Роль органических комплексов минеральных элементов в метаболизме рубца жвачных

Обложка

Цитировать

Полный текст

Открытый доступ Открытый доступ
Доступ закрыт Доступ предоставлен
Доступ закрыт Доступ платный или только для подписчиков

Аннотация

Введение. Микроэлементы требуются организму в ничтожно малых количествах, в частности для жвачных животных от 0,10 до 50,0 мг на килограмм сухого вещества (СВ) в рационе. Микроэлементы необходимы для биохимических процессов организма, которые поддерживают нормальное состояние метаболизма в организме, способствуют сохранению здоровья и увеличению продуктивности. Обеспечение достаточного количества минералов является особенно сложной задачей, поскольку потребности в большинстве минералов не постоянны, а зависят от физиологических факторов, включая генетику, возраст, пол, тип производства и уровень производства, а также зависит от состава и качества рациона.

Цель работы – изучить влияние органических форм минеральных добавок на метаболизм и степень переваримости СВ кормового субстрата в рубце.

Материал и методы. Для реализации поставленных задач сформированы 4 образца – контрольный и 3 опытные (I, II, III), представленные пшеничными отрубями. Перед инкубированием, в рабочие ёмкости с опытными образцами вносили комплексы минеральных веществ: I – Co+Fe; II – Se+Zn; III – Cu. В качестве минеральных препаратов использовали: биоплекс меди – 10 мг/кг СВ (Alltech, Сербия), биоплекс цинка – 140 мг/кг СВ (Alltech, 54 Ltd, Ирландия); селен-плекс – 0,1 мг/кг СВ (Alltech flanders BVBA, Бельгия); хлорид кобальта – 0,1 мг/кг СВ (ООО «НПК «Асконт+», Московская область, Россия); хелат железа – 50 мг/кг СВ (GLS PHARMACEUTICALS, Москва, Россия). Исследования переваримости СВ исследуемого кормового субстрата производили методом in vitro по специализированной методике.Уровень летучих жирных кислот (ЛЖК) в содержимом рубца определяли методом газовой хроматографии на хроматографе газовом «Кристаллюкс-4000М», определение форм азота осуществляли по ГОСТ 26180–84.

Результаты. Выявлено, что использование Cu, Co+Fe, Se+Zn способствует увеличению переваримости СВ кормового субстрата на 1,0–2,4% (р ≤ 0,05), повышению концентрации азота в рубцовой жидкости и поддержанию рН на уровне 6,7–6,8.

Выводы. Использование различных комплексов минералов в кормлении жвачных животных способствует изменению течения метаболических процессов в рубце.

Полный текст

Доступ закрыт

Об авторах

Е. В. Шейда

Федеральный научный центр биологических систем и агротехнологий Российской академии наук; Оренбургский государственный университет

Автор, ответственный за переписку.
Email: elena-shejjda@mail.ru
ORCID iD: 0000-0002-2586-613X

д.б.н., ст. науч. сотрудник

Россия, Оренбург; Оренбург

Г. К. Дускаев

Федеральный научный центр биологических систем и агротехнологий Российской академии наук

Email: gduskaev@mail.ru
ORCID iD: 0000-0002-9015-8367

д.б.н., гл. науч. сотрудник

Россия, Оренбург

С. А. Мирошников

Федеральный научный центр биологических систем и агротехнологий Российской академии наук

Email: sergey_ru01@mail.ru
ORCID iD: 0000-0003-1173-1952

д.б.н., гл. науч. сотрудник

Россия, Оренбург

И. С. Мирошников

Федеральный научный центр биологических систем и агротехнологий Российской академии наук

Email: sparco911@rambler.ru
ORCID iD: 0000-0002-0190-0612

к.с-х.н., науч. сотрудник

Россия, Оренбург

О. В. Кван

Федеральный научный центр биологических систем и агротехнологий Российской академии наук

Email: kwan111@yandex.ru
ORCID iD: 0000-0003-0561-7002

к.б.н., зав. отделом

Россия, Оренбург

Список литературы

  1. Elhashmi Y. Hilal, Mohamed A.E. Elkhairey, Ayman O.A. Osman. The Role of Zinc, Manganse and Copper in Rumen Metabolism and Immune Function: A Review Article Open Journal of Animal Sciences. 2016; 6: 304–324; http://www.scirp.org/journal/ojas.
  2. NRC: Nutrient Requirements for Dairy Cattle. 7th Revised Edition, National Acade-my Press, Washington DC. 2001.
  3. Underwood E.J., Suttle N. The Mineral Nutrition of Livestock. 3rd Edition, CABI Publishing, Wallingford. 2001.
  4. Haile E., Njonge F.K., Asgedom G., Gicheha M. Chemical Composition and Nutritive Value of Agro-Industrial By-Products in Ruminant Nutrition. Open Journal of Animal Sciences. 2016; 7(1). doi: 10.4236/ojas.2017.71002.
  5. Lean I., Golder H. Pasture Minerals for Dairy Cattle. The Veterinary clinics of North America. Food animal practice. 2023; 39. 10.1016/j.cvfa.2023.05.003.
  6. Song Y., Weng Y., Liu S., et al. Effects of reduced levels of organic trace minerals in proteinate forms and selenium yeast in the mineral mix on lactation performance, milk fatty acid composition, nutrient digestibility, and antioxidant status in dairy goats. J Anim Sci. 2024 Jan 3; 102: skae187. doi: 10.1093/jas/skae187.
  7. Ammerman C.B. Methods for Estimation of Mineral Bioavailability. In: Ammerman C.B., Baker D.H. and Lewis A.J., Eds. Bioavailability of Nutrients for Animals: Amino Acids, Minerals, and Vitamins, Academic Press, Pittsburgh. 1995; 83–94; http://dx.doi.org/10.1016/B978-012056250-3/50031-7.
  8. Byrne L., Murphy R. Relative Bioavailability of Trace Minerals in Production Animal Nutrition: A Review. Animals. 2022; 12: 1981. doi: 10.3390/ani12151981.
  9. Muiño R., Castillo C., Hernández J., et al. Association between serum mineral levels and reproductive performance in primiparous dairy cows during the peripartum period. Reproduction in Domestic Animals. 2024 May; 59(5): e14578. doi: 10.1111/rda.14578.
  10. Ianni A., Innosa D., Martino C., et al. Zinc supplementation of Friesian cows: Effect on chemical-nutritional composition and aromatic profile of dairy products. Journal of Dairy Science. 2019; 102(4): 2918–2927; https://doi.org/10.3168/jds.2018-15868.
  11. Cheek R., Kegley E., Russell J., et al. Supplemental trace minerals as complexed or inorganic sources for beef cattle during the receiving period. Journal of Animal Science. 2024; 102. doi: 10.1093/jas/skae056.
  12. Liu C., Li X.H., Chen Y.X., et al. Age-Related Response of Rumen Microbiota to Mineral Salt and Effects of Their Interactions on Enteric Methane Emissions in Cattle. Microb Ecol. 2017 Apr; 73(3): 590–601. doi: 10.1007/s00248-016-0888-4.
  13. Petrič D., Mikulová K., Bombárová A., et al. Efficacy of zinc nanoparticle supplementation on ruminal environment in lambs. BMC Vet Res. 2024 Sep 21; 20(1): 425. doi: 10.1186/s12917-024-04281-8.
  14. Pal R.P., Mani V., Mir S.H., et al. Comparative effect of zinc supplementation by hydroxy and inorganic sources on nutrient utilisation, mineral balance, growth performance and growth biomarkers in pre-ruminant calves. Arch Anim Nutr. 2021 Dec; 75(6): 435–449. doi: 10.1080/1745039X.2021.2007692.
  15. Osorio-Doblado A.M., Feldmann K.P., Lourenco J.M., et al. Forages and pastures symposium: forage biodegradation: advances in ruminal microbial ecology. J Anim Sci. 2023 Jan 3; 101: skad178. doi: 10.1093/jas/skad178.
  16. López-Alonso M., Miranda M. Copper Supplementation, A Challenge in Cattle. Animals (Basel). 2020 Oct 15; 10(10): 1890. doi: 10.3390/ani10101890.
  17. Henderson J.A., Niedermayer-Conway E.K., Hansen S.L. Determination of relative bioavailability of copper from copper glycinate in growing beef steers. Transl Anim Sci. 2024 Jul 12; 8: txae105. doi: 10.1093/tas/txae105.
  18. Martínez-Fernández G., Abecia L., Arco A., et al. Effects of ethyl-3-nitrooxy propionate and 3-nitrooxypropanol on ruminal fermentation, microbial abundance, and methane emissions in sheep. J Dairy Sci. 2014; 97(6): 3790–3799. doi: 10.3168/jds.2013-7398.
  19. Hernández-Sánchez D., Cervantes-Gómez D., Ramírez-Bribiesca J.E., et al. The influence of copper levels on in vitro ruminal fermentation, bacterial growth and methane production. J Sci Food Agric. 2019 Feb; 99(3): 1073–1077. doi: 10.1002/jsfa.9274.
  20. Zhang R., Wei M., Zhou J., et al. Effects of organic trace minerals chelated with oligosaccharides on growth performance, blood parameters, slaughter performance and meat quality in sheep. Front Vet Sci. 2024 Mar 21; 11: 1366314. doi: 10.3389/fvets.2024.1366314.
  21. Thorndyke M.P., Guimaraes O., Kistner M.J., et al. Influence of Molybdenum in Drinking Water or Feed on Copper Metabolism in Cattle-A Review. Animals (Basel). 2021 Jul 13; 11(7): 2083. doi: 10.3390/ani11072083.
  22. Ryazanov V., Duskaev G., Sheida E., et al. Rumen fermentation, methane concentration, and blood metabolites of cattle receiving dietetical phytobiotic and cobalt (II) chloride. Vet World. 2022 Nov; 15(11): 2551–2557. doi: 10.14202/vetworld.2022.2551-2557.

Дополнительные файлы

Доп. файлы
Действие
1. JATS XML
Скачать
2. Рис. 1. Переваримость сухого вещества

Скачать (50KB)
Метаданные
3. Рис. 2. Концентрация летучих жирных кислот в рубцовом содержимом при ферментации конопляного жмыха; * – р≤0,05; ** – р≤0,01 при сравнении с контрольным образцом

Скачать (79KB)
Метаданные

© ИД "Русский врач", 2024