The use of electrochemically activated solutions in the traumatology and orthopedic clinic

Full Text

Известно, что внутрибольничная инфекция в хирургических стационарах является серьезной медицинской, социальной и экологической проблемой [12, 13]. В этой связи огромное значение имеет применение в таких стационарах современных эффективных дезинфектантов. К таким средствам относятся электрохимически активированные растворы.

Термин «электрохимическая активация» был введен в литературу в 1974 г. В 1981-1985 гг. стало известно более 100 конструкций установок для получения электрохимически активированных растворов. Появилось множество кустарных установок для получения «живой» и «мертвой» воды, однако сколько-нибудь серьезной научной базы под этим не было. Обоснование электрохимической активации дано в работах В.М. Бахира [1, 2]. Основным разработчиком установок СТЭЛ для получения электрохимически активированных растворов (анолит, католит) является НПО «Экран» [3, 8].

Электрохимическая активация осуществляется путем обработки 10% водного раствора натрия хлорида в электрохимическом реакторе. В результате преобразования содержащихся в этом растворе веществ получают высокоактивные растворы кислот и окислителей (анолит) и щелочей и восстановителей (католит). Анолит обладает высокой антибактериальной, противовирусной, противогрибковой активностью, а католит — моющими свойствами [13, 15]. Первыми установками для получения дезинфицирующего, стерилизующего и моющего растворов были установки СТЭЛ-МТ-1 [3]. В настоящее время существует более 50 различных установок СТЭЛ.

В 1992 г. в ЦИТО поступили для испытания установки СТЭЛ-4Н-60-01 и СТЭЛ-10АК-120-01. Была создана программа испытаний растворов, синтезируемых в этих установках, которая включала исследование антибактериальных свойств анолита (кислого и нейтрального) и применение в некоторых подразделениях института анолита и католита для обработки помещений и дезинфекции оборудования. В настоящее время институт оснащен установками нового поколения СТЭЛ^- 10Н-120~01. В приведенной ниже таблице представлены показатели активности нейтрального анолита АНК, полученного на этих установках, в отношении внутрибольничных штаммов микроорганизмов, выделенных из гнойных ран больных.

 

Антимикробная активность нейтрального анолита (АНК), полученного на установке СТЭЛ-10Н-120-01, в отношении клинических штаммов микроорганизмов в опытах in vitro

Микроорганизмы	Концентрация раствора												Контроль (физиологический раствор)
	0,01%				0,03%				0,05%
	продолжительность воздействия, мин
	5	15	30	>30	5	15	30	>30	5	15	30	>30	5	15	30	>30
Аэробы:
S. aureus	+	-	-	-	+	—	-	-	+	—	-	-	+	+	+	+
S. epidermidis	-	-	-	-	-	—	-	-	-	-	-	-	+	+	+	+
Streptococcus spp.	-	-	-	-	-	-	-	-	-		-	-	+	+	+	+
Enterococcus spp.	+	+	-	-	+	+	-	-	+	+	-	-	+	+	+	+
Ps. aerugenosa	+	+	-	-	+	+	-	-	+	+	-	-	+	+	+	+
Klebsiella spp.	-	-	-	-	-	-	-	-	-		-	-	+	+	+	+
Proteus spp.	+	-	-	-	+	-	-	-	+	—	-	-	+	+	+	+
Вас. subtilis	+	-	-	-	+	-	-	-	-	-	-	-	+	+	+	+
Анаэробы:
Peptococcus spp.	-	-	-	-	-	-	-	-	-	-	-	-	+	+	+	+
Peptostreptococcus spp.	-	-	-	-	-	-	-	-	-	-	-	-	+	+	+	+
Eubacterium spp.	-	-	-	-	-	-	-	-	-	-	-	-	+	+	+	+
Clostridium spp.	+	+	-	-	+	+	-	-	+	+	-	-	+	+	+	+

Обозначения: «+» — наличие роста, «—» — отсутствие роста.

Проведенные сотрудниками НПО «Экран» расчеты показали, что одна установка СТЭЛ-10Н-120-01 (модель 80-01) при 6-часовой работе в день обеспечивает экономический эффект для лечебно-профилактических учреждений в пределах 200-250 тыс. рублей (8~12 тыс. ам. дол.) в год (в сравнении с расходами на ранее применявшиеся дезинфицирующие средства).Очень важно, что установки СТЭЛ-10Н-120-01 размещены в созданном в ЦИТО отделении дезинфекции и стерилизации. Четырехлетний опыт работы свидетельствует, что институт вполне обходится для текущих и генеральных уборок помещений, дезинфекции оборудования, перевязочного материала, лабораторной и столовой посуды только нейтральным анолитом (АНК) с концентрацией 0,05%, получаемым на новых установках. Как показали расчеты, ежедневно надо готовить до 2000 л нейтрального анолита АНК [10]. Другими дезинфектантами институт в последние годы почти не пользуется. Регулярно в микробиологической лаборатории ЦИТО проверяются антибактериальные свойства АНК в отношении внутрибольничных штаммов микроорганизмов.

Оснащение ЦИТО установками СТЭЛ-ЮН-120—01, обеспечивающими удобство и бесперебойность приготовления дезинфицирующего раствора, позволило:

• постоянно иметь в подразделениях института активный дезинфицирующий раствор в достаточном количестве;
• контролировать расход раствора и потребность в нем клинических отделений и лабораторий, регулярность и правильность его использования и как следствие — улучшить качество текущих и генеральных уборок подразделений;
• получить значительный экономический эффект.

Наиболее уязвимыми в плане внутрибольничной инфекции подразделениями, требующими постоянного бактериологического контроля, являются операционный блок, перевязочные, отделение реанимации и интенсивной терапии, все детские отделения, отделения костной патологии, эндопротезирование суставов; особое место занимает отделение гнойных осложнений, которое может стать разносчиком инфекции, если не соблюдать самым строгим образом все санитарногигиенические требования и не проводить регулярную тщательную дезинфекцию окружающей среды и оборудования. Результаты бактериологического контроля в этих подразделениях в 1999-2000 гг. были вполне благоприятными.

В борьбе с внутрибольничной инфекцией остро стоит вопрос лечения гнойно-воспалительных, септических осложнений, раневой инфекции. Известно, что за последние годы резко возросла полирезистентность микроорганизмов даже к сравнительно новым антибиотикам — некоторые специалисты называют это явление экологической катастрофой. Очевидно, на данном этапе необходим поиск новых химиотерапевтических препаратов для профилактики и лечения инфекций. В этом плане электрохимически активированные растворы обратили на себя особое внимание.

Есть предположение [14], что вероятность адаптации микроорганизмов к активированному анолиту крайне мала. Имеются также данные о том, что нейтральный анолит повышает чувствительность микроорганизмов к антибиотикам [4, 18]. При использовании нейтрального анолита для промывания гнойных ран в челюстно-лицевой хирургии [17] адаптации к нему микроорганизмов не наблюдалось. Все эти материалы, безусловно, заслуживают внимания и дальнейшего изучения.

В ЦИТО были проведены экспериментальные исследования на крысах с применением нейтрального анолита АН 0,012%, полученного на установке СТЭЛ-МТ-1, для профилактики и лечения осложнений резаных и огнестрельных ран [9], которые дали обнадеживающие результаты. Как и в работе других авторов [7], выявлено, что анолит нейтральный эффективен в первой фазе раневого процесса, а католит — во второй и третьей фазах.

Местно электрохимически активированные растворы, полученные на установках СТЭЛ, использовались рядом авторов для санации кожи при воспалениях и нарушениях трофики, для обработки эрозированных слизистых оболочек, трофических язв, инфицированных ран, абсцессов, ожогов. Общий принцип состоит в двухэтапном местном применении растворов — использовании анолита в качестве антисептика и католита — в качестве биостимулятора. Нейтральный анолит АНК в отличие от других антисептиков способен производить окислительную детоксикацию [16].

В заключение следует сказать, что результаты многолетней комплексной работы по изучению электрохимически активированных растворов и созданию методов их применения в хирургических (в частности травматолого-ортопедических) стационарах [5, 6, 11, 12] свидетельствуют о перспективности этого направления в борьбе с внутрибольничной инфекцией. Электрохимически активированные растворы перспективны не только как дезинфектанты, но и как химиотерапевтические средства для профилактики и лечения целого ряда инфекций.

About the authors

V. M. Melnikova

Central Institute of Traumatology and Orthopedics. N.N. Priorov; NPO "Ekran", Moscow State University of Medicine and Dentistry

Author for correspondence.
Email: info@eco-vector.com
Russian Federation, Moscow

N. V. Loktionova

Central Institute of Traumatology and Orthopedics. N.N. Priorov; NPO "Ekran", Moscow State University of Medicine and Dentistry

Email: info@eco-vector.com
Russian Federation, Moscow

A. S. Samkov

Central Institute of Traumatology and Orthopedics. N.N. Priorov; NPO "Ekran", Moscow State University of Medicine and Dentistry

Email: info@eco-vector.com
Russian Federation, Moscow

G. G. Okropiridze

Central Institute of Traumatology and Orthopedics. N.N. Priorov; NPO "Ekran", Moscow State University of Medicine and Dentistry

Email: info@eco-vector.com
Russian Federation, Moscow

T. P. Belikov

Central Institute of Traumatology and Orthopedics. N.N. Priorov; NPO "Ekran", Moscow State University of Medicine and Dentistry

Email: info@eco-vector.com
Russian Federation, Moscow

V. M. Bahir

Central Institute of Traumatology and Orthopedics. N.N. Priorov; NPO "Ekran", Moscow State University of Medicine and Dentistry

Email: info@eco-vector.com
Russian Federation, Moscow

O. I. Sukhova

Central Institute of Traumatology and Orthopedics. N.N. Priorov; NPO "Ekran", Moscow State University of Medicine and Dentistry

Email: info@eco-vector.com
Russian Federation, Moscow

S.A A. Panicheva

Central Institute of Traumatology and Orthopedics. N.N. Priorov; NPO "Ekran", Moscow State University of Medicine and Dentistry

Email: info@eco-vector.com
Russian Federation, Moscow

References

Supplementary files