and Chemistry. 2016. Vol. 128. P. 54-59. doi: 10.1016/j.radphyschem.2016.04.018.

Дополнительные файлы

Доп. файлы
Действие
1. JATS XML

© Эко-Вектор,



СМИ зарегистрировано Федеральной службой по надзору в сфере связи, информационных технологий и массовых коммуникаций (Роскомнадзор).
Регистрационный номер и дата принятия решения о регистрации СМИ: серия ПИ № ФС 77 - 74760 от 29.12.2018 г.