Оценка биосовместимости и адгезивных свойств скаффолдов на основе деорганифицированного костного матрикса

Обложка

Цитировать

Полный текст

Открытый доступ Открытый доступ
Доступ закрыт Доступ предоставлен
Доступ закрыт Доступ платный или только для подписчиков

Аннотация

Введение. Применение клеточно-инженерных конструкций, включающих клеточные культуры и композитные биоматериалы, обеспечивает максимальную эффективность восстановления дефектов костной ткани, а разработка методик и тестирование носителей для трансплантации остеогенных клеток остается актуальной задачей современной науки. Авторами проведено биологическое тестирование скаффолдов на основе деорганифицированного костного матрикса (СДКМ), полученного ранее разработанным и запатентованным способом в ФГБНУ ВИЛАР, с использованием фибробластов человека по показателям: цитотоксичность, эффективность клеточной адгезии и пролиферации.

Цель работы оценить в эксперименте биосовместимость и адгезивные свойства СДКМ с использованием культуры клеток человека in vitro для создания имплантационных клеточно-инженерных конструкций.

Материал и методы. Объект исследования – СДКМ из компактного вещества диафиза бедренной кости быка с клеточной линией дермальных фибробластов человека HdFb (d77) мезенхимального происхождения. Исследована биосовместимость и адгезивные свойства СДКМ по отношению к клеточной линии дермальных фибробластов, их влияние на жизнеспособность и пролиферативную активность клеток с использованием фазово-контрастной микроскопии, сканирующей электронной микроскопии, классического спектрального метода с использованием желтой соли тетразолия (метод МТТ).

Результаты. В течение 240 ч инкубации изучали образование контактов плазматической мембраны дермальных фибробластов с исследуемыми образцами СДКМ. При этом отсутствовали существенные изменения в морфологии клеток. Они образовывали конфлюентный монослой (с плотно прилегающими друг к другу клетками), хорошо адгезировались и распределялись по поверхности СДКМ. Образцы СДКМ практически не оказывали влияния на метаболическую активность HdFb клеток. Полученные данные указывают на минимальное влияние исследованных образцов на жизнеспособность и пролиферацию клеток, отсутствие токсичности по отношению к клеткам и хорошую биосовместимость с дермальными фибробластами in vitro.

Выводы. Экспериментально доказано, что исследованные образцы СДКМ, полученные разработанным в ФГБНУ ВИЛАР способом, обладают свойствами необходимыми для адгезии HdFb клеток, не проявляют цитотоксичности по отношению к дермальным фибробластам человека линии HdFb и оказывают незначительное влияние на процесс их пролиферации in vitro.

Полный текст

Доступ закрыт

Об авторах

Ю. Ю. Литвинов

Федеральное государственное бюджетное научное учреждение«Всероссийский научно-исследовательский институт лекарственных и ароматических растений»

Автор, ответственный за переписку.
Email: vilar.litvinov@mail.ru
ORCID iD: 0000-0003-2718-2038

кандидат биологических наук, вед. научный сотрудник

Россия, 117216, Москва, ул. Грина, дом 7, стр. 1

Д. С. Кабанов

Федеральное государственное бюджетное научное учреждение«Всероссийский научно-исследовательский институт лекарственных и ароматических растений»

Email: vilar.litvinov@mail.ru
ORCID iD: 0000-0001-8263-3079

кандидат биологических наук, вед. научный сотрудник

Россия, 117216, Москва, ул. Грина, дом 7, стр. 1

В. В. Краснов

Федеральное государственное бюджетное научное учреждение«Всероссийский научно-исследовательский институт лекарственных и ароматических растений»

Email: vilar.litvinov@mail.ru
ORCID iD: 0000-0002-7415-4817

доктор биологических наук, гл. научный сотрудник

Россия, 117216, Москва, ул. Грина, дом 7, стр. 1

Список литературы

  1. Лесняк О.М., Санникова О.Ю. Терапия нарушений метаболизма костной ткани. Русский медицинский журнал. 2010; 11: 735.
  2. Кузнецова Д.С., Тимашев П.С., Баграташвили В.Н., Загайнова Е.В. Костные имплантаты на основе скаффолдов и клеточных систем в тканевой инженерии (обзор). Современные технологии в медицине. 2014; 6(4): 201–212.
  3. Деев Р.В., Исаев А.А., Кочиш А.Ю., Тихилов Р.М. Пути развития клеточных технологий в костной хирургии. Травматология и ортопедия России. 2008; 1(47): 65–74.
  4. Ревокатова Д.П., Зурина И.М., Горкун А.А., Сабурина И.М. Современные подходы к созданию васкуляризованных костных биоэквивалентов. Патологическая физиология и экспериментальная терапия. 2022; 66(3): 151–165. doi: 10.25557/0031-2991.2022.03.151-165.
  5. Попов Н.В., Колсанов А.В., Волова Л.Т., Пономарева Ю.В. Доклинические исследования опытных образцов персонифицированных костных имплантатов на культуре дермальных фибробластов человека. Вестник медицинского института «РЕАВИЗ». 2017; 5: 40–49.
  6. Корель А.В., Кузнецов С.Б. Тканеинженерные стратегии для восстановления дефектов костной ткани. Современное состояние вопрос. Международный журнал прикладных и фундаментальных исследований. 2019; 4: 228–234.
  7. Щаницын И.Н., Иванов А.Н., Ульянов В.Ю., Норкин И.А. Современные концепции стимуляции регенерации костной ткани с использованием биологически активных скаффолдов. Цитология. 2019; 61(1): 16–34. doi: 10.1134/S0041377119010061.
  8. Деев Р.В., Дробышев А.Ю., Бозо И.Я. и др. Создание и оценка биологического действия ген-активированного остеопластического материала, несущего ген VEGF человека. Клеточная трансплантология и тканевая инженерия. 2013; 6(3): 78–85.
  9. Егорохина М.Н., Мухина П.А., Бронникова И.И. Скаффолды как системы доставки биологически активных и лекарственных веществ. Комплексные проблемы сердечно-сосудистых заболеваний. 2020; 9(1): 91–102. doi: 10.17802/2306-1278-2020-9-1-92-102.
  10. Способ получения костного имплантата на основе стерильного костного матрикса: патент на изобретение № 2756246 Рос. Федерация: МПК51 A61F 2/02 (2006.01), СПК52 А61F 2/02 (2021.05) / Ю.Ю. Литвинов, В.А. Быков, Н.И. Сидельников, И.В. Матвейчук, В.В. Краснов; заявитель и патентообладатель ФГБНУ ВИЛАР. № 2021106711; заявл. 16.03.2021, опубл. 28.09.2021, Бюл. № 28.
  11. Piaton E., Fabre M., Goubin-Versini I., et al. Guidelines for May-Grunwald-Giemsa staining in haematology and non-gynaecological cytopathology: recommendations of the French Society of Clinical Cytology (SFCC) and of the French association for quality assurance in anatomic and cytologic pathology (AFAQAP). Cytopathology. 2016; 27(5): 359–368. doi: 10.1111/cyt.12323.
  12. Litvinov Y.Y., Matveychuk I.V., Rozanov V.V., Krasnov V.V. Optimization of Technologies for Manufacture of Demineralized Bone Implants for Drug Release. Biomedical Engineering. 2021; 54(6): 393–396. doi: 10.1007/s10527-021-10047-5.
  13. Новиков И.А., Суббот А.М., Федоров А.А. и др. Суправитальное контрастирование лантаноидами для визуализации структуры биологических образцов на сканирующем электронном микроскопе. Гены и Клетки. 2015; 10(2): 90–96.
  14. Чеботарь И.В., Новиков И.А., Суббот А.М., Маянский Н.А. Лантаноидное контрастирование как ускоренная технология пробоподготовки микробиологических препаратов для сканирующей электронной микроскопии. Современные технологии в медицине. 2017; 9(3): 23–30. doi: 10.17691/stm2017.9.3.03.
  15. Novikov I., Subbot A., Turenok A., Mayanskiy N., Chebotar I. A rapid method of whole cell sample preparation for scanning electron microscopy using neodymium chloride. Micron. 2019;124:102687. doi: 10.1016/j.micron.2019.102687.
  16. Кабанов Д.С., Китаева М.П., Федотчева Т.А. Использование желтого тетразолия в исследовании цитотоксического действия биологически активных веществ растений. Сборник трудов конференции «90 лет – от растения до лекарственного препарата: Достижения и перспективы». 2021: 607–613. doi: 10.52101/9785870191003_2021_607.
  17. Perez M.G., Fourcade L., Mateescu M.A., Paquin J. Neutral red versus MTT assay of cell viability in the presence of copper compounds. Analytical Biochemistry. 2017; 535: 43–46. doi: 10.1016/j.ab.2017.07.027.

Дополнительные файлы

Доп. файлы
Действие
1. JATS XML
2. Рис. 1. Образец СДКМ цилиндрической формы с микроотверстиями, увеличение ×10

Скачать (267KB)
3. Рис. 2. Культура клеток дермальных фибробластов человека HdFb. Окраска по Романовскому–Май Грюнвальд–Гимзе, увеличение ×200

Скачать (860KB)
4. Рис. 3. Морфология, пролиферация и образование контактов клеток HdFb с поверхностью образцов СДКМ при инкубации в течение: А – 24 ч, Б – 96 ч, В, Г – 120 ч, Д – 216 ч, Е – 240 ч; увеличение: А, Б, В, Д – ×20, Г, Е – ×8

Скачать (299KB)
5. Рис. 4. Классическая веретеновидная форма клеток HdFb, адгезированных к поверхностям культурального планшета и СДКМ при инкубации в течение 240 ч; увеличение: А – ×450, Б – ×1500

Скачать (475KB)
6. Рис. 5. Влияние материала образцов на жизнеспособность клеток HdFb

Скачать (265KB)
7. Рис. 6. Динамика продукции МТТ-формазана контрольными клетками и инкубированными в течение 196 ч с образцами СДКМ

Скачать (406KB)
8. Рис. 7. Продукция МТТ-формазана клетками, инкубированными с образцами СДКМ в течение 120 ч после добавления МТТ: А – через 30 мин, Б – через 60 мин; увеличение ×20

Скачать (363KB)

© ИД "Русский врач", 2024