Morpholology of immune system of offspring after stimulation of maternal immune system in early pregnancy

Full Text

Развитие и становление иммунной системы в пре- и постнатальном периодах развития зависит от ряда факторов, из которых наименее изученным является воздействие реакции иммунной системы матери на морфогенез органов иммунной защиты плода. Рядом авторов высказывается мнение, что изменения функционального состояния материнского организма во время беременности, обусловленные инфекционными заболеваниями, приемом лекарственных препаратов, могут негативно влиять на развитие иммунной системы потомства [7, 8]. Особый интерес представляют исследования последствий нарушений в иммунной системе матери в ранние сроки беременности до начала формирования органов иммунной системы плода, на развитие иммунной системы потомства в разные сроки постнатального развития. Целью настоящего исследования было изучение морфофункционального состояния тимуса и селезенки потомства мышей, подвергшихся однократному им муностимулирующему воздействию пан Т-клеточным митогеном конканавалином А (КонА) на ранних сроках беременности. Материалы и методы Эксперимент проводили на мышах C57B1/6 в осенне-зимний период. Беременным самкам на 7ые сут. после оплодотворения однократно внутривенно в дозе 5 мг/кг вводили КонА в качестве активатора иммунной системы. Срок введения КонА был выбран с учетом особенностей эмбрионального развития органов иммунной системы. Формирование зачатков тимуса и селезенки происходит на 11сут эмбрионального развития [5]. Таким образом, выбранный срок введения КонА исключал возможность непосредственного воздействия на формирующиеся органы иммунной системы. Объектом исследования было потомство мужского пола (опытная группа, n=8). В качестве контрольной группы использовали самцов мышей (n=7), родившихся от ин-тактных самок. Мышей выводили из эксперимента через 17 сут. после рождения, то 24 Российский медико-биологический вестник имени академика И.П. Павлова, №4, 2013 г. есть после перехода на самостоятельное вскармливание, передозировкой диэтилово-го эфира. Эксперимент проведен в соответствии с правилами проведения работ с использованием экспериментальных животных, утвержденными приказом Минздрава СССР № 577 от 12.08.1977г. На проведение эксперимента получено разрешение этического комитета НИИ морфологии человека РАМН. Проводили гистологическое исследование препаратов селезёнки и тимуса, окрашенных гематоксилином и эозином, методом световой микроскопии и компьютерной морфометрии с помощью программы “ImageScope” (“Leica Microsystems Gmbh”, Австрия). Методом компьютерной морфометрии в гистологических препаратах тимуса определяли соотношение коркового и мозгового вещества, ширину субкапсу-лярного слоя, количество тимических телец в мм2 площади мозгового вещества, стадию их развития по О.В. Зайратьянцу [1] и количество клеток в составе телец. В гистологических препаратах селезенки изучали соотношение белой и красной пульп, строение лимфатических узелков селезенки, ширину маргинальной зоны, количество лейкоцитов в ней, количество гемопоэтических моно-нуклеарных клеток в мм2 площади среза красной пульпы. Статистическую обработку проводили с использованием программы Statistica 7.0 (“Statsoft”, США). Сравнение независимых групп по количественному признаку проводили с помощью критериев Стьюдента, Манна-Уитни. Различия считали значимыми при р<0,05. Результаты и их обсуждение При гистологическом исследовании тимус мышей контрольной группы был представлен двумя крупными долями, снаружи покрыт соединительнотканной капсулой. Субкапсулярный слой был широким (табл.1). Корковое вещество в дольках было хорошо развито и представлено плотно лежащими лимфоцитами (табл.1). В корковом веществе встречались митотически делящиеся клетки. Граница между мозговым и корковым веществом была четкой. В мозговом веществе обнаруживалось большое количество лимфоцитов (табл.1), встречались небольшого размера тимические тельца, как правило состоящие из 3 -4 ретикулоэпите-лиоцитов (табл.1). Большинство тимических телец имели первую и вторую стадии развития (по 42,11±4,08% каждая), то есть представляли собой скопления ретикуло-эпителиоцитов с повышенной оксифилией цитоплазмы и накоплением в ней кератина. Тельца третьей и четвертой стадий развития с образованием полости и некрозом центральной части составляли 7,89±0,75% и 7,89±0,72%, соответственно. Тимус мышей опытной группы также был представлен двумя долями. Относительная масса тимуса соответствовала значениям контрольной группы. Корковое вещество также было хорошо развито и представлено плотно лежащими лимфоцитами (табл.1). Ширина субкапсулярного слоя статистически значимо не отличалась от значений контрольной группы (табл.1). Граница между корковым и мозговым веществом была четкой. Количество лимфоцитов в мозговом веществе было статистически значимо ниже, чем в контрольной группе (р=0,002). В мозговом веществе обнаруживалось большее, чем в контрольной группе, количество тимических телец (р=0,019) (табл.1). Также было повышено и количество клеток в их составе (р=0,037) (табл.1). Наблюдались отличия в соотношениях стадий развития тимических телец. Процентное содержание телец первой стадии не отличалось от значений контрольной группы и составляло в среднем 40,43±3,58%, а количество телец второй стадии развития повысилось до 55,32±4,02%. Тельца третьей и четвертой стадии составляли соответственно по 2,12±0,22 и 2,13±0,25%. Селезенка мышей контрольной группы имела типичное строение. Белая пульпа селезенки была умеренно развита и представлена лимфатическими узелками, часть которых лежала изолированно, а часть сливалась, образуя крупные скопления лимфоидных клеток (табл. 1). Герминативные центры в лимфатических узелках не были сформированы. В некоторых 25 Российский медико-биологический вестник имени академика И.П. Павлова, №4, 2013 г. Таблица 1 Изменения морфометрических показателей тимуса и селезенки потомства мышей С57Б1/6 после однократного введения беременным самкам Кон А, (M±m) Морфометрические показатели Контрольная группа Опытная группа Тимус Доля коркового вещества, % 73,31±3,68 77,34±3,41 Ширина субкапсулярного слоя, мкм 58,48±4,47 53,01±3,58 Кол-во тимических телец/мм2 среза мозгового вещества 10,27±0,53 12,25±0,68* Кол-во клеток в тимическом тельце 3,39±0,18 4,00±0,21* Кол-во лимфоцитов в мм2 среза мозгового вещества 22180,0±818,0 17440,0±668,0* Селезенка Доля белой пульпы, % 26,6±6,83 19,6±4,02 Площадь среза лимфатических узелков селезенки, мкм2 150200,00±34502,39 96486,67±22464,55 Ширина маргинальной зоны, мкм 60,72±3,51 45,55±6,35* Кол-во клеток в мм2 маргинальной зоны 21375,00±781,21 29652,50±868,99* Кол-во клеток в мм2 красной пульпы 24175,00±803,29 27275,00±1076,16* Кол-во мегакариоцитов в мм2 красной пульпы 16,00±2,48 25,50±3,26* * - статистически значимые отличия от контрольной группы. лимфатических узелках начинала формироваться периартериальная зона. Лимфатические узелки имели хорошо выраженную маргинальную зону (табл.1). Количество клеток в мм2 маргинальной зоны было меньше, чем в красной пульпе, которая была обильно заселена клетками (табл.1). Встречались эритроциты, лимфоциты, нейтрофилы, а также большое количество эритро- и миелобластов. В красной пульпе находилось большое количество мегака-риоцитов (табл. 1). Селезенка мышей опытной группы по гистологическому строению соответствовала селезенке мышей контрольной группы. Доля белой пульпы была меньше, но статистически значимо не отличалась от значений контрольной группы (табл.1). Белая пульпа была представлена лимфатическими узелками, часть которых, также как и в контрольной группе, лежала изолированно, а часть сливалась, образуя крупные скопления. Размеры лимфатических узелков были меньше, чем в контрольной группе (табл.1). Периартериаль-ная, герминативная и мантийная зоны в них не различались. Ширина маргинальной зоны была статистически значимо меньшей, чем в контрольной группе (р=0,0064), но количество клеток в ней превышало значения контрольной группы (р=0,0043) (табл. 1). Общее количество клеток в мм2 среза красной пульпы, а также количество мегакариоцитов в ней также статистически значимо превышало значения контрольной группы (табл.1). В красной пульпе преобладали клетки лимфоцитарного ряда, среди них встречалось большое количество бластов. В настоящем исследовании воздействие на иммунную систему матери заключалось в обусловленной Кон А активации лимфоцитов и секреции ими цитокинов -фактора некроза опухоли-α, интерлейкина (ИЛ)-2 и интерферона-γ, в последующем -ИЛ-4 и ИЛ-10 [6]. Активация клеточного звена иммунитета приводит к развитию цитокинового гепатита [2]. При выборе дозы КонА мы руководствовались собственными данными предварительных экспериментов, установив дозу, при которой отмечается повышение синтеза цитокинов, но гепатит у беременной самки не развивается. Полученные данные показали, что однократная кратковременная стимуляция иммунной системы матери на ранних сроках беременности приводит к длительно наблюдаемому изменению 26 Российский медико-биологический вестник имени академика И.П. Павлова, №4, 2013 г. морфофункциональных показателей тимуса потомства. Изменения были связаны с уменьшением количества лимфоцитов в мозговом веществе, где в основном находятся зрелые лимфоциты, а также с увеличением гибели ретикулоэпителия, принимающего непосредственное участие в процессах дифференцировки лимфобластов [3]. Уменьшение количества лимфоцитов в корковом веществе могло быть связано либо с замедлением процессов их созревания, либо с ускоренной миграцией в периферические органы иммунной системы. Увеличение гибели ретикулоэпи-телиоцитов за счет увеличения количества как тимических телец и клеток в их составе, так и увеличения телец в более ранних стадиях развития, возможно, было одной из причин замедления созревания лимфоцитов. Выброс цитокинов, обусловленный введением Кон А в ранние сроки беременности до начала формирования органов иммунной системы плода, приводил к изменению постнатального развития селезёнки, что проявлялось отставанием развития лимфатических узелков - меньшие размеры, несформированность периарте-риальной (Т-зависимой) и маргинальной (кооперативной) зон. Невыраженность периартериальных зон указывала, что наиболее вероятной причиной уменьшения количества лимфоцитов в мозговом веществе тимуса было не усиление миграции, а снижение темпов дифферен-цировки. Селезенка мышей является не только периферическим органом иммунной защиты, но и органом кроветворения, в котором, в отличие от человека, происходит дифференцировка не только клеток лимфоидного, но и гранулоцитарного и эритроцитарного ростков [4]. Гемопоэ-тическая функция селезенки продолжается и на ранних этапах постнатального развития особи. Проведенное исследование показало, что в селезенке мышей опытной группы в возрасте 17 сут отмечались и более интенсивные процессы кроветворения в красной пульпе. Выводы 1. Пренатальное воздействие Т-клеточного митогена конканавалина А на ранних сроках беременности до начала формирования органов иммунной системы у плода приводит к изменению морфофункционального состояния тимуса и селезенки потомства в постнатальном периоде развития. 2. В тимусе происходит увеличение гибели ретикулоэпителия и уменьшение количества лимфоцитов в мозговом веществе. 3. Морфогенетические процессы превращения селезенки из органа кроветворения в орган иммунной защиты у потомства происходят более медленными темпами, что проявляется отставанием формирования лимфатических узелков и более выраженными процессами гемопоэза.

References

Supplementary files