Оценка степени карбонилирования белков митохондрий у крыс при модуляции синтеза NO, гипоксии и ее коррекции сукцинатом

Обложка

Цитировать

Полный текст

Открытый доступ Открытый доступ
Доступ закрыт Доступ предоставлен
Доступ закрыт Доступ платный или только для подписчиков

Аннотация

Введение. Карбонилирование, как вариант окислительной модификации белков, служит показателем повреждения тканей при окислительном стрессе, в том числе вызванным гипоксией. Некоторые регуляторы метаболического ответа на дефицит кислорода, такие как донор NO аргинин и метаболит митохондрий сукцинат, также способны оказывать влияние на модуляцию антиоксидантной защиты клетки и окислительный стресс.

Цель исследования – оценка влияния аргинина и сукцината в комплексе на степень карбонилирования белков и антиоксидантный статус при гипоксии.

Материал и методы. В исследование включены 40 крыс Wistar, разделённые на 5 групп (n=8): животные, подвергшиеся нормобарической хронической гипоксии при содержании в гермокамере до снижения уровня кислорода до 10% один раз в день в течение 14 дней (1); получавшие аргинин в дозе 500 мг/кг массы тела животного в сутки на протяжении 10 дней (2); сукцинат в дозе 100 мг/кг массы тела животного в сутки на протяжении 14 дней (3); получавшие аргинин и сукцинат (4); подвергшиеся гипоксии и получавшие аргинин и сукцинат (5). В митохондриях семенных пузырьков и эпидидимиса оценивали активность супероксиддисмутазы по торможению реакции кверцетином, степень карбонилирования белков по реакции с 2,4-динитрофенолгидразином из чего рассчитывали резервно-адаптационный окислительной модификации белков потенциал. Для статистического анализа использовали критерий Манна–Уитни.

Результаты. сочетание аргинина и сукцината приводило к повышению степени карбонилирования белков и снижению резервно-адаптационный окислительной модификации белков митохондрий семенных пузырьков и эпидидимиса, при этом активности супероксиддисмутазы оставалась на уровне группы 2, что ниже, чем в группе 3. Комплексное воздействие изучаемых метаболитов при гипоксии оказывало протективное действие на белки митохондрий, снижая степень их окислительной модификации, что в особенности справедливо для белков митохондрий головки эпидидимиса. 

Выводы. В условиях физиологического синтеза NO сукцинат способствует поддержанию активности супероксиддисмутазы, что не проявляется при гипоксия-подобных состояниях. Активация синтеза NO аргинином в комплексе в сукцинатом является эффективным способом коррекции окислительной модификации белков митохондрий при гипоксии.

Полный текст

Доступ закрыт

Об авторах

Ю. А. Марсянова

ФГБОУ ВО «Рязанский государственный медицинский университет имени академика И.П. Павлова» Министерства здравоохранения Российской Федерации

Автор, ответственный за переписку.
Email: yuliyamarsyanova@yahoo.com
ORCID iD: 0000-0003-4948-4504
SPIN-код: 4075-3169

ассистент кафедры биологической химии

Россия, 390026, г. Рязань, ул. Высоковольтная, д. 9

В. И. Звягина

ФГБОУ ВО «Рязанский государственный медицинский университет имени академика И.П. Павлова» Министерства здравоохранения Российской Федерации

Email: vizvyagina@yandex.ru
ORCID iD: 0000-0003-2800-5789
SPIN-код: 7553-8641

д.м.н., доцент кафедры биологической химии

Россия, 390026, г. Рязань, ул. Высоковольтная, д. 9

Э. С. Бельских

ФГБОУ ВО «Рязанский государственный медицинский университет имени академика И.П. Павлова» Министерства здравоохранения Российской Федерации

Email: ed.bels@yandex.ru
ORCID iD: 0000-0003-1803-0542
SPIN-код: 9350-9360

к.м.н., доцент кафедры факультетской терапии имени профессора В.Я. Гармаша

Россия, 390026, г. Рязань, ул. Высоковольтная, д. 9

К. О. Лебогов

ФГБОУ ВО «Рязанский государственный медицинский университет имени академика И.П. Павлова» Министерства здравоохранения Российской Федерации

Email: k.lebogov@mail.ru
ORCID iD: 0009-0004-1419-2100

студент лечебного факультета

Россия, 390026, г. Рязань, ул. Высоковольтная, д. 9

В. Р. Андрианов

ФГБОУ ВО «Рязанский государственный медицинский университет имени академика И.П. Павлова» Министерства здравоохранения Российской Федерации

Email: vladic.a@mail.ru
ORCID iD: 0009-0000-3166-4801

студент лечебного факультета

Россия, 390026, г. Рязань, ул. Высоковольтная, д. 9

О. Ш. Хусаинов

ФГБОУ ВО «Рязанский государственный медицинский университет имени академика И.П. Павлова» Министерства здравоохранения Российской Федерации

Email: okhusainov@04mail.ru
ORCID iD: 0009-0008-0589-2817

студент лечебного факультета

Россия, 390026, г. Рязань, ул. Высоковольтная, д. 9

Список литературы

  1. Turrens J.F. Mitochondrial formation of reactive oxygen species. The Journal of Physiology. 2003; 552(2): 335–344. doi: 10.1113/jphysiol.2003.049478.
  2. Wu P.Y., Scarlata E., O’Flaherty C. Long-term adverse effects of oxidative stress on rat epididymis and spermatozoa. Antioxidants. 2020; 9(2): 170. doi: 10.3390/antiox9020170.
  3. Nourani M.R., Kalantari Hesari А., Shahrooz R. et al. Effect of sodium cyanide-induced tissue hypoxia on reproductive capability of male mice and the protective effect of ethyl pyruvate. Archives of Razi. 2021; 76(2): 323-333.
  4. Hadrava Vanova K., Kraus M., Neuzil J., Rohlena J. Mitochondrial complex II and reactive oxygen species in disease and therapy. Redox Report. 2020; 25(1): 26–32. doi: 10.1080/13510002.2020.1752002.
  5. Tejero J., Shiva S., Gladwin M.T. Sources of Vascular Nitric Oxide and Reactive Oxygen Species and Their Regulation. Physiological Reviews. 2019; 99(1): 311–379. doi: 10.1152/physrev.00036.2017.
  6. Космачевская О.В., Насыбуллина Э.И., Шумаев К.Б. и др. Влияние комплексов железа с оксидом азота на реакционную способность цистеинов гемоглобина. Прикладная биохимия и микробиология. 2020; 56(5): 436–445. doi: 10.31857/S0555109920050098.
  7. Марсянова, Ю.А., Звягина А.В., Петров В.И. Анализ окислительной модификации белков митохондрий эпидидимиса крыс при нормобарической хронической гипоксии и модуляции синтеза оксида азота (II). Казанский медицинский журнал. 2022; 103(6): 976–985. doi: 10.31857/S0044452922020097.
  8. Zeng F.S., Yao Y.F., Wang L.F. et al. Polysaccharides as antioxidants and prooxidants in managing the double-edged sword of reactive oxygen species. Biomedicine & Pharmacotherapy. 2023; 159: 114221. doi: 10.1016/j.biopha.2023.114221.
  9. Demicheli V., Moreno D.M., Jara G.T. et al. Mechanism of the reaction of human manganese superoxide dismutase with peroxynitrite: Nitration of critical tyrosine 34. Biochemistry. 2016; 55(24): 3403–3417. doi: 10.1021/acs.bio-chem.6b00045.
  10. Zhao X., Cai A., Peng Z. et al. Js‐K induces reactive oxygen species‐dependent anti‐cancer effects by targeting mito-chondria respiratory chain complexes in gastric cancer. Journal of Cellular and Molecular Medicine. 2019; 23(4): 2489–2504. doi: 10.1111/jcmm.141224.
  11. Arnold P.K., Finley L.W.S. Regulation and function of the mammalian tricarboxylic acid cycle. Journal of Biological Chemistry. 2023;2 99(2): 102838. doi: 10.1016/j.jbc.2022.102838.
  12. Wierońska J.M., Cieślik P., Kalinowski L. Nitric oxide-dependent pathways as critical factors in the consequences and recovery after brain ischemic hypoxia. Biomolecules. 2021; 11(8): 1097. doi: 10.3390/biom11081097.
  13. Hawkins C.L., Davies M.J. Detection, identification, and quantification of oxidative protein modifications. Journal of Biological Chemistry. 2019; 294(51): 19683–19708. doi: 10.1074/jbc.rev119.006217.
  14. Varesi A., Chirumbolo S., Campagnoli L.I.M. et al. The role of antioxidants in the interplay between oxidative stress and senescence. Antioxidants. 2022; 11(7): 1224. doi: 10.3390/antiox11071224.
  15. Wetzelberger K., Baba S.P., Thirunavukkarasu M. et al. Postischemic deactivation of cardiac aldose reductase. Journal of Biological Chemistry. 2010; 285(34): 26135–26148. doi: 10.1074/jbc.m110.146423.
  16. Chouchani E.T., Methner C., Nadtochiy S.M. et al. Cardioprotection by S-nitrosation of a cysteine switch on Mitochondrial Complex I. Nature Medicine. 2013; 19(6): 753–759. doi: 10.1038/nm.3212.
  17. Марсянова Ю.А., Звягина В.И., Сучкова О.Н. Способ моделирования нормобарической хронической гипоксии у крыс самцов сток WISTAR. Наука молодых (Eruditio Juvenium). 2022; 10(2): 147–156. doi: 10.17116/profmed20202308137.
  18. Марсянова Ю.А., Звягина В.И. Влияние сукцината на некоторые показатели биоэнергетического обмена в семенных пузырьках и эпидидимисе у самцов крыс в условиях хронической гипоксии. Вопросы биологической, медицинской и фармацевтической химии. 2021; 24(2): 49–54]. doi: 10.1164/rccm.201302-03020C.
  19. Марсянова Ю.А., Звягина В.И. Гипоксия-подобный эффект L-аргинина в семенных пузырьках и эпидидимисе крыс. Российский медико-биологический вестник имени академика И. П. Павлова. 2023; 31(3): 345–356. doi: 10.1161/01.CIR.0000092948.04444.C7.
  20. Lin Z.F., Xu H.B., Wang J.Y. et al. SIRT5 desuccinylates and activates SOD1 to eliminate Ros. Biochemical and Biophysical Research Communications. 2013; 441(1): 191–195. doi: 10.1016/j.bbrc.2013.10.033.

Дополнительные файлы

Доп. файлы
Действие
1. JATS XML
2. Рис. 1. Сравнение изменения резервно-адаптационного потенциала окислительной модификации белков митохондрий (РАП) при моделировании нормобарической хронической гипоксии (НХГ) и назначении L-аргинина и сукцината

Скачать (250KB)
3. Рис. 2. Активность супероксиддисмутазы при моделировании нормобарической хронической гипоксии и назначении L-аргинина и сукцината

Скачать (201KB)

© ИД "Русский врач", 2025