Фрагментация и гидроксиметилирование ДНК эякулированных сперматозоидов при нормозооспермии и патоспермии
- Авторы: Сагурова Я.М.1, Ефимова О.А.1, Крапивин М.И.1, Ищук М.А.1, Староверов Д.А.1, Трусова Е.Д.1, Комарова Е.М.1, Беспалова О.Н.1, Пендина А.А.1
-
Учреждения:
- Научно-исследовательский институт акушерства, гинекологии и репродуктологии им. Д.О. Отта
- Раздел: Оригинальные исследования
- Статья опубликована: 28.12.2024
- URL: https://journals.eco-vector.com/MAJ/article/view/642828
- DOI: https://doi.org/10.17816/MAJ642828
- ID: 642828
Цитировать
Полный текст
Аннотация
Актуальность. Поиск новых критериев качества эякулята, основанных на оценке структурно-функционального состояния генома сперматозоидов, является актуальной задачей репродуктологии.
Цель — оценка целостности ДНК и содержания 5-гидроксиметилцитозина (5hmC) в одних и тех же эякулированных сперматозоидах, полученных от пациентов с нормозооспермией и патоспермией.
Материал и методы. Исследование проведено на образцах эякулята 63 пациентов с нормозооспермией (n=33) и патоспермией (n=30). Из образцов готовили микроскопические препараты, на которых последовательно выявляли фрагментированную ДНК методом TUNEL, получали цифровые фотоизображения, выявляли 5hmC методом непрямой иммунофлуоресценции и снова получали цифровые фотоизображения тех же полей зрения. Всего проанализировано 126000 сперматозоидов – по 2000 в каждом образце.
Результаты. Значительная доля сперматозоидов (72,8-94,2%) во всех образцах характеризовалась отсутствием нарушений целостности ДНК и низким (фоновым) уровнем 5hmC. Частота сперматозоидов, в которых была выявлена фрагментация ДНК, повышенный уровень гидроксиметилирования или обе характеристики одновременно варьировала между образцами и составила 0,05-13,8%, 0,15-11,5% и 0,99-13,38%, соответственно. Частота сперматозоидов с фрагментацией и/или гипергидроксиметилированием ДНК не отличалась у пациентов с нормозооспермией и патоспермией. Установлено, что фрагментация и гипегидроксиметилирование ДНК в эякулированных сперматозоидах взаимозависимы, и их сочетание в гаметах носит неслучайный характер.
Заключение. Неслучайность сочетания в сперматозоидах фрагментации ДНК и ее гипергидроксиметилирования и взаимозависимость этих характеристик свидетельствует об их общем триггере, которым, вероятнее всего, является окислительный стресс. При этом, наличие других факторов, приводящих к повреждению ДНК или изменению уровня ее гидроксиметилирования объясняет не 100%-совпадение этих характеристик в сперматозоидах. Оценка фрагментации ДНК и уровня ее гидроксиметилирования в сперматозоидах представляется перспективной для определения качества эякулята и выявления потенциальных причин идиопатического бесплодия.
Полный текст

Об авторах
Янина Максимовна Сагурова
Научно-исследовательский институт акушерства, гинекологии и репродуктологии им. Д.О. Отта
Email: yanina.sagurova96@mail.ru
ORCID iD: 0000-0003-4947-8171
SPIN-код: 8908-7033
мл. научн. сотр.
Россия, Санкт-ПетербургОльга Алексеевна Ефимова
Научно-исследовательский институт акушерства, гинекологии и репродуктологии им. Д.О. Отта
Email: efimova_o82@mail.ru
ORCID iD: 0000-0003-4495-0983
SPIN-код: 6959-5014
Scopus Author ID: 14013324600
ResearcherId: F-5764-2014
канд. биол. наук, заведующий лабораторией цитогенетики и цитогеномики репродукции
Россия, Санкт-ПетербургМихаил Игоревич Крапивин
Научно-исследовательский институт акушерства, гинекологии и репродуктологии им. Д.О. Отта
Email: krapivin-mihail@mail.ru
ORCID iD: 0000-0002-1693-5973
SPIN-код: 4989-1932
Scopus Author ID: 56507166200
мл. научн. сотр.
Россия, Санкт-ПетербургМария Алексеевна Ищук
Научно-исследовательский институт акушерства, гинекологии и репродуктологии им. Д.О. Отта
Email: mashamazilina@gmail.com
ORCID iD: 0000-0002-4443-4287
SPIN-код: 1237-6373
мл. научн. сотр.
Россия, Санкт-ПетербургДмитрий Александрович Староверов
Научно-исследовательский институт акушерства, гинекологии и репродуктологии им. Д.О. Отта
Email: st110982@student.spbu.ru
ORCID iD: 0009-0004-9716-4964
SPIN-код: 3438-7974
Лаборант-исследователь
Россия, Санкт-ПетербургЕкатерина Дмитриевна Трусова
Научно-исследовательский институт акушерства, гинекологии и репродуктологии им. Д.О. Отта
Email: trusova.ek@mail.ru
ORCID iD: 0009-0005-6529-5799
Лаборант-исследователь
Россия, Санкт-ПетербургЕвгения Михайловна Комарова
Научно-исследовательский институт акушерства, гинекологии и репродуктологии им. Д.О. Отта
Email: evgmkomarova@gmail.com
ORCID iD: 0000-0002-9988-9879
SPIN-код: 1056-7821
Scopus Author ID: 57191625749
канд. биол. наук, заведующая лабораторией раннего эмбриогенеза
Россия, Санкт-ПетербургОлеся Николаевна Беспалова
Научно-исследовательский институт акушерства, гинекологии и репродуктологии им. Д.О. Отта
Email: shiggerra@mail.ru
ORCID iD: 0000-0002-6542-5953
SPIN-код: 4732-8089
Scopus Author ID: D-3880-2018
доктор мед. наук, заместитель директора по научной работе
Россия, 199034, Санкт-Петербург, Менделеевская линия, д. 3Анна Андреевна Пендина
Научно-исследовательский институт акушерства, гинекологии и репродуктологии им. Д.О. Отта
Автор, ответственный за переписку.
Email: pendina@mail.ru
ORCID iD: 0000-0001-9182-9188
SPIN-код: 3123-2133
Scopus Author ID: 6506976983
канд. биол. наук, ст. научн. сотр.
Россия, Санкт-ПетербургСписок литературы
- Agarwal A., Bascaran S., Parekh N., et al. Male infertility // The Lancet. 2021. Vol. 397. № 10271. P. 319-333. doi: 10.1016/S0140-6736(20)32667-2.
- Yatsenko S.A., Rajkovic A. Genetics of human female infertility // Biology of reproduction. 2019. Vol. 101. № 3. P. 549-566. doi: 10.1017/9781009197700.009.
- Eisenberg M.L., Esteves S.C., Lamb DJ, et al. Male infertility // Nature Reviews Disease Primers. 2023. Vol. 9. №. 1. P. 49. doi: 10.1038/s41572-023-00459-w.
- Bala R., Singh V., Rajender S., Singh K. Environment, lifestyle, and female infertility // Reproductive sciences. 2021. Vol. 28. P. 617-638. doi: 10.1007/s43032-020-00279-3.
- Matzuk M.M., Lamb D.J. The biology of infertility: research advances and clinical challenges // Nature medicine. 2008. Vol. 14. № 11. P. 1197-1213. doi: 10.1038/nm.f.1895.
- Bracke A., Peeters K., Punjabi U., Hoogewijs D., Dewilde S. A search for molecular mechanisms underlying male idiopathic infertility // Reproductive biomedicine online. 2018. Vol. 36. № 3. P. 327-339. doi: 10.1016/j.rbmo.2017.12.005.
- Marinaro J.A. Sperm DNA fragmentation and its interaction with female factors // Fertility and Sterility. 2023. Vol. 120. № 4. P. 715-719. doi: 10.1016/j.fertnstert.2023.06.001.
- Dai Y., Liu J., Yuan E., Li Y., Shi Y., Zhang L. Relationship among traditional semen parameters, sperm DNA fragmentation, and unexplained recurrent miscarriage: a systematic review and meta-analysis // Frontiers in endocrinology. 2022. Vol. 12. P. 802632. doi: 10.3389/fendo.2021.802632.
- Malić Vončina S., Stenqvist A., Bungum M., Schyman T., Giwercman, A. Sperm DNA fragmentation index and cumulative live birth rate in a cohort of 2,713 couples undergoing assisted reproduction treatment // Fertility and sterility. 2021. Vol. 116. № 6. P. 1483–1490. doi: 10.1016/j.fertnstert.2021.06.049.
- Sunday O. E., Nwogu A., Samue E. E., et al. Single nucleotide polymorphisms in protamine 2 genes in fertile and infertile human males in Southwest, Nigeria // World Journal of Advanced Research and Reviews. 2024. Vol. 23. № 1. P. 1365-1373. doi: 10.30574/wjarr.2024.23.1.1834.
- Ni K., Spiess A. N., Schuppe H. C., Steger K. The impact of sperm protamine deficiency and sperm DNA damage on human male fertility: a systematic review and meta-analysis // Andrology. 2016. Vol. 4. № 5. P. 789-799. doi: 10.1111/andr.12216.
- Aston K.I., Uren P.J., Jenkins T.G., et al. Aberrant sperm DNA methylation predicts male fertility status and embryo quality // Fertility and Sterility. 2015; 104: 1388-1397.e1-5. doi: 10.1016/j.juro.2016.07.015.
- Du Y., Li M., Chen J., et al. Promoter targeted bisulfite sequencing reveals DNA methylation profiles associated with low sperm motility in asthenozoospermia // Human Reproduction. 2016. Vol. 31. P. 24-33. doi: 10.1093/humrep/dev283.
- Urdinguio R.G., Bayón G.F., Dmitrijeva M., et al. Aberrant DNA methylation patterns of spermatozoa in men with unexplained infertility // Human Reproduction. 2015. Vol. 30. P. 1014-28. doi: 10.1093/humrep/dev053.
- Olszewska M., Kordyl O., Kamieniczna M. Global 5mC and 5hmC DNA Levels in Human Sperm Subpopulations with Differentially Protaminated Chromatin in Normo- and Oligoasthenozoospermic Males // International Journal of Molecular Sciences. 2022. Vol. 23. № 9. P. 4516. doi: 10.3390/ijms23094516.
- Ефимова О.А., Крапивин М.И., Парфеньев С.Е., и др. Дифференциальное распределение 5-формилцитозина и 5-карбоксилцитозина в сперматогенных клетках и сперматозоидах человека // Экологическая генетика. 2023. Т. 21. №1. C. 61-74. doi: 10.17816/ecogen120080.
- Wang X.X., Sun B.F., Jiao J., et al. Genome-wide 5-hydroxymethylcytosine modification pattern is a novel epigenetic feature of globozoospermia //Oncotarget. 2015. Vol. 6. № 9. P. 6535. doi: 10.18632/oncotarget.3163.
- Мазилина М. А., Комарова Е. М., Лесик Е. А., и др. Влияние фрагментации ДНК сперматозоидов на эффективность оплодотворения и развитие эмбрионов человека, культивируемых in vitro //Журнал акушерства и женских болезней. 2017. Т. 66. № спецвыпуск. С. 40-41. doi: 10.18565/aig.2017.3.69-74.
- Efimova O.A., Pendina A.A., Tikhonov A.V., et al. Genome-wide 5-hydroxymethylcytosine patterns in human spermatogenesis are associated with semen quality // Oncotarget. 2017. Vol. 8. № 51. P. 88294-88307. doi: 10.18632/oncotarget.18331.
- WHO laboratory manual for the examination and processing of human semen. Sixth Edition. World Health Organization. 2021.
- Efimova O.A., Pendina A.A., Tikhonov A.V., et al. Chromosome hydroxymethylation patterns in human zygotes and cleavage-stage embryos // Reproduction. 2015. Vol. 149. P. 223-233. doi: 10.1530/rep-14-0343.
- Shcherbitskaia A.D., Komarova E.M., Milyutina Y.P., et al. Age-Related COVID-19 Influence on Male Fertility // International Journal of Molecular Sciences. 2023. Vol. 24. № 21. P.15742. doi: 10.3390/ijms242115742.
- dos Santos Hamilton T.R., Assumpção M.E.O.D.Á. Sperm DNA fragmentation: causes and identification // Zygote. 2020. Vol. 28. № 1. P. 1-8. doi: 10.1017/s0967199419000595.
- Sakkas D., Manicardi G., Bianchi P.G., Bizzaro D., Bianchi U. Relationship between the presence of endogenous nicks and sperm chromatin packaging in maturing and fertilizing mouse spermatozoa // Biology of Reproduction. 1995. Vol. 52. P. 1149–55. doi: 10.1095/biolreprod52.5.1149.
- Marcon L., Boissonneault G. Transient DNA strand breaks during mouse and human spermiogenesis new insights in stage specificity and link to chromatin remodeling // Biology of Reproduction. 2004. Vol. 70. P. 910–918. doi: 10.1095/biolreprod.103.022541.
- Sakkas D., Mariethoz E., Manicardi G., et al. Origin of DNA damage in ejaculated human spermatozoa // Reviews of reproduction. 1999. Vol. 4. P. 31-37. doi: 10.1530/ror.0.0040031.
- Lopes S., Jurisicova A., Sun J. G., Casper R. F. Reactive oxygen species: potential cause for DNA fragmentation in human spermatozoa // Human Reproduction (Oxford, England). 1998. Vol. 13. №. 4. P. 896-900. doi: 10.1093/humrep/13.4.896.
- Fernández-Sánchez A., Madrigal-Santillán E., Bautista M., et al. Inflammation, oxidative stress, and obesity // International Journal of Molecular Sciences. 2011. Vol. 12. № 5. P. 3117-3132. doi: 10.3390/ijms12053117.
- Elshal M. F., El-Sayed, I. H., Elsaied, M. A., et al. Sperm head defects and disturbances in spermatozoal chromatin and DNA integrities in idiopathic infertile subjects: association with cigarette smoking // Clinical biochemistry. 2009. Vol. 42. № 7-8. P. 589-594. doi: 10.1016/j.clinbiochem.2008.11.012.
- Sanchez-Pena L.C., Reyes B.E., Lopez-Carrillo L., et al. Organophosphorous pesticide exposure alters sperm chromatin structure in Mexican agricultural workers // Toxicology and applied pharmacology. 2004. Vol. 196. № 1. P. 108-113. doi: 10.1016/j.taap.2003.11.023.
- Garolla A., Torino M., Sartini B., Cosci I., et al. Seminal and molecular evidence that sauna exposure affects human spermatogenesis // Human Reproduction. 2013. Vol. 28. № 4. P. 877-885. doi: 10.3410/f.717991598.793476086.
- Meeker J.D., Ehrlich S., Toth T.L., Wright D.L., et al. Semen quality and sperm DNA damage in relation to urinary bisphenol A among men from an infertility clinic // Reproductive toxicology. 2010. Vol. 30. № 4. P. 532-539. doi: 10.1016/j.reprotox.2010.07.005.
- Desai N.R., Kesari K.K., Agarwal A. Pathophysiology of cell phone radiation: oxidative stress and carcinogenesis with focus on male reproductive system //Reproductive Biology and Endocrinology. 2009. Vol. 7. P. 1-9. doi: 10.1186/1477-7827-7-114.
- Wossidlo M., Nakamura T., Lepikhov K. et al. 5-Hydroxymethylcytosine in the mammalian zygote is linked with epigenetic reprogramming // Nat Commun. 2011. Vol. 2. P. 241 doi: 10.1038/ncomms1240.
- Hill P.W.S., Amouroux R., Hajkova P. DNA demethylation, Tet proteins and 5-hydroxymethylcytosine in epigenetic reprogramming: An emerging complex story // Genomics. 2014. Vol. 104. № 5. P. 324-333, doi: 10.1016/j.ygeno.2014.08.012.Efimova O.A., Pendina A.A., Tikhonov A.V. et al. Oxidized form of 5-methylcytosine—5-hydroxymethylcytosine: a new insight into the biological significance in the mammalian genome // Russian Journal of Genetics. 2015. Vol. 5. P. 75–81. doi: 10.1134/S2079059715020033.
- Zheng K., Lyu Z., Chen J., Chen G. 5-Hydroxymethylcytosine: Far Beyond the Intermediate of DNA Demethylation // International Journal of Molecular Sciences. 2024. Vol. 25. № 21. P. 11780. doi: 10.3390/ijms252111780.
- Efimova O.A., Koltsova A.S., Krapivin M.I., Tikhonov A.V., Pendina A.A. Environmental epigenetics and genome flexibility: Focus on 5-hydroxymethylcytosine // International Journal of Molecular Sciences. 2020. Vol. 21. № 9. P. 3223. doi: 10.3390/ijms21093223.
- Zheng H., Zhou X., Li D. K., et al. Genome-wide alteration in DNA hydroxymethylation in the sperm from bisphenol A-exposed men // PLoS One. 2017. Vol. 12. № 6. P. e0178535. doi: 10.1371/journal.pone.0178535.
- Feng Q., Li Q., Hu Y., et al. TET1 overexpression affects cell proliferation and apoptosis in aging ovaries // Journal of Assisted Reproduction and Genetics. 2024. P. 1-12. doi: 10.1007/s10815-024-03271-x.
- Shanshan L.U.O., Chengyun H.U., Xue L.I., Chaoliang, T.A.N.G. High S-adenosylmethionine-containing diet inhibits post-stroke neuronal apoptosis and ROS accumulation in mice through TET3-mediated DNA demethylation // Journal of Xuzhou Medical University. 2024. Vol. 44. № 7. P. 469-476. doi: 10.3969/j.issn.2096-3882.2024.07.001.
- Madugundu G.S., Cadet J., Wagner J.R. Hydroxyl-radical-induced oxidation of 5-methylcytosine in isolated and cellular DNA // Nucleic Acids Res. 2014. Vol. 42. № 11. P. 7450-60. doi: 10.1093/nar/gku334.
- Cadet J., Wagner J.R. Radiation-induced damage to cellular DNA: Chemical nature and mechanisms of lesion formation // Radiation Physics and Chemistry. 2016. Vol. 128. P. 54-59. doi: 10.1016/j.radphyschem.2016.04.018.
Дополнительные файлы
