Изучение морфологических и физиолого-биохимических особенностей штамма Claviceps purpurea (Fries) Tulasne BKMF-2641D в сапрофитной культуре


Цитировать

Полный текст

Открытый доступ Открытый доступ
Доступ закрыт Доступ предоставлен
Доступ закрыт Доступ платный или только для подписчиков

Аннотация

Актуальность. Штамм гриба Claviceps purpurea (Fries) Tulasne BKMF-2641D - продуцент эрготамина используют в промышленном производстве для получения лекарственного сырья (склероциев спорыньи), содержащего пептидный эргоалкалоид - эрготамин. Использование штамма гриба C. purpurea BKMF-2641D для получения эрготамина в сапрофитной культуре позволит обеспечить возрастающие с каждым годом потребности фармацевтической промышленности в стандартном лекарственном сырье независимо от времени года, снизить производственные затраты, создать экологически чистое производство. Материал и методы. Отправной и обязательной работой при решении как научных, так и практических задач, связанных с использованием грибов-паразитов C. purpurea (Fries) Tulasne в качестве продуцентов биологически активных соединений в сапрофитной культуре, является получение мицелиальной культуры гриба спорыньи, растущей на искусственных питательных средах и разностороннее ее изучение. Представлен экспериментальный материал по получению мицелиальной культуры спорыньи из склероция штамма гриба-паразита C. purpurea BKMF-2641D и изучению ростовых и некоторых морфологических и физиолого-биохимических особенностей при культивировании ее на искусственных питательных средах (Т2, Тg и Т25). Результаты. При перенесении кусочка склероция на поверхность агаризованной среды Т2 визуально наблюдали рост мицелия вокруг кусочка склероция (5-6-е сутки), который затем разрастался и занимал всю поверхность скошенной агаризованной среды Т2 в пробирке не только с поверхности, но проникал внутрь питательного субстрата, уплотнялся. Цвет мицелия, изначально белый, с возрастом (на 20-30-е сутки) приобретал фиолетовую окраску, пигмент диффундировал в питательную среду. На 1430-е сутки роста гриб начинал активно образовывать конидии. Плотность суспензии конидий в 10 мл смыва с поверхности мицелия (на 30-е сутки роста) составила 5,8±0,20;109 шт/мл. При выращивании гриба спорыньи в жидкой питательной среде Т25 культура гриба представляла собой суспензию мицелия и незначительного количества конидий в культуральной среде. Окраска культуральной жидкости варьировала в зависимости от возраста культуры. Изначально молочно-белый цвет культуральной жидкости к концу ферментации изменялся и становился серым или иногда бежевым, синтеза эргоалкалоидов не наблюдали. Выводы. Проведенные эксперименты показали, что при переводе штамма гриба-паразита C. purpurea BKMF-2641D в сапрофитные условия культивирования (поверхностное, глубинное) гриб хорошо растет, однако в исследуемых условиях генетическая информация, ответственная за синтез эрготамина, не реализуется. В тоже время исходная генетическая информация не исчезает, она сохраняется, но для ее реализации требуются специфические условия.

Полный текст

Доступ закрыт

Об авторах

Р. И Бобылева

Всероссийский научно-исследовательский институт лекарственных и ароматических растений

к.б.н.

П. С Савин

Всероссийский научно-исследовательский институт лекарственных и ароматических растений

Email: savin-pavel@list.ru
к.б.н., вед. науч. сотрудник, группа биотехнологии

Список литературы

  1. Барсегян А.Г., Савина Т.А., Бобылева Р.И. Селекция вариантных линий Claviceps purpurea эрготаминового штамма со способностью к биосинтезу индольных производных в сапрофитной культуре. Сборник научных трудов «Нетрадиционные ресурсы, инновационные технологии и продукты». 2007; 16: 211-215.
  2. Комарова Е.Л., Шаин С.С. Идентификация селекционных штаммов спорыньи по алкалоидному составу индивидуальных склероциев. Химико-фармацевтический журнал. 1998; 32(8): 34-37.
  3. Савина Т.А., Савин П.С., Бобылева Р.И. Экзогенная регуляция биопродкутивности сапрофитных штаммов спорыньи. Вопросы биологической, медицинской и фармацевтической химии. 2018; 12(21): 29-34.
  4. Трумпе Т.Е., Колхир O.K., Омельницкий П.П. и др. Труды. ВИЛАР. Химия, технология, медицина. М. 2000: 200-209.
  5. Шаин С.С. Биорегуляция продуктивности растений. Из-во «Оверлей». М. 2005. 218 с.
  6. Унифицированные методы анализа вод / Под редакцией Ю.Ю. Лурье. Из-во. «Химия». М. 1971. 375 с.
  7. Sharma Niti, Sharma Vinay K., ManikyamHemanth Kumar and Krishna Acharya Bal. Ergot Alkaloids: A Review on Therapeutic Applications. European Journal of Medicinal Plants. 2016; 14(3): 1-17.
  8. Tudzynsk P., Correia T., Keller U. Biotechnology and genetics of ergot alkaloids. Applied Microbiology and Biotechnology. 2001; 57 (5-6): 593-605.
  9. Rumpel W. Einfache serienmabige Bestimmung des Alkaloidwertes von Einzelsklerotein des Muttercorns. Farmazie. 1955; 10(3): 585-606.

Дополнительные файлы

Доп. файлы
Действие
1. JATS XML

© ИД "Русский врач", 2021

Данный сайт использует cookie-файлы

Продолжая использовать наш сайт, вы даете согласие на обработку файлов cookie, которые обеспечивают правильную работу сайта.

О куки-файлах