Вторичные метаболиты повилики полевой (Cuscuta campestris Yunck)

Обложка

Цитировать

Полный текст

Открытый доступ Открытый доступ
Доступ закрыт Доступ предоставлен
Доступ закрыт Доступ платный или только для подписчиков

Аннотация

Введение. На Северном Кавказе широко распространена повилика полевая (Cuscuta campestris Yunck.), которая паразитирует в посевах, огородах, цветниках. Основными классами биологически активных веществ паразитов рода Cuscuta L. являются полифенольные соединения.

Цель работы – изучение некоторых вторичных метаболитов стеблей C. campestris, собранной с разных с растений-хозяев.

Материал и методы. Объект исследования – стебли C. campestris, собранные в с. Новкус-Артезиан Нефтекумского района Ставропольского края с верблюжьей колючки обыкновенной (Alhagi pseudalhagi (M. Bieb. ) Desv. ), свёклы обыкновенной (Beta vulgaris L. ), нивяника обыкновенного (Leucanthemum vulgare Lam. ). Определение суммарного содержания антиоксидантов в анализируемых извлечениях проводили на приборе «ЦветЯуза-01-АА» с амперометрическим детектированием. Суммарное содержание фенольных соединений с использованием реактива Фолина–Чокальтеу устанавливали спектрофотометрическим методом на спектрофотометре СФ-102.

Результаты. В извлечениях, исследуемых пробой Шинода с использованием магния, наблюдалось красное окрашивание, обусловленное образованием антоцианидинов, а реакцией с солями железа (III) – жёлто-зелёное. Максимальное содержание суммы фенольных соединений и суммы флавоноидов отмечалось в извлечении из стеблей C. campestris, собранных с A. pseudalhagi, при экстракции 70%-ным спиртом этиловым и составило 10,18±0,47 и 5,71±0,25% соответственно. При определении суммарного содержания антиоксидантов оптимальным экстрагентом являлась вода очищенная: максимальное содержание в водном извлечении, полученном из стеблей C. campestris, собранных с A. pseudalhagi, составило в пересчёте на кверцетин и галловую кислоту 2,02±0,08 и 1,31±0,05 мг/г соответственно.

Выводы. В анализируемых извлечениях выявлены закономерности между природой экстрагента, суммарным содержанием полифенольных соединений и растениями-хозяевами. Обнаружено, что в извлечениях, полученных экстракцией 70%-ным спиртом этиловым из стеблей C. campestris, собранных с A. pseudalhagi, наблюдается максимальное суммарное содержание полифенольных соединений и флавоноидов. Получены сопоставимые результаты при определении суммарного содержания антиоксидантов, флавоноидов в извлечениях из стеблей C. campestris, собранных с B. vulgaris и L. vulgare.

Полный текст

Доступ закрыт

Об авторах

С. Л. Аджиахметова

Пятигорский медико-фармацевтический институт – филиал ВолгГМУ Минздрава России

Автор, ответственный за переписку.
Email: similla503@mail.ru
ORCID iD: 0000-0001-9685-1384

кандидат фармацевтических наук, доцент кафедры органической химии

 

Россия, 357532, г. Пятигорск, пр. Калинина 11

Д. И. Поздняков

Пятигорский медико-фармацевтический институт – филиал ВолгГМУ Минздрава России

Email: pozdniackow.dmitry@yandex.ru
ORCID iD: 0000-0002-5595-8182

кандидат фармацевтических наук, доцент, зав. кафедрой фармакологии с курсом клинической фармакологии

Россия, 357532, г. Пятигорск, пр. Калинина 11

Н. М. Дибижева

Пятигорский медико-фармацевтический институт – филиал ВолгГМУ Минздрава России

Email: nadezhda.chervonnaya@yandex.ru
ORCID iD: 0000-0001-6924-8563

кандидат фармацевтических наук, доцент кафедры органической химии

 

Россия, 357532, г. Пятигорск, пр. Калинина 11

Э. Т. Оганесян

Пятигорский медико-фармацевтический институт – филиал ВолгГМУ Минздрава России

Email: edwardov@mail.ru
ORCID iD: 0000-0002-2756-9382

доктор фармацевтических наук, профессор, зав. кафедрой органической химии

Россия, 357532, г. Пятигорск, пр. Калинина 11

Список литературы

  1. Иванов А. Л. Флора Предкавказья и её генезис. Ставрополь: Изд-во СГУ, 1998; 290.
  2. Баздырев Г. И. Сорные растения и меры борьбы с ними в современном земледелии: Учебное пособие для вузов. М. : Изд-во МСХА, 1993; 123–125.
  3. Никитичева З. И. Семейство повиликовые (Cuscutaceae). Жизнь растений. Цветковые растения. Под ред. А. Л. Тахтаджяна. М. : Просвещение, 1981; 5(2): 389–390.
  4. Saini P., Mithal R., Menghani E. A parasitic medicinal plant Cuscuta reflexa: an overview. Int. J. Sci. Eng. Res. 2015; 69(12): 951–959.
  5. Mescher M. C., Runyon J. B., De Moraes C. M. Plant host finding by parasitic plants: a new perspective on plant to plant communication. Plant Signal Behav. 2006; 1(6): 284–286. DOI: 10. 4161/psb. 1. 6. 3562.
  6. Леусова Н. Ю. Особенности экологии растений-паразитов на примере повилики японской (Cuscuta japonica Choisy): автореф. дисс. … канд. биологич. наук. Благовещенск, 2006: 28.
  7. Chabra A., Monadi T., Azadbakht M. et al. Ethnopharmacology of Cuscuta epithymum: A comprehensive review on ethnobotany, phytochemistry, pharmacology and toxicity. J Ethnopharmacol. 2019; 231: 555–569. DOI: 10. 1016/j. jep. 2018. 10. 016.
  8. Москаленко Г. П. Карантинные сорные растения России. 2001. 278.
  9. Noureen S., Noreen S., Ghumman S. A. et al. The genus Cuscuta (Convolvolaceae): An updated review on indigenous uses, phytochemistry, and pharmacology. Iran J Basic Med Sci. 2019; 22(11): 1225–1252. DOI: 10. 22038/ijbms. 2019. 35296. 8407.
  10. Федина П. А., Яшин А. Я., Черноусова Н. И. Определение антиоксидантов в продуктах растительного происхождения амперометрическим методом. Химия растительного сырья. 2010; 2: 91–97.
  11. Сажина Н. Н. Определение антиоксидантной активности различных биоантиоксидантов и их смесей амперометрическим методом. Химия растительного сырья. 2016; 4: 71–76.
  12. Тринеева О. В. Методы определения антиоксидантной активности объектов растительного и синтетического происхождения в фармации (обзор) Раздел: Аналитические методики и методы контроля. Разработка и регистрация лекарственных средств. 2017; 4(21): 180–197.
  13. Аджиахметова С. Л. Антиоксидантная активность экстрактов из листьев, плодов и стеблей крыжовника отклоненного (Grossularia reclinata (L.) Mill.) [Электронный ресурс]. Фундаментальные исследования. 2013; 10(6): 1297–1301. Http://www. rae.ru/fs/pdf/2013/10-6/32535.
  14. Аджиахметова С. Л., Червонная Н. М., Поздняков Д. И. и др. Содержание фенолов (в том числе флавоноидов) и антиоксидантов в листьях Viscum album L. и Pyrus communis L. Вопросы биологической, медицинской и фармацевтической химии. 2021; 24(2): 15–22.
  15. Леонова В. Н., Попов И. В., Попова О. И. и др. Количественное определение суммы фенольных соединений в плодах Rhus typhina (L.). Химия растительного сырья. 2019; 1: 225–232.
  16. Корулькин Д. Ю. и др. Природные флавоноиды. Новосибирск: Гео, 2007. 232.
  17. Государственная фармакопея РФ. ХIV изд. М. : МЗ РФ, 2018; 2,4: 3262. 7013. [Электронный ресурс]. URL: http://http://femb.ru/femb/pharmacopea. php
  18. Темирбулатова А. М., Пилищук В. В., Куличенко Е. О. Изучение химического состава щавеля конского – Rumex confertus WILLD. Актуальные научные исследования в современном мире. 2020; 5-9(61): 130–135.
  19. Сорокопудов В. Н., Лучина Н. А., Мостовой О. А. Антиоксидантные свойства видов малины. Научные ведомости БелГУ. Серия: Медицина. Фармация. 2011; 4(99)13/2: 196–198.
  20. Федосеева А. А., Лебедкова О. С., Каниболоцкая Л. В. Антиоксидантная активность настоев чая. Химия растительного сырья. 2008; 3: 123–127.

Дополнительные файлы

Доп. файлы
Действие
1. JATS XML
Скачать
2. Рис. 1. УФ-спектры поглощения комплексов извлечений, полученных экстракцией 90% (1), 70% (2), 50% (3) спиртом этиловым и водой очищенной (4), из стеблей C. campestris, собранных с A. pseudalhagi (а), B. vulgaris (б), L. vulgare (в) с реактивом Фолина–Чокальтеу

Скачать (105KB)
Метаданные
3. Рис. 2. УФ-спектры поглощения комплексов извлечений, полученных экстракцией 90% (1), 70% (2), 50% (3) спиртом этиловым и водой очищенной (4), из стеблей C. campestris., собранных с A. pseudalhagi (а), B. vulgaris (б), L. vulgare (в), с 2%-ным спиртовым раствором алюминия хлорида

Скачать (99KB)
Метаданные

© ИД "Русский врач", 2024