НАПРАВЛЕННАЯ РЕГУЛЯЦИЯ ПАТОГЕННЫХ СВОЙСТВ СТРЕПТОКОККОВ
- Авторы: ДМИТРИЕВ АВ1, РОЖДЕСТВЕНСКАЯ АС1, ЗУТКИС АА1, ТОТОЛЯН АА1
-
Учреждения:
- ГУ «Научно-исследовательский институт экспериментальной медицины СЗО РАМН», Санкт-Петербург
- Выпуск: Том 9, № 4 (2009)
- Страницы: 50-58
- Раздел: Статьи
- Статья опубликована: 15.12.2009
- URL: https://journals.eco-vector.com/MAJ/article/view/9396
- ID: 9396
Цитировать
Полный текст
Аннотация
Для изучения направленной регуляции патогенных свойств стрептококков были выбраны следующие модельные системы: ДНК-связывающий белок-регулятор транскрипции Sak189 5. agalactiae и ДНК-связывающие белки-регуляторы транскрипции MutR и Rgg 5. pyogenes. В работе методом инсерционного мутагенеза созданы штаммы, мутантные по генам mutR, rgg и sak189. Показано, что инактивация генов регуляторов транскрипции приводит к изменениям в кинетике роста штаммов, их способности утилизировать отдельные компоненты питательных сред и размножаться в обогащенных и «минимальных» средах. У трех штаммов S. pyogenes выявлены регулоны, контролируемые белком Rgg. Обнаружены различия в экспрессии поверхностных и секретируемых белков у мутантных штаммов по сравнению со штаммами дикого типа. Продемонстрировано, что инактивация генов sak189, mutR и rgg приводит к изменениям в патогенных свойствах стрептококков In vitro и in vivo.
Полный текст
Об авторах
А В ДМИТРИЕВ
ГУ «Научно-исследовательский институт экспериментальной медицины СЗО РАМН», Санкт-Петербург197376, ул. Академика Павлова, 12
А С РОЖДЕСТВЕНСКАЯ
ГУ «Научно-исследовательский институт экспериментальной медицины СЗО РАМН», Санкт-Петербург197376, ул. Академика Павлова, 12
А А ЗУТКИС
ГУ «Научно-исследовательский институт экспериментальной медицины СЗО РАМН», Санкт-Петербург197376, ул. Академика Павлова, 12
А А ТОТОЛЯН
ГУ «Научно-исследовательский институт экспериментальной медицины СЗО РАМН», Санкт-Петербургакадемик РАМН 197376, ул. Академика Павлова, 12
Список литературы
- Маниатис Т., Фрич Э., Сэмбрук Дж. Молекулярное клонирование. М., 1984.
- Areschoug Т., Stalhammar-Carlemalm М., Karlsson I. et al. Streptococcal (3 protein has separate binding sites for human factor H and IgA-Fc // J. Biol. Chem. 2002. Vol. 277. № 15. P. 12642-12648.
- Chaussee M.S., Ajdic D., Ferretti J.J. The rgg gene of Stieptococcus pyogenes positively influences extracellular SPE В production // Infect. Immunol. 1999. Vol. 67. №4. P. 1715-1722.
- Chaussee M.A., Callegari E.A., Chaussee M.S. Rgg regulates growth phase-dependent expression of proteins associated with secondary metabolism and stress in Streptococcus pyogenes II J. Bacteriol. 2004. Vol. 186. №21. P. 7091-7099.
- Chaussee M.S., Somerville G.A., Reitzer L. et al. Rgg coordinates virulence factor synthesis and metabolism in Streptococcus pyogenes //J. Bacteriol. 2003. Vol. 185. №20. P. 6016-6024.
- Cummings C.A., Bootsma H.J., Relman D.A. et al. Species- and strain-specific control of a complex, flexible regulon by Bordetella BvgAS // J. Bacteriol. 2006. Vol. 188. №5. P. 1775-1785.
- Cunningham M.W. Pathogenesis of group A streptococcal infections // Clin. Microbiol. Rev. 2000. Vol. 13. №3. P. 470-511.
- Dmitriev A.V., McDowell E.J., Kappeler K.V et al. The Rgg regulator of Streptococcus pyogenes influences the utilization of nonglucose carbohydrates, prophage induction, and expression of the NAD-glycohydrolase virulence operon // J. Bacteriol. 2006. Vol. 188. № 20. P. 7230-7241. 9. Dmitriev A., Yang Y.N., Shen A.D. et al. Adjacent location of ьас gene and two-component regulatory system genes within the putative Streptococcus agalactiae pathogenicity island // Folia Microbiol. 2006. Vol. 51. №3. P. 229-235.
- Facklam R.R., Washington J.A. Streptococcus and related catalase-negative gram-positive cocci // Manual of Clinical Microbiology / edited by A. Balows [et al.]. American Society for Microbiology. 1991. P. 238239.
- Ferretti J.J., McShan W.M., Ajdic D. Complete genome sequence of an M1 strain of Streptococcus pyogenes II Proc. Natl. Acad. Sci. USA. 2001. Vol. 98. № 8. P. 4658-1663.
- Glaser P., Rusniok C, Buchrieser C. et al. Genome sequence of Streptococcus agalactiae, a pathogen causing invasive neonatal disease // Mol. Microbiol. 2002. Vol. 45. №6. P. 1499-1513.
- Heden, L.-O., Frithz E., Lindahl G. Molecular characterization of an IgA receptor from group В streptococci: sequence of the gene, identification of a prolinerich region with unique structure and isolation of N-terminal fragments with IgA-binding capacity // Eur. J. Immunol. 1991. Vol. 21. № 6. P. 1481-1490.
- Hendriksen W.T., SilvaN., Bootsma H.J. Regulation of gene expression in Streptococcus pneumoniae by response regulator 09 is strain dependent // J. Bacteriol. 2007. Vol. 189. № 4. P. 1382-1389.
- Hynes W.L., Tagg J.R. A simple plate assay for detection of group A streptococcus proteinase // J. Microbiol. Methods. 1985. Vol. 4. P. 25-31.
- Keefe G.P. Streptococcus agalactiae mastitis: a review // Can. Vet. J. 1997. Vol. 38. P. 429-437.
- Kreikemeyer В., Mclver K.S., Podbielski A. Virulence factor regulation and regulatory networks in Streptococcus pyogenes and their impact on pathogen-host interactions // Trends Microbiol. 2003. Vol. 11. № 5. P. 224-232.
- Lindahl G., Stalhammar-Carlemalm M., Areschoug T. Surface proteins of Streptococcus agalactiae and related proteins in other bacterial pathogens // Clin. Microbiol. Rev. 2005. Vol. 18. № 1. P. 102-127.
- McShan W.M., Ferretti J.J., Karasawa T. Genome sequence of a nephritogenic and highly transformable M49 strain of Streptococcus pyogenes II J. Bacteriol. 2008. Vol. 190. № 23. P. 7773-7785.
- Qi E, Chen P., Caufield P. W. Purification and biochemical characterization of mutacin I from the group I strain of Streptococcus mutans, CH43, and genetic analysis of mutacin I biosynthesis genes //Appl. Environ. Microbiol. 2000. Vol. 66. № 8. P. 3221-3229.
- Ribardo D.A., Mclver K.S. Defining the Mga regulon: comparative transcriptome analysis reveals both direct and indirect regulation by Mga in the group A streptococcus // Mol. Microbiol. 2006. Vol. 62. № 2. P. 491-508.
- Sanders J.W., Leenhouts K., Burghoorn J. et al. A chloride-inducible acid resistance mechanism in Lactococcus lactis and its regulation // Mol. Microbiol. 1998. Vol. 27. №2. P. 299-310.
- Sitkiewicz I., Musser J.M. Expression microarray and mouse virulence analysis of four conserved two-component gene regulatory systems in group A streptococcus // Infect. Immunol. 2006. Vol. 74. № 2. P. 13391351.
- Skaugen M., Andersen E.L., Christie V.H. et al. Identification, characterization, and expression of a second, bicistronic, operon involved in the production of lactocin S in Lactobacillus sakei L45 // Appl. Environ. Microbiol. 2002. Vol. 68. № 2. P. 720-727.
- Standish A.J., Stroeher U.H., Paton J.C. The pneumococcal two-component signal transduction system RR/ HK06 regulates CbpA and PspA by two distinct mechanisms // J. Bacteriol. 2007. Vol. 189. № 15. P. 55915600.
- Sulavik M.C., Tardif G., Clewell D.B. Identification of a gene, rgg, which regulates expression of glucosyltransferase and influences the Spp phenotype of Streptococcus gordonii Challis // J. Bacteriol. 1992. Vol. 174. № 11. P. 3577-3586.
- Tettelin H., Masignani V, Cieslewicz M.J. et al. Complete genome sequence and comparative genomic analysis of an emerging human pathogen, serotype V Streptococcus agalactiae II Proc. Natl. Acad. Sci. USA. 2002. Vol. 99. № 19. P. 12391-12396.
- Tettelin H., Masignani V, Cieslewicz M.J. et al. Genome analysis of multiple pathogenic isolates of Streptococcus agalactiae: implications for the microbial «pan-genome» // Proc. Natl. Acad. Sci. USA. 2005. Vol. 102. № 39. P. 13950-13955.