Исследование защитного действия гесперидина и его сочетанного применения с аминокислотами на проницаемость сосудов головного мозга на фоне облучения

Обложка
  • Авторы: Хочава М.Р.1, Киёк О.В.1, Доркина Е.Г.2, Мизина П.Г.3, Быкова О.А.4
  • Учреждения:
    1. ФГБОУ ВО «Кубанский государственный медицинский университет» Министерства здравоохранения Российской Федерации
    2. Пятигорский медико-фармацевтический институт – филиал Волгоградского государственного медицинского университета
    3. ФГБНУ «Всероссийский научно-исследовательский институт лекарственных и ароматических растений» (ВИЛАР)
    4. Северо-Кавказский филиал ФГБНУ «Всероссийский научно-исследовательский институт лекарственных и ароматических растений»
  • Выпуск: Том 28, № 3 (2025)
  • Страницы: 45-52
  • Раздел: Вопросы экспериментальной биологии и медицины
  • URL: https://journals.eco-vector.com/1560-9596/article/view/677707
  • DOI: https://doi.org/10.29296/25877313-2025-03-06
  • ID: 677707

Цитировать

Полный текст

Открытый доступ Открытый доступ
Доступ закрыт Доступ предоставлен
Доступ закрыт Доступ платный или только для подписчиков

Аннотация

Введение. Эпидемиологические и клинические исследования свидетельствуют о важном значении потребления растительных флавоноидов для профилактики прежде всего сердечно-сосудистых заболеваний. Известно, что диета, обогащенная флавоноидами, значительно повышает резистентность эритроцитов к оксидативному стрессу. Несмотря на интерес к флавоноидам как потенциальным средствам профилактики многих заболеваний человека, реальный вклад этих соединений в поддержание здоровья и механизмы, посредством которых они действуют, все еще неясны. Флавонон гесперидин, являясь антиоксидантом, способен нормализовать проницаемость и укреплять стенки капилляров, защищая их от повреждающего действия свободных радикалов и перекисных продуктов. В связи с этим представляло интерес непосредственно оценить влияние как самого гесперидина, так и его искусственных смесей с аминокислотами на проницаемость стенки капилляров головного мозга.

Цель исследования – изучение влияния флавоноида гесперидина и его сочетаний с аминокислотами (глицином и лизином) на проницаемость сосудов головного мозга на фоне облучения.

Материал и методы. Объектами исследования служили флавоноид гесперидин и индивидуальные аминокислоты: лизин (HiMediaLaboratories, Индия), глицин (Sigma-Aldrich, MerckKGaA, Германия). Действие гесперидина и исследуемых смесей гесперидина с аминокислотами (смесь I – гесперидин-лизин (1:1) и смесь II – гесперидин-лизин-глицин (1:1:1)) изучали в период разгара острой лучевой болезни на транскапиллярный обмен мозга белых нелинейных половозрелых белых крыс. Исследуемые соединения вводили в виде водной суспензии необлученным животным и на фоне облучения. Облучение проводили методом кратковременного общелучевого воздействия на стандартном g-терапевтическом аппарате «Агат-С» (доза 2 Гр, мощность 0,0171 Гр/с, РИП 75 мм, площадь 20×20, Со60). Проницаемость капилляров (транскапиллярный обмен) определяли путем сравнения показателей гема-токрита и содержания белка в артериальной и венозной крови.

Результаты. Экспериментальные исследования показали, что у необлученных крыс выход жидкости из крови в ткань составлял примерно 4,30 ± 0,03 мл на каждые 100 мл крови, а проницаемость капилляров мозга для белка в среднем составляла –2,5 ± 0,27% потерянного белка тканями на каждые 100 мл крови. На 14-е сутки после лучевого воздействия (период разгара острой лучевой болезни) у животных контрольной группы выход жидкости из капиллярного русла составил 5,9±0,21 мл/%, что было достоверно выше, чем у необлученных животных на 37% (р<0,05). Потеря белка тканями у этих животных также достоверно увеличивалась более чем в 5 раз по сравнению с показателями необлученных крыс. У крыс, получавших до облучения гесперидин и смесь II, после облучения наблюдалось достоверное снижение по сравнению с контролем проницаемости капилляров мозга для белка на 72 и 69% соответственно (p<0,05), то есть примерно в равной степени. При этом показатель, характеризующий выход жидкости из крови в ткань, у этих крыс по сравнению с контрольными животными достоверно не изменился. У крыс, которым вводили смесь I, наблюдалось в тех же условиях более выраженное достоверное снижение проницаемости капилляров мозга для белка на 80% по сравнению с контролем, а также достоверное уменьшение выхода жидкости из крови в ткань на 17%.

Выводы. Гесперидин и его смеси с аминокислотами обладают способностью укреплять стенки капилляров на фоне облучения, приводящего к повышению их проницаемости. Добавление к гесперидину аминокислоты лизина повышает эффективность его защитного действия, но не совместно с глицином. В связи с этим комбинация гесперидина с лизином может быть рекомендована для проведения дальнейших исследований их применения с целью профилактики сосудистой патологии, вызванной облучением.

Полный текст

Доступ закрыт

Об авторах

М. Р. Хочава

ФГБОУ ВО «Кубанский государственный медицинский университет» Министерства здравоохранения Российской Федерации

Email: hochavamr@ksma.ru
ORCID iD: 0000-0002-0066-3598
SPIN-код: 6077-6575

к.фарм.н., доцент, доцент кафедры профильных гигиенических дисциплин, эпидемиологии и общей гигиены

Россия, 350063, Краснодар, ул. М. Седина, 4

О. В. Киёк

ФГБОУ ВО «Кубанский государственный медицинский университет» Министерства здравоохранения Российской Федерации

Email: kiekov@ksma.ru
ORCID iD: 0000-0003-0900-6313
SPIN-код: 5634-9234

д.м.н., доцент, зав. кафедрой профильных гигиенических дисциплин, эпидемиологии и общей гигиены

Россия, 350063, Краснодар, ул. М. Седина, 4

Е. Г. Доркина

Пятигорский медико-фармацевтический институт – филиал Волгоградского государственного медицинского университета

Автор, ответственный за переписку.
Email: elenadorkina@yandex.ru
ORCID iD: 0000-0001-8389-7789
SPIN-код: 9597-1811

д.б.н., профессор кафедры биологии и физиологии

Россия, 357532, г. Пятигорск, ул. Калинина, 11

П. Г. Мизина

ФГБНУ «Всероссийский научно-исследовательский институт лекарственных и ароматических растений» (ВИЛАР)

Email: mizina-pg@yandex.ru
ORCID iD: 0000-0001-6510-9603
SPIN-код: 7084-1962

д.фарм.н., профессор, советник, заслуженный деятель науки Российской Федерации

Россия, 117216, Москва, ул. Грина, 7

О. А. Быкова

Северо-Кавказский филиал ФГБНУ «Всероссийский научно-исследовательский институт лекарственных и ароматических растений»

Email: vilar8@rambler.ru
ORCID iD: 0000-0002-6032-2357
SPIN-код: 1721-8472

к.с.-х.н., директор

Россия, 353225, Краснодарский край, Динской р-н, ст. Васюринская

Список литературы

  1. Hochava M., Sampiev A., Oganesyan E. et al. Development of a technology for obtaining hesperidin from citrus fruit processing waste. BIO Web of Conferences. 2022; 46: 01013; https://doi.org/10.1051/bioconf/20224601013.
  2. Хочава М.Р. Химико-технологическое обоснование созда-ния флавоноидных препаратов с использованием отходов цитрусовых: дис. … канд. фармац. наук:15.00.02/Хочава Медея Рудиковна. Пятигорск, 2001; 143 с.
  3. Доркина Е.Г., Оганесян Э.Т., Хочава М.Р. и др. Выде-ление гесперидина и суммарной флавоноидной фракции из отходов цитрусовых и экспериментальное изучение их использования в качестве гепатозащитных средств. Пятигорск: Пятигорская ГФА, 2002; 31 с. Деп. в ВИНИТИ РАН 11.09.2002, №1308-В2002.
  4. Доркина Е.Г., Хочава М.Р., Оганесян Э.Т. и др. Иссле-дование защитного действия гесперидина и его сочетан-ного применения с аминокислотами при остром токси-ческом поражении печени тетрахлорметаном. Регион., конф. по фармации, фармакологии и подготовке кадров. Пятигорск: ПГФА, 2001: 192–194.
  5. Ahmadi A., Shadboorestan A. Oxidative stress and cancer; the role of hesperidin, a citrus natural bioflavonoid, as a cancer chemoprotective agent. Nutr Cancer. 2016; 68: 29–39. doi: 10.1080/01635581.2015.1078822.
  6. Ganesh Chandra Jagetia, Lalrinpuii T. Hesperidin, a citrus bioflavonoid attnuates iron-induced biochemical oxidative stress in mouse liver. Biomed J Sci&Tech Res. 2018; 8(1): 6291–6302); https://doi.org/10.26717/BJSTR.2018.08.001602.
  7. Зверев Я.Ф. Антитромбоцитарная активность флаво-ноидов. Вопросы питания. 2017; 8(6): 6–20. doi: 10.24411/0042-8833-2017-00001.
  8. Sohel M., Sultana H., Sultana T. et al. Chemotherapeutic potential of hesperetin for cancer treatment, with mechanistic insights: A comprehensive review. Heliyon. 2022 Jan 23; 8(1): e08815. doi: 10.1016/j.heliyon.2022.e08815.
  9. Mutha R.E., Tatiya A.U., Surana S.J. Flavonoids as natural phenolic compounds and their role in therapeutics: an overview. Futur J Pharm Sci. 2021; 7(1): 25. doi: 10.1186/s43094-020-00161-8.
  10. Козина Ю.В., Зуков Р.А., Слепов Е.В., Козина Е.В. Роль радиопротекторов и иммунотропов в профилактике лучевых реакций и осложнений. Эффективная фармако-терапия. 2021; 17 (2): 50–57. doi: 10.33978/2307-3586-2021-17-2-50-57.
  11. Mashhadi Akbar Booja M. Flavonoids Radioprotective Effects Adv Pharm Bull. 2020; 10(1): 13–19. doi: 10.15171/apb.2020.002.
  12. Панченко А.В. Новый класс препаратов на основе продук-тов гидролизного лигнина: обоснование применения в ка-честве средств сопроводительной химио- и лучевой терапии злокачественных новообразований (экспериментальное ис-следование): Автореф. дис. … докт. мед. наук: 14.01.12. Онкология. Санкт-Петербург, 2019: 267; https://www.niion-cologii.ru/science/thesis/novyj-klass-preparatov-na-osnove-pro-duktov-gidroliznogo-lignina/dissertaciya_panchenko.pdf.
  13. Coccia A., Mosca L., Puca R. et al. Extra-virgin olive oil phenols block cell cycle progression and modulate chemotherapeutic toxicity in bladder cancer cells. Oncol Rep. 2016 Dec; 36(6): 3095–3104. doi: 10.3892/or.2016.5150.
  14. Weiss J.F., Landauer M.R. Protection against ionizing radiation by antioxidant nutrients and phytochemicals. Toxicology. 2003 Jul 15; 189(1-2): 1–20. doi: 10.1016/s0300-483x(03)00149-5.
  15. Курцева А.А., Смахтин М.Ю., Иванов А.В., Беседин А.В. Влияние аминокислот, составляющих пептид глицил-гистидил-лизин, на регенерацию кожных ран и функцию нейтрофилов. Человек и его здоровье. 2008; 3. URL: https://cyberleninka.ru/article/n/vliyanie-aminokislot-sostav-lyayuschih-peptid-glitsil-gistidil-lizin-na-regeneratsiyu-ko-zhnyh-ran-i-funktsiyu-neytrofilov.
  16. Кудряшов Ю.Б. Химическая защита от лучевого поражения. Соросовский образовательный журнал. 2000; 6(6): 21–26; https://dl.libcats.org/genesis/381000/86fbdc8c41c254bda3988d05c5d500ec/_as/[Kudryashov_YU.B.]_Himicheskaya_zashita_ot_luchevo(libcats.org).pdf.
  17. Селезнев С.А., Назаренко Г.И., Зайцев В.С. Клинические аспекты микрогемоциркуляции Л.: Медицина, 1985: 76–79.

Дополнительные файлы

Доп. файлы
Действие
1. JATS XML

© ИД "Русский врач", 2025