Использование оптической когерентной томографии в диагностике поражений глаз газовым оружием самообороны

Полный текст

Введение. Ирританты активно применяются как при проведении так называемых «полицейских операций», целью которых является разгон агрессивно протекающих митингов и демонстраций, так и в целях самообороны [12-14]. В качестве ирритантов в настоящее время используются олеорезин капсоицин (ОС) и его синтетические аналоги (морфолид пеларгоновой кислоты (МПК) и прочие) отдельно или в комбинациях с ортохлорбензилоиденмалоно-динитрилом (CS). Данные действующие вещества в регламентируемых концентрациях оказывают раздражающее действие на слизистые и кожные покровы при минимальных системных проявлениях. Это обусловлено тем, что ирританты обладают высокой избирательностью в действии на чувствительные нервные окончания роговицы, а их непосредственные растворители вызывают поражение по типу кислотного ожога. Таким образом, они вызывают выраженный роговичный синдром и, как правило, поверхностные поражения переднего отрезка глаза, при этом позволяя добиться поставленных целей [1, 7].

В отечественной офтальмологической научно-медицинской литературе поражения ирритантами описаны лишь в работах Р.А. Гундоровой [ 2-5], В.В. Бржеского [7] и их учеников более 10 лет назад, а описания случаев поражений органа зрения олеорезином капсоицином в отечественной научной литературе нами не обнаружено.

При диагностике поражений используется визометрия, биомикроскопия, окрашивание роговицы флюоресцином, определение чувствительности роговицы и оценка слезопродукции.

Использование оптической когерентной томографии (ОКТ) в офтальмологии позволяет выполнить прижизненное изучение структуры роговицы, а также объективизировать изменения, происходящие на фоне травм и заболеваний с регистрацией результатов и возможностью проводить ретроспективный анализ [6, 8, 11]. Однако в отечественной научно-медицинской литературе мы не выявили описания ОКТ переднего отрезка глаза при поражениях глаза ирритантами, а в зарубежных источниках описываются лишь отдельные клинические случаи использования данной методики при химических ожогах глаз [9, 10].

Цель исследования. Обосновать информативность ОКТ при поражениях глаз композицией ирритантов (морфолид пеларгоновой кислоты в комбинации с ортохлорбензилоиденмалонодинитрилом (CS)) на фоне проводимой терапии в виде инстилляций раствором макситрола.

Задачи исследования:

1. Исследовать возможности диагностики поражений роговицы глаз лабораторных животных газовым оружием самообороны с помощью ОКТ переднего отрезка.
2. Сопоставить ОК-томограммы изменений роговицы кролика с клинической картиной и патоморфологическими исследованиями при поражениях газовым оружием.
3. Оценить динамику ОКТ-признаков, клинических и патоморфологических изменений роговицы на фоне проводимой терапии.

Материалы и методы. Исследование проведено на 6 офтальмологически здоровых кроликах (самцы) породы «Шиншилла» массой 3500-4700 гр (12 глаз). Выполнялось моделирование поражения глаз, сопоставимое с поражением после прямого попадания струи аэрозольного распылителя газового оружия самообороны в открытый глаз. Состав заряда: 140 мг МПК + 200 мг CS + 25 мл растворителя (изопропиловый спирт, этиленгликоль). Поражение осуществлялось путём инстилляции раствора действующего вещества в объеме 0,2 мл в конъюнктивальную полость. Данный объем позволяет нанести травму, сопоставимую с реальным поражением глаз.

Введение поражающего агента выполнялось с учетом всех требований безопасности проведения испытаний в лаборатории газового оружия Института токсикологии Федерального медико-биологического агентства России: использование вытяжного шкафа, защитной одежды, перчаток, шприцев для набора растворов ирритантов. Через 2 ч после нанесенной травмы проводились инстилляции раствора макситрола (частота закапывания 3 раза в сутки).

ОКТ лабораторным животным проводилась на аппарате «Optopol SOCT Copernicus» фирмы «Revo» (Польша) на кафедре офтальмологии Военно-медицинской академии им. С.М. Кирова.

Наблюдение за структурными изменениями проводили до травмы, через 2 ч, 3 дня, 1,2, 3 и 4 недели после поражения газовым оружием самообороны.

Результаты и их обсуждение. Непосредственно после поражения наблюдалось резкое появление отечности конъюнктивы (хемоз, в одном случае отёчная конъюнктива выступала за свободный край век), эрозий, выраженное расширение сосудов слизистой. На фоне проводимой терапии через неделю хемоз значительно уменьшался, но фиксировались очаги прокрашивания лиссаминовым зеленым в конъюнктивальных сводах и сохранялась гиперемия. К концу 2 недели на фоне лечения все изменения были купированы без каких-либо рубцовых или дистрофических последствий. Изменений глубжележащих структур не отмечалось.

Через 2 ч после травмы отмечалось стремительное нарастание отека эпителия роговицы с признаками десквамации (рис. 1). К 3-м суткам отмечается развитие тотальной деэпителизации роговицы. В конце первой недели отмечалось восстановление эпителия роговицы с сохранением единичных очагов прокрашивания при окраске флюоресцеином. После 2-й недели патологических изменений эпителия не отмечалось (рис. 2).

 

Рис. 1. Роговица глаза через 1 неделю после поражения. Передний эпителий роговицы с небольшим участком отслойки от передней пограничной пластинки (боуменовой мембраны).

 

Рис. 2. Роговица глаза через 2 недели после поражения. Передний эпителий роговицы без признаков отслойки от передней пограничной пластинки (боуменовой мембраны).

 

Через 2 ч отмечалось увеличение отечности стромы роговицы с 370,91±7,12 до 455,83±11,56 мкм (p<0,05). К 3-м суткам отечность стромы продолжала нарастать, достигнув 521,82±17,02 мкм. Через 1 неделю отёчность стромы роговицы начала уменьшаться (516,44±23,4 мкм). К концу второй недели толщина роговицы возвратилась к исходным показателям. При этом уменьшение отечности роговицы протекало на фоне восстановления её эпителиального слоя. Далее показатели толщины роговицы были стабильны и оставались такими на протяжении всего исследования.

При ОКТ во всех исследуемых глазах (двух глазах через 2 ч после травмы и в 10 глазах на третьи сутки после травмы), зарегистрированы 2 типа дополнительных структурных изменений в строме роговицы: в виде распространенного гиперрефлективного сигнала от передней стромы роговицы (3 глаза - рисунок 3) и узкого линейного участка с выраженным гиперрефлективным сигналом в строме в виде демаркационной линии (9 глаз), рисунок 4.

 

Рис. 3. Гиперрефлективный сигнал от передней стромы роговицы при ОКТ-исследовании роговицы демаркационной линии при ОКТ-исследовании роговицы.

 

Рис. 4. Линейный гиперрефлективный сигнал в виде демаркационной линии при ОКТ-исследовании роговицы.

 

В тех случаях, когда при ОКТ-исследовании на фоне проводимой терапии выявлялся гиперрефлективный сигнал от передней стромы роговицы, наблюдалось изменение толщины сигнала (табл. 1).

 

Таблица 1

Изменения толщины гиперрефлективного сигнала передней стромы роговицы кролика после её поражения раствором композиции ирритантов

Показатель	3-и сутки	1-я неделя	2-я неделя
Толщина зоны гиперрефлективного сигнала от передней стромы роговицы, мкм	170±7,64	132,5±7,14	110±8,15
Толщина роговицы, мкм	521,72±17,02	516,44±23,40	333,75±4,31

 

До 2 недель после травмы на патоморфологических срезах роговицы в поверхностных слоях наблюдаются и изменения ядер клеток стромы в виде набухания в ранние сроки после травмы (3 дня), пикнотичные изменения ядер спустя 1 неделю (рис. 5). Через две недели патологические изменения стромы не определяются.

 

Рис. 5. Диффузное расположение лимфоцитов в поверхностных отделах собственного вещества роговицы.

 

При стандартной окраске гематоксилин-эозином при обоих видах изменений ОКТ патоморфологическая картина остаётся однотипной. При ОКТ-исследованиях изменений эндотелия не выявлено. При этом патоморфологические исследования указывают на наличие структурных изменений с течением времени от срока травмы. Так, на 3-й день после травмы наблюдается набухание клеток эндотелия и вакуолизация его цитоплазмы (рис. 6). Через 1 неделю после травмы наблюдается резкое уменьшение объема клеток с частичным сохранением вакуолизации цитоплазмы. Далее (до 4 недель после травмы) прослеживается картина дистрофии клеток эндотелия (рис. 7). На поздних сроках после травмы эндотелий не имеет гистологических особенностей.

 

Рис. 6. Набухание клеток эндотелия роговицы и вакуолизация его цитоплазмы, 3-и сутки после поражения.

 

Рис. 7. Слабовыраженная дистрофия эндотелия роговицы через 4 недели после травмы.

 

При выявлении демаркационной линии на ОКТ величина гиперрефлективного сигнала в строме роговицы уменьшается (табл. 2).

 

Таблица 2

Изменения величины демаркационной линии стромы роговицы кролика после поражения её раствором композиции ирритантов

Параметр	3-и сутки	1-я неделя	4-я неделя
Глубина залегания демаркационной линии, мкм	220±28,58	241,67±15,86	115±1,67
Толщина роговицы, мкм	521,72±17,02	516,44±23,40	333,75±4,31

 

Таким образом, сроки полного выздоровления на фоне проводимой терапии предпочтительнее выявлять, используя ОКТ как более чувствительный способ диагностики, чем клинические и патоморфологические исследования.

Выводы

ОКТ является высокочувствительной методикой выявления изменений переднего отрезка глаза при поражениях газовым оружием самообороны.

Использование ОКТ при диагностике поражений глаз газовым оружием позволяет объективизировать глубину (степень) поражения роговицы лабораторного животного и оценивать изменения поражённого переднего отрезка глаза в динамике.

ОКТ позволяет определить окончательные сроки выздоровления.

Об авторах

П. А. Качерович

Военно-медицинская академия им. С.М. Кирова; Институт токсикологии Федерального медико-биологического агентства

Автор, ответственный за переписку.
Email: polin.ka@list.ru
Россия, Санкт-Петербург; Санкт-Петербург

А. Н. Куликов

Военно-медицинская академия им. С.М. Кирова

Email: polin.ka@list.ru
Россия, Санкт-Петербург

Д. С. Мальцев

Военно-медицинская академия им. С.М. Кирова

Email: polin.ka@list.ru
Россия, Санкт-Петербург

В. А. Рейтузов

Военно-медицинская академия им. С.М. Кирова

Email: polin.ka@list.ru
Россия, Санкт-Петербург

Н. В. Лапина

Институт токсикологии Федерального медико-биологического агентства

Email: polin.ka@list.ru
Россия, Санкт-Петербург

Список литературы

Дополнительные файлы