ИММУНОГИСТОХИМИЧЕСКИЕ ПРИЗНАКИ МЕЗЕНХИМАЛЬНО-ЭПИТЕЛИАЛЬНОГО И ЭПИТЕЛИАЛЬНО-МЕЗЕНХИМАЛЬНОГО ПЕРЕХОДОВ В ЭМБРИОНАЛЬНОМ И ПОСТНАТАЛЬНОМ МОРФОГЕНЕЗЕ ПЕЧЕНИ


Цитировать

Полный текст

Аннотация

Процессы мезенхимально-эпителиального и эпителиально-мезенхимального переходов связаны с эмбриональным развитием, дифференцировкой тканей и регенерацией. Чтобы определить, происходят ли мезенихимально -эпителиальный и эпителиально-мезенхимальный переходы в морфогенезе печени, проанализировали ткани печени крыс от 10-го дня эмбрионального развития до взрослых особей. Результаты иммуногистохимического исследования показали, что по мере развития печени экспрессия эпителиального маркера (цитокератина 18) увеличивается, в то время как экспрессия мезенхимального маркера (виментина) снижается, за исключением периода с 1-го по 17-й день после рождения, когда количество виментина возрастает. Выявили иммуногистохимические признаки эпителиально-мезенхимального и мезенхимально-эпителиального переходов на стадиях гепатогенеза.

Полный текст

Последние 20 лет активно изучается вопрос эмбриогенеза, поможет разработать новые подходы морфогенеза печени, что способствовало пониманию к лечению заболеваний печени. патогенеза многих заболеваний органа [1]. Понимание Гепатоциты составляют 78 % объема печени того, как этот сложный орган развивается во время млекопитающих [2] и вместе с холангиоцитами © Дворяшина И.А., Великородная Ю.И., Терентьев А.В., Загребин В.Л., 2022 представляют эпителиальный росток клеток в этом органе. К мезенхимальным клеткам печени относят синусоидальные эндотелиоциты, перисинусоидальные клетки печени, клетки Купфера и пит-клетки. Хотя большинство исследований традиционно сосредоточено на гепатоцитах, становится ясно, что негепато-цитарные типы клеток вносят решающий вклад в функцию и патологию печени, и усилия по пониманию их эмбрионального происхождения и механизмов их развития активизировались [3]. Эпителиально-мезенхимальный переход (ЭМП) и его обратный процесс мезенхимально-эпителиальный переход (МЭП) - фундаментальные эволюционно консервативные механизмы, используемые на разных стадиях морфогенеза и органогенеза многоклеточных [4]. ЭМП включает прогрессирующую потерю полярности эпителиальных клеток, реорганизацию актинового цитоскелета, чтобы придать миграционный фенотип клеткам, которые дадут рост зародышевым листкам, а затем и тканям [5]. МЭП - это прогрессивное фенотипическое изменение от слабо связанных подвижных клеток к плотно связанным клеткам с отчетливой апикально-базальной полярностью, фундаментальный клеточный процесс, лежащий в основе ряда процессов развития, регенерации и патологии [6]. ЦЕЛЬ РАБОТЫ Определить иммуногистохимические признаки мезенхимально-эпителиального и эпителиально-мезенхимального переходов в эмбриональном и пост-натальном периодах развития печени. МЕТОДИКА ИССЛЕДОВАНИЯ Дизайн эксперимента. Исследование проводили на белых беспородных крысах массой 200-250 г. При постановке экспериментов руководствовались международными принципами гуманного обращения с животными, национальным законом и рекомендациями локального этического комитета. Крыс содержали в клетках по 8 особей в каждой в помещениях с искусственным освещением при 20-22 °С в условиях свободного доступа к воде и пище. Для исследования морфофункциональной характеристики клеток печени крыс на различных этапах онтогенеза производили забор образцов печеночной ткани на 10-й и 17-й день эмбрионального (антенатального) периода развития, а также в 1-й и 14-й дни постнатального периода развития животных. В качестве контроля служили образцы печени взрослых лабораторных крыс. JOURNAE OF VOLGOGRAD STATE j MEDICAL UNIVERSITY Иммуногистохимический метод исследования. Парафиновые срезы образцов тканей толщиной 5 мкм для иммуногистохимического исследования монтировали на стекла, обработанные поли-1_-лизином (Menzel). Для определения локализации Цитокератина-18 применяли кроличьи моноклональные (С-04) антитела (Novusbio, Канада), для изучения виментина -кроличьи моноклональные (V9) антитела (Invitrogen, США). Для блокирования эндогенной пероксидазы срезы инкубировали 20 минут в 3 % перекиси водорода. Постановку иммуногистохимических реакций проводили с помощью пероксидаза-полимерной системы визуализации по стандартному протоколу производителя (Dako, США). Демаскировку антител осуществляли путем кипячения срезов при 100 °С в цитратном буфере (рН = 6,0) в течение 10 минут. Пероксидазу проявляли 3-3-диаминобензидином из набора протокола. На заключительном этапе реакции срезы докрашивали гематоксилином Майера. Негативным контролем служили препараты без инкубации с первичными антителами при полном соблюдении остальных этапов протокола. Морфометрия. Препараты изучали и фотографировали с помощью микроскопа AxioScope (ZEISS, Германия), оборудованного цифровой камерой AxioCam506 color (ZEISS, Германия). Относительную площадь, занимаемую цитокератиновыми и вименти-новыми филаментами, обсчитывали с помощью программ ZEN 2012 (ZEISS, Германия) и Image-Pro Plus. Статистика. Статистическую обработку полученных результатов проводили с использованием программы Statistica 6.0 (StatSoft, США). Рассчитывались параметры среднего арифметического значения (М) и стандартного отклонения (SD). Сравнения между группами проводили с помощью непараметрического анализа с использованием U критерия Манна - Уитни. Различия считали значимыми при P ^ 0,05. РЕЗУЛЬТАТЫ ИССЛЕДОВАНИЯ И ИХ ОБСУЖДЕНИЕ Иммунолокализация виментина в эмбриональном и постнатальном периодах развития печени. Вимен-тиновые промежуточные филаменты поддерживают целостность клеток и участвуют в миграции, подвижности и адгезии клеток [7]. Помимо этого, приобретение виментина является характерным признаком эпителиально-мезенхимального перехода [8]. Иммуногистохимическое исследование ткани печени взрослых крыс показало, что характерная положительная реакция на виментин регистрировалась в перисинусоидальных клетках и клетках Купфера, стенках желчных канальцев, а также в эпителиальных клетках желчных протоков и эндо-телиоцитах сосудов (рис. 1Д). В ткани печени 10-суточных зародышей помимо отложений виментина в эндотелиоцитах и холангио-цитах обнаружили иммунопозитивные недифференцированные мезенхимальные клетки печени и единичные клетки с фенотипом гепатобластов, содержащих гранулы виментина. Наличие гранул виментина в гепато-бласте может говорить о происхождении этих клеток путем МЭП [8] (рис. 1А). Относительная площадь виментина на препаратах печени 10-суточных зародышей крыс была значимо (р < 0,01) выше, чем на препаратах печени взрослых животных, вероятно из-за гепатобластического типа кроветворения у зародышей (рис. 3). В ткани печени 17-суточных зародышей крыс помимо иммунопозитивных депозитов виментина в эндотелиоцитах синусоидов, портальных артериол и венул, центральных вен и в холангиоцитах, JOURNAL ОГ VOLGOGRAD STATE MEDICAL UNIVERSITY обнаружили малодифференцированные гепатоциты с пылевидными иммунопозитивными включениями виментина в цитоплазме, что может рассматриваться как признак МЭП на завершающей стадии (рис. 1Б). Относительная площадь виментина на препаратах печени 17-суточных зародышей крыс также была достоверно (р < 0,01) выше, чем на препаратах печени взрослых животных (рис. 3). У суточных крысят виментин обнаруживали в эндотелиоцитах сосудов, перисинусоидальных клетках, гепатобластах и гепатоцитах (рис. 16). У 14-суточных крысят устанавливается характерное для взрослых животных распределение виментина в ткани печени: все реже недеференцированные мезенхимальные клетки и виментин-позитивные гепатоциты (рис. 1Г). При этом относительная площадь виментина на препаратах печени суточных и 14-суточных крысят не отличалась достоверно от относительной площади на препаратах печени взрослых животных (рис. 3). Т7 • V X • • /•99■У"' 9 ** V I > • «Г г *1» , чф, Ив? .( *■*,. gjt. \\''' «м ' •’ 'V, ' и %и Vbi.'*' ” v.A f: ff -Ai' ay - d f >. ■■ A . tyинг, 4, v; - Рис. 1. Динамика распределения виментина в ткани печени крыс: А - 10-суточного зародыша крысы; Б - 17-суточного зародыша крысы; В - суточной крысы; Г - 14-суточной крысы; Д - взрослой крысы. Иммуногистохимическая реакция с антителами к виментину. Докраска ядер гематоксилином Майера. Ув. *200 Иммунолокализация цитокератина 18 в эмбриональном и постнатальном периодах развития печени Цитокератин 18 (ЦК18) - это основной эпителиально-специфический промежуточный филамент печени, который синтезируют зрелые гепатоциты и холан-гиоциты [10]. Также в нормальной ткани печени взрослых животных ЦК18 определяли в эндотелиоцитах кровеносных сосудов, цитоплазматических мембранах и цитоплазме гепатоцитов. Отмечали яркоокрашенные малодифференцированные гепатоциты в области портальных триад (рис. 2Д). В ткани печени 10-суточных зародышей крыс обнаружили клетки неправильной формы с фенотипом гепатобластов и крупными иммунопозитивными гранулами по всей цитоплазме и в околомембранном положении (рис. 2А). Наличие крупных гранул ЦК18 в цитоплазме гепатоцитов не является типичным расположением данного белка в ткани печени взрослых крыс. Относительная площадь ЦК18 на препаратах печени 10-суточных зародышей крыс была статистически достоверно ниже (р < 0,01), чем на препаратах печени взрослых животных, вероятно из-за большого количество бластных мезенхимальных клеток (рис. 3). К 17-м суткам эмбрионального развития расположение ЦК18 у части клеток появляются свойственные гепатоцитам иммуногистохимические признаки, что указывает на неравномерную скорость созревания клеток (рис. 2Б). Относительная площадь ЦК18 на препаратах печени 17-суточных зародышей крыс была достоверно ниже (р < 0,01), чем на препаратах JOURNAL OF VOLGOGRAD STATE j MEDICAL UNIVERSITY печени взрослых животных, и при этом она была также статистически достоверно выше (р < 0,01), как на препаратах печени 10-суточных зародышей (рис. 3). Наблюдаемые изменения относительной площади являются следствием увеличения эпителиальных клеток не только в размере, но и в их количестве по отношению к мезенхимальным клеткам. В клетках печени суточных и 14-суточных крыс определили характерное для зрелых гепатоцитов распределение ЦК18 - в виде преимущественно мембранной формы (рис. 2В, Г). При этом относительная площадь виментина на препаратах печени суточных и 14-суточных крыс была достоверно ниже, чем на препаратах печени взрослых крыс, что может объясняться сохранением недифференцированных клеток и разной плотностью распределения гепатоцитов в тканях печени крысят и взрослых особей (рис. 3). Рис. 2. Динамика распределения цитокератина 18 в ткани печени крыс: А - 10-суточного зародыша крысы; Б - 17-суточного зародыша крысы; В - суточной крысы; Г - 14-суточной крысы; Д - взрослой крысы. Иммуногистохимическая реакция с антителами к цитокератину 18. Докраска гематоксилином Майера. Ув. *200 Динамика соотношения виментина и цитокератина 18 на различных этапах онтогенеза как доказательство мезенхимально-эпителиального и эпителиальномезенхимального переходов в ткани печени Провели количественный анализ динамичес-ких изменений относительной площади виментин -позитивных и цитокератин-позитивных клеток, для дополнительной характеристики МЭП при гепатоге-незе (рис. 3). Обращало на себя внимание снижение относительной площади виментина с 13 % на 10-й день эмбрионального развития к 4,47 % на момент рождения, что происходило на фоне снижения кроветворной функции печени, к 14-му дню после рождения относительная площадь виментина незначительно повышалась до 6,13 % и затем снижалась у взрослых особей до 5,66 %. Напротив, частота эпителиальных цитокератин-позитивных клеток повысилась с 17,7% относительной площади на 10-й день эмбрионального развития до 23,8 % на момент рождения, затем незначительно понизилась до 22,4 % на 17-й день после рождения и окончательно возросла до 33,7 % у взрослых особей (рис. 3, гистограмма). Снижение отношения виментин/цитокератин 18 (рис. 3, динамическая кривая) от 10-го дня эмбрионального развития до рождения свидетельствовалоо повышенной экспрессии эпителиальных генов относительно мезенхимальных, на что указывало превалирование ЦК18 над виментином, подтверждая таким образом МЭП в процессе эмбрионального развития печени [1]. В ткани печени на 17-й день после рождения отмечали увеличение содержания мезенхимальных белков относительно эпителиальных, что могло быть следствием образования мезенхимальных клеток печени из недифференцированного мезенхимального ростка и/или гепатобластов путем ЭМП (рис. 3, динамическая кривая). В то же время в ткани печени у взрослых особей отмечали снижение отношения виментин/цитокератин 18, вероятно, вследствие пролиферации клеток эпителиального ростка (в первую очередь гепатоцитов). Рис. 3. Динамика соотношения относительной площади виментина и цитокератина на этапах онтогенеза ЗАКЛЮЧЕНИЕ Таким образом, выявлены иммуногистохимиче-ские признаки мезенхимально-эпителиального и эпителиально-мезенхимального переходов в эмбриональном и постнатальном морфогенезе печени. Мезенхимально-эпителиальный переход является одним из возможных путей образования эпителиальных клеток печени на первых этапах эмбриогенеза. Эпителиальный росток клеток проявляет признаки зрелости уже к первым суткам после рождения, тогда как мезенхимальный росток созревает позднее. К 14-му дню после рождения возрастает число мезенхимальных клеток печени, что может говорить о происхождении части мезенхимальных клеток путем эпителиально-мезенхимального перехода. На основании полученных данных можно сделать вывод, что в морфогенезе печени мезенхимально-эпителиальный переход после рождения сменяется эпителиальномезенхимальным переходом.
×

Об авторах

Ирина Александровна Дворяшина

Волгоградский государственный медицинский университет

аспирант кафедры гистологии, эмбриологии, цитологии Волгоград, Россия

Юлия Ивановна Великородная

Волгоградский медицинский научный центр

Email: alta-u@mail.ru
аспирант кафедры фармакологии и фармации, Институт непрерывного медицинского и фармацевтического образования, Волгоградский государственный медицинский университет, научный сотрудник лаборатории патоморфологии, Волгоградский медицинский научный центр Волгоград, Россия

Андрей Владимирович Терентьев

Волгоградский государственный медицинский университет

Email: kocha.2009@yandex.ru
аспирант кафедры гистологии, эмбриологии, цитологии Волгоград, Россия

Валерий Леонидович Загребин

Волгоградский государственный медицинский университет

Email: vlzagrebin@volgmed.ru
кандидат медицинских наук, доцент, заведующий кафедрой гистологии, эмбриологии, цитологии Волгоград, Россия

Список литературы

  1. Gordillo M., Evans T., Gouon-Evans V. Orchestrating liver development. Development. 2015;142(12):2094-2108.
  2. Blouin A., Bolender R.P., Weibel E.R. Distribution of organelles and membranes between hepatocytes and nonhepatocytes in the rat liver parenchyma. A stereological study. J Cell Biol. 1977;72:441-455.
  3. Kmiec Z. Cooperation of liver cells in health and disease. Adv Anat Embryol Cell Biol. 2001;16:III-XIII,1-151.
  4. Pei D., Shu X., Gassama-Diagne A., Thiery J.P. Mesenchymal-epithelial transition in development and reprogramming. Nat Cell Biol. 2019;21(1):44-53.
  5. Nieto M.A., Huang R.Y., Jackson R.A., Thiery J.P. EMT: 2016. Cell. 2016;166:21-45.
  6. Kim H.Y., Jackson T.R., Davidson L. On the role of mechanics in driving mesenchymal-to-epithelial transitions. Seminars in cell & developmental biology. 2017;67:113-122.
  7. Ivaska J. et al. Novel functions of vimentin in cell adhesion, migration, and signaling. Exp Cell Res. 2007; 313(10):2050-2062.
  8. Wangmo C., Charoen N., Jantharapattana K., Dechaphunkul A., Thongsuksai P. Epithelial-Mesenchymal Transition Predicts Survival in Oral Squamous Cell Carcinoma. Pathol Oncol Res. 2020 Jul;26(3):1511 -1518.
  9. Mansuroglu T., Dudas J., Elmaouhoub A., Joza T.Z., Ramadori G. Hepatoblast and mesenchymal cell-specific gene-expression in fetal rat liver and in cultured fetal rat liver cells. Histochemistry and Cell Biology. 2009; 132(1):11-19.
  10. Ku N.O., Strnad P., Bantel H., Omary M.B. Keratins: Biomarkers and modulators of apoptotic and necrotic cell death in the liver. Hepatology. 2016;64(3):966-976.

Дополнительные файлы

Доп. файлы
Действие
1. JATS XML

© Дворяшина И.А., Великородная Ю.И., Терентьев А.В., Загребин В.Л., 2022

Creative Commons License
Эта статья доступна по лицензии Creative Commons Attribution 4.0 International License.

СМИ зарегистрировано Федеральной службой по надзору в сфере связи, информационных технологий и массовых коммуникаций (Роскомнадзор).
Регистрационный номер и дата принятия решения о регистрации СМИ: серия ПИ № ФС 77 - 79562 от 27.11.2020 г.

Данный сайт использует cookie-файлы

Продолжая использовать наш сайт, вы даете согласие на обработку файлов cookie, которые обеспечивают правильную работу сайта.

О куки-файлах