Методы определения ртути в биологических объектах


Цитировать

Полный текст

Открытый доступ Открытый доступ
Доступ закрыт Доступ предоставлен
Доступ закрыт Доступ платный или только для подписчиков

Аннотация

Для обеспечения качества фармацевтической субстанции, а также готовых лекарственных средств в процессе разработки, оптимизации и при смене процесса необходимо тщательно контролировать один из его важнейших показателей - примеси. Ртуть является тяжелым металлом, который может попадать в организм с морепродуктами и гидробионтами, поэтому субстанции, получаемые из продуктов морских биоценозов, могут содержать в качестве примеси ртуть. Важно проводить не только качественный анализ, но и найти эффективный количественный анализ лекарственных препаратов, содержащих ртуть, на всех стадиях производственного процесса. Целью данной работы явился литературный обзор методов определения ртути в биологических объектах. В статье представлены данные по существующим современным методам определения ртути как одного из токсических элементов, содержащихся в субстанциях органического происхождения и источниках фармацевтического производства, в том числе на основе протамина и способных к аккумулированию. Проведенный обзор литературы показал, что для определения содержания примесей ртути в источниках фармацевтического производства используются фармакопейный (экстракционно-фотоколориметрический метод с использованием дитизона), спектрофотометрические (в т.ч. атомноабсорбционная спектрометрия с беспламенной атомизацией - метод «холодного пара»), хроматографические (преимущественно высокоэффективная жидкостная хроматография) и электрохимические (в т.ч. вольтамперометрический анализ) методы.

Полный текст

Доступ закрыт

Об авторах

Надежда Олеговна Ким

Федеральное государственное бюджетное образовательное учреждение высшего образования «Новосибирский медицинский государственный университет» Минздрава России (ФГБОУ ВО НГМУ Минздрава России)

Email: Kim_Nadia@mail.ru
аспирант кафедры фармацевтической химии Российская Федерация, 630091, Новосибирск, ул. Красный проспект, д. 52

Елена Алексеевна Ивановская

Федеральное государственное бюджетное образовательное учреждение высшего образования «Новосибирский медицинский государственный университет» Минздрава России (ФГБОУ ВО НГМУ Минздрава России)

Email: el-ivanovskaja@yandex.ru
зав. кафедрой фармацевтической химии, профессор, доктор фармацевтических наук Российская Федерация, 630091, Новосибирск, ул. Красный проспект, д. 52

Список литературы

  1. Иваненко Н.Б., Соловьев Н.Д., Иваненко А.А., Москвин Л.Н. Определение химических форм микроэлементов в биологических объектах. Аналитика и контроль. 2012; 16 (2): 12-5
  2. Основы аналитической химии. Под ред. Ю.А. Золотова. 5-е изд., стер. М.: Академия, 2012; 2: 409
  3. Barrocas P.R.G., Landing W.M., Hudson R.J.M. Assessment of mercury (II) bioavailability using a bioluminescent bacterial biosensor: Practical and theoretical challenges. J. Environ. Sci. 2010; 22: 1137-43.
  4. Woop M. Optimizing Tethered Particle Motion to Measure DNA Compaction by Protamine. Biophysical J. 2015; 108: 393a.
  5. Shuvaeva O.V., Gustaytis M.A., Anoshin G.N. Mercury speciation in environmental solid samples using thermal release technique with atomic absorption detection. Anal. Chim. Acta. 2008; 621: 148-54.
  6. Дедкова В.П., Швоева О.П., Саввин С.Б. Тест-метод определения ртути (II) дитизоном на твердой фазе волокнистого анионообменника. Журн. аналит. химии. 2004; 59 (4): 429-33.
  7. Спирова С.Н. Исследование содержания примесных элементов (кадмий, свинец, ртуть) в лекарственных средствах и сырье природного происхождения: автореферат дис. ... кандидата фармацевтических наук: 15.00.02. М., 1995; 24
  8. Castillo A., Roig-Navarro A.F., Pozo O.J. Method optimization for the determination of four mercury species by micro-liquid chromatography - inductively coupled plasma mass spectrometry coupling in environmental water samples. Anal. Chim. Acta. 2006; 577: 18-25.
  9. Башилов А. Определение тяжелых металлов в БАДах, лекарственных растениях, биологических жидкостях методами ААС, ИСП-ОЭС, ИСП-МС после микроволновой пробоподготовки. Химический анализ и медицина: сб. тез. I Всерос. конф. с междунар. участием (Москва, 9-12 ноября 2015 г.). М.: КАСКОН, 2015; 6-12.
  10. Алемасова А.С., Рокун А.Н., Шевчук И.А. Аналитическая атомноабсорбционная спектроскопия. Донецк, 2003; 327
  11. Белокаменская А.М., Ребезов М.Б., Мазаев А.Н., Ребезов Я.М., Максимюк Н.Н., Асенова Б.К. Исследование пищевых продуктов и продовольственного сырья на содержание ртути атомно-абсорбционным методом. Молодой ученый. 2013; 10: 98-101. URL https://moluch.ru/archive/57/7967/ (дата обращения: 24.12.2018)
  12. Атомно-абсорбционное определение ртути в объектах окружающей среды и биологических материалах: Сборник методических указаний. М.: Федеральный центр госсанэпиднадзора Минздрава России, 2004; 59
  13. Elzinga E.J., Cirmo A. Application of sequential extractions and X-ray absorption spectroscopy to determine the speciation of chromium in Northern New Jersey marsh soils developed in chromite ore processing residue (COPR). J. Hazard. Mater. 2010; 183: 145-54.
  14. Pesavento M., Alberti G., Biesuz R. Analytical methods for determination of free metal ion concentration, labile species fraction and metal complexation capacity of environmental waters: A review. Anal. Chim. Acta. 2009; 631: 129-41.
  15. Макаренко Н.П., Ганебных Е.В. Пробоподготовка биологического материала для атомно-абсорбционного анализа. Гигиена и санитария. 2007; 3: 71-2.
  16. Zheng J., Shibata Y., Furuta N. Determination of selenoamino acids using two-dimensional ionpair reversed phase chromatography with on-line detection by inductively coupled plasma mass spectrometry. Talanta. 2003; 59: 27-36.
  17. Santos J.S. et al. Determination of organic and inorganic mercury species in water and sediment samples by HPLC on-line coupled with ICP-MS. Talanta. 2009; 80: 207-11.
  18. Vidler D.S. et al. The determination of methylmercury in biological samples by HPLC coupled to ICP-MS detection. Appl. Organometal. Chem. 2007; 21: 303-10.
  19. Кузубова Л.И., Шуваева О.В., Аношин Г.Н. Метилртуть в окружающей среде (распространение, образование в природе, методы определения). Новосибирск: ГПНТБ СО РАН, 2000; 82.
  20. Геворгян А.М., Куницына Ю.А., Пак Э.В., Артыков А.Т. Определение ртути и висмута в водах инверсионной вольтамперометрией. 17 Менделеевский съезд по общ. и прикл. химии, Казань, 21-26 сент. 2003. Т. 1. Пленар. докл. Достиж. и перспект. хим. науки: Тез. докл. Казань, 2003; 222.
  21. Мирошникова Е.Г., Малахова Н.А., Брайнина Х.З., Легоньков В.В., Максимов Ю.Г., Волконский А.Е. Системы для внелабораторного инверсионно-вольтамперометрического анализа. Всеросс. научн. конф. с международным участием «Электроаналитика-2005», Екатеринбург, 23-27 мая 2005: Тез. докл. Екатеринбург, 2005; 105.
  22. Матвейко Н.П., Брайкова А.М., Бушило К.А., Садовский В.В. Инверсионно-вольтамперометрический контроль содержания тяжелых металлов в лекарственном растительном сырье и препаратах на его основе. Вестник витебского государственного технологического университета. 2016; 1 (30): 82-5
  23. Слепченко Г.Б., Мартынюк О.А., Постников П.С., Трусова М.Е., Бондарев А.А., Смирнов И.В., Быстрицкий Е.Л. Новые возможности вольтамперометрического определения фармацевтических препаратов на органомодифицированных электродах. Сибирский медицинский журнал №2'2009; 21-4.
  24. Галимова В. Электрохимический контроль микроколичеств ртути в воде. Вестник Львовского университета. Серия химическая. 2016; 57 (2): 588-92

Дополнительные файлы

Доп. файлы
Действие
1. JATS XML

© ИД "Русский врач", 2020

Данный сайт использует cookie-файлы

Продолжая использовать наш сайт, вы даете согласие на обработку файлов cookie, которые обеспечивают правильную работу сайта.

О куки-файлах